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        雙孢菇多糖的提取及抗氧化活性研究

        2018-07-03 12:09:28劉楊趙立蔣長興陳軍白青云畢艷紅陳文
        中國果菜 2018年6期
        關鍵詞:雙孢菇螯合液料

        劉楊,趙立,蔣長興,陳軍,白青云,畢艷紅,陳文

        (淮陰工學院生命科學與食品工程學院,江蘇淮安223003)

        食用菌是已知最早的、人類實踐中發(fā)現并利用的一類微生物,其醫(yī)學價值在我國東漢時期已有記錄。食用菌素有“植物肉”之稱,蛋白質含量豐富,有18種L-氨基酸,氨基酸組成合理。雙孢菇(Agaricus bisporus),是一種常見的食用菌,又稱白色蘑菇、洋蘑菇、圓蘑菇、銀白色菌絲菇,是中低溫性真菌,生長速度快,不容易結菌被,實體多單生,形狀圓正,呈白色、外周沒有鱗片,菌蓋較厚,菇體肉質肥厚。在雙孢菇的擔子上面,一般都會有兩個擔孢子長在上面,得名雙孢菇[1,2]。

        真菌多糖是多數食用菌含有的一種非常重要的活性成分,具有廣闊的發(fā)展前景,近年來受到國內外學者的廣泛關注[3-5]。真菌多糖具有很好的抗氧化性,是一款天然存在的大眾消費品,方便易得。作為天然綠色防腐劑,在食品中的應用已被大眾所接受和認可[6-9]。目前也被應用到化妝品的開發(fā)與成分添加中,本文應用真菌多糖來優(yōu)化雙孢菇多糖的提取工藝,并分析了它的抗氧化活性,為雙孢菇多糖的充分應用,發(fā)揮多糖的醫(yī)藥價值提供參考。

        1 材料與設備

        1.1 試驗材料

        新鮮雙孢菇選自淮安市城南市場,市售。菌體肉質飽滿,沒有劃痕,顏色白凈,無褐色或黑色斑點,菌體上的菌桿未脫落。

        1.2 試劑

        苯酚、濃硫酸、無水乙醇、氯化鐵、三氯乙酸、鐵氰化鉀、EDTA、VC、Ferrozine(菲洛嗪)等,均為分析純。BHT(2,6-二叔丁基-4-甲基苯酚)為食品級。

        1.3 設備

        PHS-3C型pH計,上海儀電科學儀器股份有限公司;HH-4型數顯恒溫水浴鍋,國華電器有限公司;723-UV-5800型紫外可見分光光度計,上海菁華科技儀器有限公司。

        2 試驗方法

        2.1 操作流程及主要步驟

        2.1.1 粉碎、浸提、濃縮

        將雙孢菇切片置于粉碎機中粉碎后,置于勻漿機中加水勻漿,采用熱水浸提。過濾,得浸提液。將浸提液在8000r/min條件下離心15min,得到上層清液。將得到的上層清液用旋轉蒸發(fā)器濃縮,減壓濃縮至原體積的1/3~1/2。

        2.1.2 醇沉、離心、干燥

        將濃縮液加3倍體積乙醇,攪拌,放置一夜,然后8000r/min離心15min,得沉淀物。將沉淀物置于烘箱中,(105±2)℃條件下烘至恒重,搗成粉末備用。

        2.2 雙孢菇多糖提取優(yōu)化工藝試驗

        2.2.1 單因素試驗

        (1)提取溫度對多糖提取率的影響

        選擇不同溫度(50、60、70、80、90℃)作為變量,液料比30:1,提取時間180min,提取1次,研究提取溫度對多糖提取率的影響。

        (2)提取時間對多糖提取率的影響

        選擇不同的時間(60、90、120、150、180min) 作為變量,液料比30:1,提取溫度70℃,提取 1次,研究提取時間對多糖提取率的影響。

        (3)液料比對多糖提取率的影響

        選擇不同的液料比(10:1、20:1、30:1、40:1、50:1)作為變量,提取時間180min,提取溫度70℃,提取 1次,研究液料比對多糖提取率的影響。

        2.2.2 多糖提取率的計算

        式中,質量的單位均為g。

        2.3 多糖抗氧化活性的測定

        2.3.1 還原力

        在試管中加入一定體積0.1mg/mL的樣品,用磷酸鹽緩沖溶液(0.2mol/L、pH 6.6)定容到 2.5mL,加質量分數為1%的鐵氰化鉀溶液5mL,隨后將試管放入50℃水浴鍋中加熱20min,反應后取出試管,隨即加入10%的三氯乙酸溶液5mL,將試液充分搖勻后靜置5min。取上清液2.5mL,添加2.5mL的蒸餾水和0.5mL1%的氯化鐵溶液。將搖勻后得到的試液置于700nm條件下測定吸光度值。同時采用相同體積質量分數為0.1mg/mL的BHT為陽性對照。

        2.3.2 對Fe2+離子螯合能力

        加入一定體積的濃度為0.1mg/mL樣品于試管中,然后依次添加2mol/L的氯化鐵溶液0.1mL,5mmol/L的Ferrozine溶液0.2mL,充分搖勻,之后加入蒸餾水定容到5mL,于室溫放置20min,在560nm波長下測定吸光度,根據吸光度計算螯合率。該試驗中的陽性對照是0.1mg/mL的EDTA。

        2.3.3 對DPPH自由基的清除能力

        在試管中添加少量的樣品,濃度為0.1mg/mL,然后添加6.5×10-5mol/L DPPH 2.5mL,充分搖勻后,用70%的乙醇溶液定容到4mL,再次搖勻,在避光處放置20min,之后將溶液搖勻,避光20min后在500nm測量吸光度,并由此計算自由基的清除率。在該試驗中的對照樣品是0.1mg/mL的BHT。

        2.3.4 對羥基自由基的清除能力

        取兩個干凈的試管,并標號1、2。兩個試管中分別加入少量的0.1mg/mL的樣品,然后分別再加入9mmol/L的四氯化鐵EDTA溶液1mL,在1號試管中再加入9mmol/L的水楊酸乙醇溶液1mL,2號試管不加,然后將濃度為8.8mmol/L過氧化氫溶液1mL加入試管中,并將1、2號試管用蒸餾水定容到5mL。充分將兩個試管搖勻后,于500nm下測定吸光度,計算出清除率,判斷清除羥基自由基的能力。本次試驗用等體積的抗壞血酸作為對照組。

        3 結果與分析

        3.1 雙孢菇多糖提取的優(yōu)化試驗

        3.1.1 多糖提取的單因素試驗

        (1)提取溫度對多糖提取率的影響

        圖1 不同提取溫度下的多糖提取率Fig.1 Extraction rate of polysaccharide with different temperature

        從圖1可知,溫度在50~70℃之間時,雙孢菇多糖的提取率隨著溫度的升高逐漸增加,但溫度超過70℃以后,多糖的提取率呈現略下降趨勢。因此,選擇70℃為雙孢菇多糖提取的最佳溫度。

        (2)提取時間對多糖提取率的影響

        從圖2可知,提取時間為60~120min時,雙孢菇多糖的提取率隨著時間延長存在明顯的上升趨勢(P<0.05)。當提取時間達到120min以上時,雙孢菇多糖提取率上升非常緩慢(P>0.05)。因此,120min為提取雙孢菇多糖的最佳溫度。

        圖2 不同提取時間下的多糖提取率Fig.2 Extraction rate of polysaccharide with different time

        (3)液料比對多糖提取率的影響

        由圖3可見,多糖的提取率隨著液料比的增加呈現先增加后下降的趨勢,在液料比為30:1時的多糖提取率較20:1時顯著增加(P<0.05),隨著液料比的持續(xù)增加,多糖提取率并未有顯著上升(P>0.05)。因此,30:1時為提取雙孢菇多糖的最佳液料比。

        圖3 不同液料比下的多糖提取率Fig.3 Extraction rate of polysaccharide with different ratio of liquid to material

        3.1.2 雙孢菇多糖提取的正交試驗

        在單因素的基礎上,選取對結果影響顯著的單因素設計正交試驗,試驗設計見表1,結果見表2。

        表1 雙孢菇多糖提取正交試驗設計Table 1 Orthogonal test design of polysaccharide extraction fromAgaricus bisporus

        表2 雙孢菇多糖提取正交試驗結果Table 2 Orthogonal test result of polysaccharide from Agaricus bisporus

        從表2可以看出,RC>RA>RB,所以各因素對多糖提取率影響由大到小依次為:液料比>提取溫度>提取時間。多糖最佳提取方案為A3B2C3,即提取溫度為80℃,提取時間為120min,液料比為40:1。經驗證最優(yōu)方案多糖提取率為1.53%,均優(yōu)于其他試驗組。

        3.2 多糖抗氧化活性分析

        3.2.1 多糖的還原力

        物質還原力的大小和抗氧化活性有一定關系,因此,可通過測定還原力的大小來判斷物質抗氧化性的高低[10]。由圖4可以看出,雙孢菇多糖的還原力與BHT的還原能力相當(P>0.05),可見,雙孢菇多糖具有很好的還原力,并在一定的范圍內與濃度呈正比。

        圖4 雙孢菇多糖的還原力Fig.4 Reducing capacity of polysaccharides from Agaricus bisporus

        3.2.2 多糖對Fe2+的螯合能力

        生物體內·OH可由H2O2與金屬離子反應產生,兩者具有相同的作用趨勢,推測多糖能夠通過螯合金屬離子(如Fe2+等)來降低機體產生·OH的速度,兩者的存在是呈正比關系,螯合力大的抗氧化劑,抗氧化性也較強[11]。圖5表明,雙孢菇多糖的螯合能力一直高于EDTA,在溶液濃度為0.4mg/mL之前,差異顯著(P<0.05),隨著濃度的增加,兩者的螯合能力差異變小(P>0.05)。

        圖5 雙孢菇多糖對Fe2+的螯合能力Fig.5 The chelation ability of polysaccharides with Fe2+fromAgaricus bisporus

        3.2.3 多糖對DPPH自由基的清除能力

        由圖6可見,雙孢菇多糖對DPPH自由基的清除能力稍高于BHT,二者變化趨勢大致相近,這表明雙孢菇多糖對DPPH自由基的清除能力較強。

        圖6 雙孢菇多糖對DPPH自由基的清除能力Fig.6 Scavenging ability on DPPH free radicals of polysaccharides fromAgaricus bisporus

        3.2.4 雙孢菇多糖對羥基自由基的清除作用

        由圖7可見,雙孢菇多糖的清除羥基自由基的能力明顯要比VC強(P<0.05),隨著濃度的增加,清除率趨于平緩,接近最大值80%左右。

        圖7 雙孢菇多糖對羥基自由基的清除作用Fig.7 Scavenging ability on Hydroxyl radical of polysaccharides fromAgaricus bisporus

        4 結論

        本試驗采用新鮮雙孢菇作為材料,優(yōu)化雙孢菇多糖的提取工藝參數為:提取溫度80℃,提取時間120min,液料比40:1,在此條件下雙孢菇多糖的提取率可達1.53%,烘干后雙孢菇多糖含量可達10.2%。雙孢菇的含水率約在90%左右,提取率與松乳菇多糖的提取[12]、海鮮菇多糖的提取[13]等的結果相近。

        雙孢菇多糖對金屬離子具有較強的螯合能力和還原力,它能夠清除羥基自由基和DPPH自由基,是一種純天然的抗氧化劑,可以應用于多種領域,具有很好的發(fā)展?jié)摿?,開發(fā)前景非常廣闊。

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