郭鶯 汪文華 劉黎卿 胡敏
(1. 福建省亞熱帶植物研究所 福建省生理生化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廈門(mén) 361006;2. 華僑大學(xué)化工學(xué)院,廈門(mén) 361021)
甘蔗宿根矮化?。≧atoon stunting disease,RSD)是一種普遍存在于蔗區(qū)的世界性病害[1],在干旱的情況下感病品種的宿根蔗產(chǎn)量損失可達(dá)50%以上[2]。1944-1945年在澳大利亞昆士蘭的甘蔗品種Q28上首次被發(fā)現(xiàn)[3]。一旦感病,植株表現(xiàn)矮化、分蘗少、蔗莖變細(xì)、節(jié)間變短等,但外表無(wú)明顯的病斑,故常常與干旱、養(yǎng)分不足等造成的生長(zhǎng)不良癥狀相混淆[4]。甘蔗宿根矮化病病原菌(Leifsonia xyli subsp.xyli,Lxx)為棒狀桿菌屬[5],寄生于蔗株的木質(zhì)部導(dǎo)管中,可以侵染甘蔗屬所有已知品種,但不侵染其他植物[6]。Lxx病原細(xì)菌特別細(xì)小,分離、培養(yǎng)和檢測(cè)都極其困難,給研究帶來(lái)了很大的難度。免疫磁珠分離技術(shù)(Immunomagnetic separation,IMS)是一種以特異的抗原抗體反應(yīng)為基礎(chǔ)的免疫學(xué)檢測(cè)和分離技術(shù)。它是以抗體包被的磁珠為載體,通過(guò)抗體與反應(yīng)介質(zhì)中特異性抗原結(jié)合,形成抗原——抗體復(fù)合物,此復(fù)合物在外加磁場(chǎng)的作用下發(fā)生了定向移動(dòng),從而達(dá)到分離抗原的目的。本文以感病的拔地拉為材料,從中分離獲得Lxx病原菌進(jìn)行多克隆抗體制備,并采用免疫磁珠技術(shù)標(biāo)記Lxx抗體對(duì)Lxx菌進(jìn)行富集,這樣為直接從甘蔗汁液中獲得大量純的Lxx菌用于病原菌與寄主互作研究奠定了基礎(chǔ)。
1.1.1 供試甘蔗 甘蔗熱帶種拔地拉由廣東省農(nóng)科院甘蔗研究室提供,種植于福建省亞熱帶植物研究所隔離溫室內(nèi),待甘蔗成熟期取蔗莖基部為供試材料用于病原菌的分離。
1.1.2 試劑 MSC培養(yǎng)基購(gòu)于西格瑪試劑公司,BSA、弗氏佐劑購(gòu)于上海生工生物工程有限公司,PCR反應(yīng)試劑、聚合酶、凝膠純化試劑盒購(gòu)于天根生化科技有限公司,pMD-18T載體購(gòu)于寶生物工程(大連)有限公司,F(xiàn)eS04·7H20、FeCl3·6H20、戊二醛、硅烷化試劑購(gòu)于國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
1.2.1 Lxx抗原制備 切取甘蔗莖基部,進(jìn)行表面清洗滅菌,放入超凈臺(tái)中晾干。將蔗莖切成適合大小用鑷子擠汁,4 000 r/min,離心10 min后收集蔗汁,用普通濾紙進(jìn)行初步過(guò)濾后再用0.45 μm細(xì)菌過(guò)濾器進(jìn)行過(guò)濾。將過(guò)濾后的蔗汁100 μL涂布于含有10 μg/mL萘啶酸(Nalidixic acid)的新鮮MSC培養(yǎng)基[7],于28℃進(jìn)行暗培養(yǎng),40 d后觀察并挑取菌落,進(jìn)行電鏡觀察和PCR驗(yàn)證。PCR引物用Pan等[8]報(bào)道的Lxx 16S-23S r DNA內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔區(qū)(ITS)特異引物 Lxx1 :5′-CCGAAGTGAGCAGATTGACC-3′、Lxx2 :5′-ACCCTGTGTTGTTTTCAACG-3′, 產(chǎn) 物439 bp。PCR 反應(yīng)體系 :rTaq 0.25 μL,dNTP 1 μL,10×PCR buffer(Mg2+)2 μL,正向引物 Lxx1 1 μL,反 向 引 物 Lxx2 1 μL,ddH2O 13.75 μL。PCR 擴(kuò) 增程序?yàn)?95℃ 5 min;95℃ 30 s,55℃ 30s,72℃ 30 s,40個(gè)循環(huán);72℃延伸5 min。PCR回收產(chǎn)物送Invitrogen公司測(cè)序,獲得的序列在NCBI網(wǎng)站比對(duì)以確定分離的抗原是否為L(zhǎng)xx。
1.2.2 Lxx抗體制備 選取已鑒定的菌株,加入0.4%的甲醛滅活,加入弗氏佐劑,直接注射兔子,兩周注射一次,共免疫4次,二個(gè)月后抽取血清采用Protein A-Sepharose 4B 作親和層析介質(zhì)純化得到抗體蛋白,利用間接Elisa方法進(jìn)行效價(jià)測(cè)定,計(jì)算P/N=樣品OD值/對(duì)照OD值。若P/N≥2.1,即為陽(yáng)性。
1.2.3 免疫磁珠的制備 根據(jù)劉偉偉報(bào)道的方法[9],利用化學(xué)共沉淀法合成硅烷化磁性Fe3O4納米粒子,,并取10 mL于干燥的表面皿中烘干至恒重,計(jì)算固形物的含量,其平均粒徑、粒徑分布和表面形貌采用透射電鏡(TEM)進(jìn)行表征;以戊二醛為交聯(lián)劑將硅烷化的磁性Fe3O4納米粒子與Lxx多克隆抗體偶聯(lián)制備免疫磁珠,取10 mg 硅烷化的Fe3O4納米粒子溶于10 mL 0.01 mol/L PH 7.4 PBS,加入 2.5 mL 25%戊二醛,于室溫下攪拌反應(yīng) 6 h。PBS 洗滌3次后用磁石收集,定容至 10 mL,加入 5 μmol抗體于37℃下攪拌 3 h,PBS洗滌3次后用磁石收集于4℃保存。
1.2.4 免疫磁珠對(duì)Lxx親合性檢測(cè) 挑取Lxx單菌落接到液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),48 h后4000 rmp離心棄上清,用1 mL PBS重懸浮,加入40 μL抗Lxx免疫磁珠混均,37℃孵育1h,低速離心后棄上清,用PBS緩沖液清洗2次,將分離出來(lái)的捕獲有Lxx的免疫磁珠進(jìn)行透射電鏡觀察,并利用Lxx16S引物和特異性引物進(jìn)行鑒定。
28℃培養(yǎng)40 d后,培養(yǎng)皿上出現(xiàn)肉眼可見(jiàn)的無(wú)色、點(diǎn)狀大小的菌落,中間突起,邊緣整齊,直徑約為0.2 mm(圖1)。挑取菌落在電鏡下觀察,此菌為桿狀細(xì)菌,表面光滑,無(wú)鞭毛,大小為(0.25-0.5)μm×(1-10)μm,菌體為細(xì)長(zhǎng)形,呈直線或微彎的狀態(tài),有部分一端膨大,有的菌體中間有隔膜存在(圖2)。隨機(jī)挑取培養(yǎng)皿上6個(gè)菌落進(jìn)行 PCR檢測(cè),待測(cè)菌落均能擴(kuò)增出與正對(duì)照一致的目的條帶(圖3),對(duì)目的條帶進(jìn)行膠回收轉(zhuǎn)入大腸桿菌中表達(dá),經(jīng)測(cè)序獲得目的片段大小為438 bp,與NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)澳大利亞分離的RSD致病菌基因組相應(yīng)區(qū)段序列同源性為100%,進(jìn)化樹(shù)分析顯示其與Leifsonia xyli subsp. Xyli str. CTCB07(AE016822)關(guān)系最近,表明所分離到的即為甘蔗RSD病原菌Lxx。
圖1 病原菌Lxx純培養(yǎng)
圖2 透射電鏡下Lxx病原菌的形態(tài)觀察
圖3 菌落PCR鑒定
利用分離的RSD病原菌Lxx免疫兔子獲得了較好的多克隆抗體(表1)??贵w稀釋到204 800倍時(shí)還有明顯的陽(yáng)性反應(yīng),而陰性值無(wú)明顯階梯,結(jié)果表明免疫獲得的Lxx抗血清效價(jià)達(dá)大于204 800。
取10 mL合成的磁性Fe304懸浮液于干燥的表面皿中烘干至恒重,烘干后的質(zhì)量為0.095 g,磁珠的濃度為9.5 mg/mL。通過(guò)TEM觀察Fe304磁性粒子,結(jié)果表明納米級(jí)Fe304磁性微粒的平均粒徑在125-268 nm之間(圖4-A),球體表面均勻,有較好的形貌,分散性良好。免疫磁珠電鏡觀察結(jié)果與磁性Fe304粒子一致,無(wú)雜質(zhì)粘連,也無(wú)貼壁現(xiàn)象(圖4-B)。硅烷化后的磁性Fe304粒子與Lxx抗體偶聯(lián),從透射電鏡圖片中看其形貌未有變化。
從圖5透射電鏡照片中可以看出,免疫磁珠吸附在Lxx菌體表面,菌越密集,相應(yīng)的吸附在菌體表面的免疫磁珠也越多;低速離心后對(duì)沉淀進(jìn)行的Lxx 特異性PCR檢測(cè),結(jié)果(圖6)表明利用免疫磁珠技術(shù)獲得的Lxx分離物可用于進(jìn)一步的PCR研究。
RSD已在各甘蔗種植國(guó)普遍發(fā)生且危害嚴(yán)重,是導(dǎo)致甘蔗減產(chǎn)、宿根年限縮短及嚴(yán)重威脅蔗糖產(chǎn)業(yè)穩(wěn)定可持續(xù)發(fā)展的一種重要病害,起初看似是一個(gè)在單一區(qū)域、單一品種上的困擾變成了一個(gè)世界范圍甘蔗產(chǎn)業(yè)的一個(gè)嚴(yán)重問(wèn)題,且已經(jīng)影響了甘蔗產(chǎn)業(yè)至少70年。RSD的致病菌的體外培養(yǎng)非常困難,盡管在1944年就發(fā)現(xiàn),但是一直到1980年Davis[3]才成功分離培養(yǎng)。我國(guó)有關(guān)RSD病原菌分離培養(yǎng)的報(bào)道較少,2008年陳健文等[10]利用改良的SC培養(yǎng)基,從甘蔗蔗汁中分離培養(yǎng)到一種桿狀細(xì)菌,根據(jù)菌落的形態(tài)特征,并結(jié)合血清學(xué)和PCR檢測(cè)方法,確認(rèn)所分離到的菌是甘蔗宿根矮化病的致病菌Lxx;2015年張小秋等[11]利用改良的MSC培養(yǎng)基成功分離Lxx,同年王麗[7]也成功分離了RSD病原菌;但目前仍然還有很多實(shí)驗(yàn)室沒(méi)有辦法重復(fù)分離 Lxx,主要原因是該菌生長(zhǎng)特別緩慢,往往需要4周左右的時(shí)間才能在培養(yǎng)皿上觀察到菌落,由于培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng),一旦有雜菌產(chǎn)生,分離就失敗,所以控制污染是Lxx菌分離培養(yǎng)的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。在本實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,所有操作均在無(wú)菌超凈臺(tái)中進(jìn)行,分離過(guò)程中使用的工具和試劑均高壓滅菌處理,同時(shí)MSC培養(yǎng)基中還添加殺菌劑萘啶酸,抑制了部分雜菌的生成,一定程度上提高了Lxx分離培養(yǎng)的成功率,但相對(duì)于其它細(xì)菌的培養(yǎng)來(lái)說(shuō),這種分離培養(yǎng)的可重復(fù)性較差。免疫磁珠是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的一項(xiàng)新的免疫學(xué)技術(shù),它將固化試劑特有的優(yōu)點(diǎn)與免疫學(xué)反應(yīng)的高度特異性結(jié)合于一體,以免疫學(xué)為基礎(chǔ),滲透到病理、生理、藥理、微生物、生化以及分子遺傳學(xué)等各個(gè)領(lǐng)域,其在免疫檢測(cè)、細(xì)胞分離、生物大分子純化等方面得到了越來(lái)越廣泛的應(yīng)用,在細(xì)菌分離上也有很大的應(yīng)用前景[12-14]。在細(xì)菌分離上,與傳統(tǒng)的方法相比,具有分離速度快、效率高、可重復(fù)性好、操作簡(jiǎn)單、不需要昂貴的儀器設(shè)備等優(yōu)點(diǎn)。張蓉蓉等[15]利用免疫磁珠技術(shù)分離豬胸膜肺炎放線桿菌,發(fā)現(xiàn)可以顯著提高此病原菌的分離效率;丁浩[16]在利用免疫磁珠富集法對(duì)牛源大腸桿菌O157:H7分離鑒定的研究中發(fā)現(xiàn)免疫磁珠吸附技術(shù)和普通方法相比雖然在統(tǒng)計(jì)學(xué)上差異不顯著,但確實(shí)能夠增加大腸桿菌 O157:H7的分離數(shù)量;Islam等[17]利用免疫磁珠分離技術(shù)與PCR法相結(jié)合檢測(cè)志賀菌,比傳統(tǒng)的培養(yǎng)法快7 h。本研究中,利用項(xiàng)目研發(fā)的Lxx多克隆抗體制備的免疫磁珠對(duì)Lxx親合性強(qiáng),透射電鏡觀察免疫磁珠吸附Lxx菌體的表面,并在重力作用下免疫磁珠-Lxx混合物從培養(yǎng)基中分離出來(lái)可進(jìn)一步用于PCR檢測(cè),這為為直接從甘蔗汁液中獲得大量純的Lxx用于轉(zhuǎn)錄組或與寄主的互作研究提供了可能;利用免疫磁珠技術(shù)從甘蔗汁液中分離獲得Lxx用于病原菌的培養(yǎng)是否可以減少菌培養(yǎng)過(guò)程中的污染,提高培養(yǎng)成功率還有待進(jìn)一步的試驗(yàn)。另外,項(xiàng)目實(shí)施過(guò)程中發(fā)現(xiàn)該菌存在退化現(xiàn)象,本實(shí)驗(yàn)通過(guò)優(yōu)化培養(yǎng)基PH值和培養(yǎng)溫度都不能改善其退化現(xiàn)象,推測(cè)目前的分離培養(yǎng)基還不是最適的配方,今后應(yīng)對(duì)Lxx的培養(yǎng)基配方進(jìn)行優(yōu)化。
表1 Lxx多克隆抗體的效價(jià)測(cè)定結(jié)果
圖4 納米級(jí)Fe304磁性微粒和免疫磁珠的透射電鏡圖片
圖5 透射電鏡下免疫磁珠對(duì)Lxx的親合性分析
圖6 免疫磁珠與Lxx菌液免疫反應(yīng)的分離物PCR檢測(cè)結(jié)果
通過(guò)從感病蔗汁中分離培養(yǎng)的RSD致病菌,免疫獲得了效價(jià)較高的Lxx多克隆抗體,制備的免疫磁珠對(duì)Lxx親和性強(qiáng),能夠快速實(shí)現(xiàn)Lxx的分離,實(shí)驗(yàn)證明可進(jìn)一步用于PCR檢測(cè),為L(zhǎng)xx與甘蔗互作時(shí)期下甘蔗感病性檢測(cè)和病原菌的富集提供了便捷高效的技術(shù)手段。
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