鐘智,孫天松,陳永福
(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學乳品生物技術與工程教育部重點實驗室,呼和浩特 010018)
Streptococcus thermophilus(S.thermophilus)是一種重要的工業(yè)菌株,它常與Lactobacillus bulgaricus復配用于酸奶發(fā)酵,可以顯著改善乳制品的風味、口感和組織狀態(tài)[1]。除了對乳制品的快速酸化,發(fā)酵劑菌株還需要具有增加發(fā)酵乳黏度和持水性等特性。而這些特性均與菌株產(chǎn)胞外多糖(exopolysaccharides,EPS)能力顯著相關[2-3]。因此,菌株產(chǎn)EPS的能力是篩選S.ther?mophilus酸奶發(fā)酵劑的一項重要指標。
Streptococcus thermophilusND-07(ND-07)是分離自青海地區(qū)自然發(fā)酵酸牦牛奶樣品中的一株S.ther?mophilus[4]。研究發(fā)現(xiàn)該菌株具有弱后酸化、高黏度和高持水性的優(yōu)良發(fā)酵特性,具有成為一株優(yōu)良的商業(yè)化發(fā)酵菌株的潛在能力。為了全面了解菌株ND-07的發(fā)酵特性,深入分析ND-07產(chǎn)EPS的分子機制,本研究利用PacBio RS II三代測序技術完成了ND-07的全基因組測序,并通過比較基因組學方法闡明了ND-07富產(chǎn)EPS的分子機制。
菌株ND-07分離自青海地區(qū)自然發(fā)酵酸牦牛奶樣品,由內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學乳品生物技術與工程教育部重點實驗室提供。菌株S.thermophilusYX-S(YX-S)分離自商業(yè)發(fā)酵劑YC-X11(Chr Hansen,Denmark)。
1.2.1 發(fā)酵酸乳樣品的制備
將全脂復原乳(蔗糖6.5%、全脂粉11.5%)預熱至60℃,高壓均質(一段20 MPa,二段4 MPa),95℃殺菌10 min,冷卻至42℃并接入5×106cfu/g已制備好的ND-07和YX-S的發(fā)酵劑,于42℃培養(yǎng)至pH值為4.5,將其置于冰水中迅速冷卻。冷卻后置于4℃后熟12 h[5]。
1.2.2 發(fā)酵時間的確定
發(fā)酵乳樣品從發(fā)酵開始到發(fā)酵乳pH值下降至4.5所需的時間為發(fā)酵時間。
1.2.3 滴定酸度的測定
取發(fā)酵乳樣品5.0 g,加入40 mL蒸餾水,混合均勻,加入5滴0.5%酚酞指示劑,用標準0.1 mol/L NaOH滴定至淡粉色,1 min不消失為宜。滴定酸度(吉爾涅爾度°T)為100 mL發(fā)酵乳消耗0.1 mol/L NaOH的毫升數(shù)[5]。
1.2.4 黏度的測定
將發(fā)酵乳樣品調至室溫,用Brookfield DV-1 VISCOMETER黏度儀(Brookfield Engineering Labora?tories,Inc,Middleboro,MA)4#轉子對其進行測定,轉子轉速100 rpm,扭矩20~100%,測定時間30 s[5]。
1.2.5 脫水收縮性的測定
稱取20.0 g發(fā)酵乳樣品,置于帶有濾紙的漏斗中,4℃放置120 min,收集濾液并稱重。脫水收縮性(%)=(濾液重g/樣品重量g)×100%[5]。
1.3.1 菌株DNA提取
將菌株在脫脂乳培養(yǎng)基中35℃培養(yǎng)10 h,以2%接種量接種于M17培養(yǎng)基中擴大培養(yǎng)三代,將第三代M17液體培養(yǎng)液離心(3 000 g/min,10 min)并收集菌體。收集的菌體采用OMEGA-D3392基因組DNA提取試劑盒提取樣品中基因組DNA,置于4℃?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2 基因組測序
采用PacBio SMRT測序流程對提取的基因組DNA建立10-kb文庫,建庫后采用PacBio RS II測序平臺進行全基因組測序。
1.3.3 生物信息學分析
基因組組裝采用Hierarchical Genome Assembly Process(HGAP)workflow(PacBioDevNet;Pacific Bio?sciences)[6]。利用Glimmer 3.02[7]對組裝后的基因組序列進行CDS預測。tRNA和rRNA分別采用tRNAscan-SE 1.23[8]和RNAmmer 1.2[9]進行預測。預測的CDS用nr數(shù)據(jù)庫,COG[10]和RAST[11]進行功能基因預測。
ND-07基因組數(shù)據(jù)和注釋結果已經(jīng)上傳到了NCBI的Genbenk數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/),收錄號為:CP016394。
本研究對ND-07和YX-S的發(fā)酵乳樣品從發(fā)酵開始到發(fā)酵乳pH值下降至4.5所需的發(fā)酵時間,發(fā)酵終點和4℃后熟12 h后的滴定酸度、黏度和脫水收縮性等發(fā)酵特性進行了分別測定,所有發(fā)酵特性的測定均采用5個生物學重復。
如表1所示,菌株ND-07的滴定酸度和脫水收縮性等發(fā)酵特性與商業(yè)化菌株YX-S相比無顯著差異。在發(fā)酵時間方面,ND-07的發(fā)酵時間為8.30±0.78,比YX-S的發(fā)酵時間稍長。在黏度方面,ND-07在發(fā)酵終點的黏度為1249±188.17 cp,顯著高于YX-S在發(fā)酵終點的黏度,而在4℃后熟12 h后,ND-07和YX-S的黏度無顯著差異。我們知道產(chǎn)黏特性好的菌株可以減少發(fā)酵乳的乳清析出,提高組織狀態(tài)[12]。因此,產(chǎn)黏特性是商業(yè)化菌株的一個重要的評價指標。黏度主要受發(fā)酵菌株所產(chǎn)EPS影響,黏度較高表明ND-07具有富產(chǎn)EPS的能力。
表1 菌株ND-07和YX-S的發(fā)酵乳發(fā)酵特性
綜合分析發(fā)現(xiàn),菌株ND-07的發(fā)酵特性與商業(yè)化菌株YX-S相比,在滴定酸度和脫水收縮性等方面無顯著差異,ND-07的發(fā)酵時間稍長,發(fā)酵終點的黏度甚至要高于YX-S,表明ND-07具有進一步開發(fā)成為商業(yè)化發(fā)酵菌株的巨大潛力。
為了全面了解菌株ND-07的發(fā)酵特性,深入分析ND-07產(chǎn)EPS的分子機制,本研究利用Pacbio RS II第三代測序平臺對ND-07進行了全基因組測序。ND-07基因組為環(huán)狀(見圖1)?;蚪M全長為1 869 510-bp,GC含量為39.0%。共編碼2 095基因,包含1 959個功能基因、15個rRNA、57個tRNAs和64個假基因(見表2)。
圖1 ND-07基因組圖譜
表2 ND-07基因組基本信息
利用COG對編碼基因進行功能分類后發(fā)現(xiàn)有991個基因具有明確的生物學功能,占全部編碼基因的50.6%(見圖2)。其中與氨基酸轉運和代謝(Amino acid transport and metabolism)相關的功能基因最多,達到了173個,占全部編碼基因的11.3%。其次為與復制、重組和修復(Replication,recombination and repair)相關的基因,為167個。排在第三位的是與翻譯以及核糖體結構和生物起源(Translation,ribosomal struc?ture and biogenesis)相關的基因,為141個。這三類功能基因占全部編碼基因的24.6%。此外,基因組中還包含有64個參與碳水化合物轉運和代謝相關的基因,主要參與乳糖、半乳糖、蔗糖、麥芽糖和海藻糖等重要的低聚糖的轉運和代謝。
圖2 ND-07基因組基因COG功能分類
通過比較基因組分析發(fā)現(xiàn)ND-07基因組中含有一個20.5-kb的EPS基因簇,其中包括19個與產(chǎn)EPS相關的基因(ND-07_1743 to ND-07_1762)(見圖3)。在基因簇5'端是deoD基因,它是一個嘌呤核苷磷酸化酶,主要參與核苷酸的生物合成和分解代謝[13]。在基因簇3'端是orf14.9基因,主要參與嗜熱鏈球菌的細胞生長[14]。雖然基因簇中的一些基因的準確功能目前還不是特別清楚,但是前人的研究表明epsA和epsB對EPS基因簇具有調控作用,eps1C和eps1D決定EPS基因簇的長度[13]。epsE基因編碼糖基磷酸鹽轉移酶,主要參與EPS基礎重復單元的組裝[13]。epsF基因主要參與莢膜多糖和多糖O抗原的合成。epsG和epsH基因分別編碼半乳糖基轉移酶和糖基轉移酶。在基因簇末端,epsI基因編碼參與EPS重復單元輸出的催化酶,epsJ基因催化EPS重復單元轉換為呋喃糖[15]。
圖3 ND-07的EPS基因簇
需要特別說明的是,在ND-07的EPS基因簇中含有兩對epsC-epsD基因(eps1C-eps1Dandeps2C-eps2D)。我們知道epsC和epsD基因與EPS鏈的長度相關[16],EPS基因簇中含有兩對epsC-epsD基因表明菌株可以生產(chǎn)出兩種不同鏈長的EPS。因此,ND-07的EPS基因簇中含有兩對epsC-epsD基因可能表明ND-07可以合成出兩種不同分子量大小的EPS。Wu等人首次在S.thermophilusASCC 1275基因組中發(fā)現(xiàn)了EPS基因簇中含有兩對epsC-epsD基因,并認為這兩對epsC-epsD基因與莢膜多糖和黏液多糖的合成相關[17]。S.thermophilusASCC 1275是一種重要的乳品發(fā)酵劑菌株,它是目前發(fā)現(xiàn)的產(chǎn)EPS能力最強的一株S.thermophilus[17]?;蚪M共線性分析發(fā)現(xiàn)ND-07的EPS基因簇序列與S.thermophilusASCC 1275的EPS基因簇序列具有高度序列相似性和共線性,由此我們推斷ND-07基因組中的EPS基因簇同樣是一個富產(chǎn)EPS的基因簇,并且可以產(chǎn)生兩種分子量大小的EPS:莢膜多糖和黏液多糖。
通過與商業(yè)化菌株YX-S比較,發(fā)現(xiàn)ND-07具有黏度高,持水性好等優(yōu)良發(fā)酵特性,這些特性均與菌株富產(chǎn)EPS相關。全基因組分析發(fā)現(xiàn),ND-07基因組中含有一個20.5-kb的EPS基因簇,其中包含兩對決定EPS鏈長度的epsC-epsD基因,表明ND-07可以產(chǎn)生兩種EPS:莢膜多糖和黏液多糖。本研究在分子水平揭示了菌株富產(chǎn)EPS的深層機制,為ND-07的商業(yè)化開發(fā)奠定了基礎。
[1]HOLS P,HANCY F,FONTAINE L,et al.New insights in the mo?lecular biology and physiology ofStreptococcus thermophilusrevealed by comparative genomics[J].FEMS Microbiology Reviews,2005,29(3):435-463.
[2]PETERSEN B L,DAVE R I,MCMAHON D J,et al.Influence of capsular and ropy exopolysaccharide-producingStreptococcus thermophi?luson Mozzarella cheese and cheese whey[J].Journal of Dairy Science,2000,83(9):1952-1956.
[3]ZISU B,SHAH N P.Low-fat mozzarella as influenced by microbial exopolysaccharides,preacidification,and whey protein concentrate[J].Journal of Dairy Science,2005,88(6):1973-1985.
[4]SUN Z H,LIU W J,GAO W,et al.Identification and characteriza?tion of the dominant lactic acid bacteria from kurut:the naturally fer?mented yak milk in Qinghai,China[J].The Journal of General and Ap?plied Microbiology,2010,56(1):1-10.
[5]烏蘭.酸乳發(fā)酵劑菌株的篩選[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學,2011.
[6]CHIN C S,ALEXANDER D H,MARKS P,et al.Nonhybrid,fin?ished microbial genome assemblies from long-read SMRT sequencing data[J].Nature Methods,2013,10(6):563-569.
[7]DELCHER A L,BRATKE K A,POWERS E C,et al.Identifying bacterial genes and endosymbiont DNA with Glimmer[J].Bioinfor?matics,2007,23(6):673-679.
[8]LOWE T M,EDDY S R.tRNAscan-SE:a program for improved de?tection of transfer RNA genes in genomic sequence[J].Nucleic Acids Research,1997,25(5):955-964.
[9]LAGESEN K,HALLIN P,RODLAND E A,et al.RNAmmer:con?sistent and rapid annotation of ribosomal RNA genes[J].Nucleic Acids Research,2007,35(9):3100-3108.
[10]TATUSOV R L,GALPERIN M Y,NATALE D A,et al.The COG database:a tool for genome-scale analysis of protein functions and evolution[J].Nucleic Acids Research,2000,28(1):33-36.
[11]OVERBEEK R,OLSON R,PUSCH G D,et al.The SEED and the Rapid Annotation of microbial genomes using Subsystems Tech?nology(RAST)[J].Nucleic Acids Research,2014,42(Database is?sue):D206-214.
[12]GUZEL-SEYDIM Z B,SEZGIN E,SEYDIM A C.Influences of exopolysaccharide producing cultures on the quality of plain set type yogurt[J].Food Control,2005,16(3):205-209.
[13]BROADBENT J R,MCMAHON D J,WELKER D L,et al.Bio?chemistry,genetics,and applications of exopolysaccharide production inStreptococcus thermophilus:a review[J].Journal of Dairy Science,2003,86(2):407-423.
[14]TYVAERT G,MOREL C,JOLY J P,et al.The constant gene orf14.9,which belongs to the variable eps(exopolysaccharide)clus?ter,is involved in the cell growth ofStreptococcus thermophilus[J].Cana?dian Journal of Microbiology,2006,52(9):908-912.
[15]GERMOND J E,DELLEY M,D'AMICO N,et al.Heterologous expression and characterization of the exopolysaccharide fromStrepto?coccus thermophilusSfi39[J].European Journal of Biochemistry,2001,268(19):5149-5156.
[16]MINIC Z,MARIE C,DELORME C,et al.Control of EpsE,the phosphoglycosyltransferase initiating exopolysaccharide synthesis inStreptococcus thermophilus,by EpsD tyrosine kinase[J].Journal of Bacte?riology,2007,189(4):1351-1357.
[17]WU Q,TUN H M,LEUNG F C,et al.Genomic insights into high exopolysaccharide-producing dairy starter bacteriumStreptococcus ther?mophilusASCC 1275[J].Scientific Reports,2014,4:4974.