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        高效液相熒光法測(cè)定豬肉中抗氧化劑乙氧基喹啉以及代謝產(chǎn)物二聚乙氧基喹啉

        2018-06-14 08:06:00舒曉夢(mèng)趙素娟王羚佳郭登峰陳祥貴楊瀟羅靜
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2018年5期
        關(guān)鍵詞:檢測(cè)方法

        舒曉夢(mèng),趙素娟,王羚佳,郭登峰,陳祥貴,楊瀟,羅靜

        (西華大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,四川 成都,610039)

        乙氧基喹啉又稱乙氧喹啉、山道喹、虎皮靈、防老劑AW、抗氧喹、乙氧喹,化學(xué)名稱:6-乙氧基-1,2-二氫化-2,2,4-三甲基喹啉(6-ethoxy-1,2-dihydro-2,2,4-trimethylquinoline,EQ)。英文名:ethoxyquin,相對(duì)分子質(zhì)量:217.31。它具有較強(qiáng)的防霉和保鮮作用,可防止脂肪、蛋白質(zhì)飼料在貯存過程中變質(zhì),常被用于蘋果、梨等水果的保鮮;另外,它具有較強(qiáng)的抗氧化作用,是目前動(dòng)物飼料中應(yīng)用廣泛、效果好而又經(jīng)濟(jì)的抗氧化添加劑[1-3]。

        二聚乙氧基喹啉,化學(xué)名稱:8-(6-乙氧基-2,2,4-三甲基-1,2-二氫-1-喹啉基)-6-乙氧基-2,2,4三甲基-1,2-二氫喹啉,英文名:ethoxyquin dimer(EQDM),相對(duì)分子質(zhì)量:432.59,該品為乙氧基喹啉在生物體內(nèi)的主要代謝物[4-6],其在生物體中的含量與喂入生物體乙氧基喹啉的量有關(guān)[7],且有較好的穩(wěn)定性[5]。

        由于對(duì)EQ的毒理性質(zhì)已有清楚的了解,目前國內(nèi)外對(duì)食品中EQ的限量值已有明確的規(guī)定[8-9],也建立了針對(duì)EQ的檢測(cè)方法[10-14]。但是EQ的主要代謝產(chǎn)物EQDM的潛在毒性目前尚不清楚,有研究對(duì)EQDM第一階段和第二階段生物轉(zhuǎn)化酶的轉(zhuǎn)錄反應(yīng)進(jìn)行了模擬,發(fā)現(xiàn)在相同的酶系統(tǒng)上,EQDM的生物轉(zhuǎn)化與母體化合物(EQ)的生物轉(zhuǎn)化相當(dāng),能激活相同的酶體系[15-17]。由于EQDM的穩(wěn)定性比EQ更好[5],可能產(chǎn)生更高的殘留量,因而可能存在安全風(fēng)險(xiǎn)。但目前的研究中對(duì)于EQDM的檢測(cè)方法卻鮮有報(bào)道。

        在本研究中通過優(yōu)化樣品前處理方法和液相分析檢測(cè)條件建立了同時(shí)檢測(cè)豬肉中EQ及其代謝產(chǎn)物EQDM的高效液相熒光法。經(jīng)方法學(xué)評(píng)價(jià),該方法具有較好的精密度和準(zhǔn)確性。本研究的結(jié)果可以為EQDM的代謝過程、毒理學(xué)性質(zhì)研究,以及EQ和EQDM在豬肉中殘留量的監(jiān)測(cè)提供有效的分析檢測(cè)方法。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        豬肉,市售;正己烷、丙酮、乙酸(色譜純)、乙腈(色譜純),購自美國Tedia公司;EQ標(biāo)準(zhǔn)品(純度>98%),EQDM標(biāo)準(zhǔn)品(純度>98%),購自上海甄準(zhǔn)生物科技有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        LC20高效液相色譜儀(帶熒光檢測(cè)器),日本島津公司;RF6000熒光分光光度計(jì),日本島津公司;TB-214電子天平型,北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;MS3組織勻漿機(jī),德國IKA公司;BZF-50真空干燥箱,上海博迅醫(yī)療生物儀器股份有限公司;微型攪拌器、超聲波清洗儀,中國玉環(huán)曙峰企業(yè)。

        1.3 樣品的前處理方法

        稱取一定量的樣品,用濾紙吸干表面水分,組織勻漿機(jī)勻漿后稱取5.000 g的樣品,于50 mL具塞離心管中,加入15 mL正己烷,30 ℃超聲提取10 min,4 ℃ 5 000 r/mim離心10 min,提取10 mL上清液30 ℃真空干燥至近干,再加入1 mL乙腈溶解,并經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后,待測(cè)。

        1.4 HPLC分析測(cè)試條件

        色譜柱: Kromasil C18柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);檢測(cè)器:熒光檢測(cè)器,激發(fā)波長:360 nm,吸收波長:440 nm;流動(dòng)相:V(乙腈)∶V(2%乙酸)=85∶15,柱溫為30 ℃;流速1 mL/min;進(jìn)樣量:20 μL。

        1.5 樣品中EQ和EQDM含量的定量分析

        以EQ和EQDM的保留時(shí)間(RTEQ:5.86 min、RTEQDM:32.44 min)定性。以外標(biāo)法定量,分別以各標(biāo)準(zhǔn)溶液峰面積及對(duì)應(yīng)質(zhì)量建立標(biāo)準(zhǔn)曲線及回歸方程,再根據(jù)樣品中EQ和EQDM的峰面積,按下式計(jì)算樣品中EQ和EQDM的含量:

        (1)

        (2)

        式中:CEQ,樣品中EQ的含量,μg/g;CEQDM,樣品中EQDM的含量,μg/g;MEQ,20 μL樣品液中EQ的含量,μg;MEQDM,20 μL樣品液中EQDM的含量,μg;20,樣品進(jìn)樣體積20 μL;1 000,樣品提取液揮干后定容至1 000 μL;15,提取液體積,mL;10,移取10 mL提取液上清進(jìn)行真空干燥,mL;MS,取樣量,g。

        1.6 EQ、EQDM檢測(cè)方法的條件優(yōu)化與評(píng)價(jià)

        1.6.1 色譜分離檢測(cè)條件的優(yōu)化

        根據(jù)EQ、EQDM標(biāo)準(zhǔn)品的熒光光譜選擇適合的激發(fā)和發(fā)射波長,并在該條件下比較不同比例流動(dòng)相、流速和柱溫的對(duì)EQ、EQDM的分離效果,從而篩選出適合的色譜分離條件。

        1.6.2 EQ、EQDM的前處理優(yōu)化

        為優(yōu)化樣品破碎方法,對(duì)樣品分別采用勻漿機(jī)破碎和液氮研磨兩種破碎方法進(jìn)行處理。為優(yōu)化提取溶劑種類,分別采用丙酮、乙腈、正己烷對(duì)EQ、EQDM進(jìn)行提取。通過比較提取液中EQ、EQDM的加標(biāo)回收率和RSD值,從而選擇適合的樣品破碎方法和提取溶劑。

        1.6.3 方法學(xué)評(píng)價(jià)

        為評(píng)價(jià)該方法的重現(xiàn)性,取5份加標(biāo)平行樣品,根據(jù)樣品處理和檢測(cè)條件測(cè)定EQ、EQDM的含量,分別計(jì)算其RSD值。為評(píng)價(jià)方法的穩(wěn)定性,將5份加標(biāo)樣品按上述樣品提取后分別放置0、3、6、9、12 h后檢測(cè),分別計(jì)算其RSD值,考察其穩(wěn)定性。為評(píng)價(jià)方法的準(zhǔn)確度,在樣品中分別加入0.012、0.036、0.060 μg EQ和0.045、0.075、0.096 μg EQDM標(biāo)準(zhǔn)品,按本研究所確定的樣品前處理方法和檢測(cè)條件,對(duì)每個(gè)加標(biāo)濃度樣品進(jìn)行5次平行試驗(yàn),計(jì)算其加標(biāo)回收率和RSD值。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 EQ、EQDM最適檢測(cè)條件優(yōu)化

        在已有研究的基礎(chǔ)上確定EQ、EQDM的最適的激發(fā)和發(fā)射波長[18-19],設(shè)置激發(fā)波長為360 nm時(shí),在發(fā)射波長400~500 nm檢測(cè),發(fā)現(xiàn)EQ和EQDM在440 nm處均有最大的熒光強(qiáng)度;設(shè)置發(fā)射波長為440 nm時(shí),在激發(fā)波長250~500 nm,檢測(cè)發(fā)現(xiàn)EQ和EQDM在360 nm處有較大的熒光強(qiáng)度(如圖1)。因此,將熒光檢測(cè)器的檢測(cè)條件設(shè)置為:激發(fā)波長360 nm,發(fā)射波長440 nm。

        2.2 色譜分離檢測(cè)條件優(yōu)化

        通過比較不同比例流動(dòng)相、柱溫的分離效果,經(jīng)比較發(fā)現(xiàn)流動(dòng)相:V(乙腈)∶V(2%乙酸)=85∶15、柱溫:30 ℃、流速:1 mL/min時(shí),目標(biāo)化合物的柱效(大于2 000)和分離度(大于2.5)較高,同時(shí)EQ的保留時(shí)間:5.86 min,EQDM的保留時(shí)間:32.44 min,對(duì)樣品的分析時(shí)間在35 min完成、基線平穩(wěn)、噪音小、峰形尖銳對(duì)稱并無拖尾現(xiàn)象,如圖2所示。

        2.3 方法的線性范圍和定量限

        用流動(dòng)相V(乙腈)∶V(2%乙酸)=85∶15配制濃度為8×10-3μg/mL的EQ標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別進(jìn)樣20、40、60、80、100 μL,對(duì)應(yīng)EQ質(zhì)量為:16×10-5、32×10-5、48×10-5、64×10-5、80×10-5μg;配制質(zhì)量濃度為0.01 μg /mL的EQDM標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別進(jìn)樣60、80、100、120、140 μL,對(duì)應(yīng)EQDM質(zhì)量為:0.6×10-3、0.8×10-3、1.0×10-3、1.2×10-3、1.4×10-3μg。按照1.4中的色譜條件進(jìn)行分析,以標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)量(μg)為橫坐標(biāo),以峰面積為縱坐標(biāo)作圖,建立線性回歸方程。所得EQ回歸方程為:Y=604.27X-8 446,R2=0.998 6;EQDM回歸方程為:Y=1 425.3X-6 140.8,R2=0.997 6。結(jié)果表明:EQ在16×10-5~80×10-5μg內(nèi),EQDM在0.6×10-3~1.4×10-3μg內(nèi),線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均高于0.99。以10倍信噪比(S/N)計(jì)算定量限,根據(jù)計(jì)算公式該方法的定量限(LOQ)EQ為0.002 4 μg/g,EQDM為0.009 μg/g。

        a-激發(fā)波長為360 nm時(shí),EQ的發(fā)射光譜; b-發(fā)射波長為440 nm時(shí),EQ的激發(fā)光譜; c-激發(fā)波長為360 nm時(shí),EQDM的發(fā)射光譜; d-發(fā)射波長為440 nm時(shí),EQDM的激發(fā)光譜。圖1 EQ和EQDM的熒光光譜Fig.1 The fluorescence spectra of EQ and EQDM

        a-EQ和EQDM混合標(biāo)品色譜圖;b-加標(biāo)樣品色譜圖圖2 色譜分離檢測(cè)條件優(yōu)化Fig.2 Optimization of chromatography separation and detection conditions

        2.4 前處理?xiàng)l件優(yōu)化

        不同的破碎方法下,樣品中EQ、EQDM提取效果有一定的差異。經(jīng)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)采用勻漿機(jī)破碎時(shí)能很好的破碎肌肉組織,EQ、EQDM的回收率相對(duì)較高且RSD值較小(見表1)。而采用液氮研磨時(shí),樣品容易結(jié)冰,不能很好的破碎組織 。這可能是由于目標(biāo)化合物的含量較小,需要較大的樣品取樣量,且肌肉組織中含有較多的水分易結(jié)冰,反而不利于組織充分破碎。因此選用組織勻漿機(jī)進(jìn)行樣品破碎。

        表1 不同破碎方法下EQ、EQDM平均回收率和RSD值Table 1 The average recovery rate and RSD of EQ andEQDM were compared with different crushing methods

        由于EQ和EQDM屬于弱極性化合物,不溶于水,易溶于有機(jī)溶劑[20-22],分別采用乙腈、正己烷、丙酮進(jìn)行提取,結(jié)果發(fā)現(xiàn)回收率:正己烷>丙酮>乙腈(見表2),且RSD值小于5%,雜峰和基線噪音均較小。故選擇正己烷作為提取溶劑。

        表2 不同提取方法下EQ、EQDM平均回收率和RSD值Table 2 The average recovery rate of EQ and EQDM andRSD value were obtained by different extraction methods

        2.5 方法的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性

        取同加標(biāo)樣品提取液共5份,分別進(jìn)樣后,根據(jù)EQ、EQDM的峰面積計(jì)算的RSD值分別為2.44%、3.55%,RSD值均小于5%,表明該方法的重現(xiàn)性良好;同時(shí)將5份加標(biāo)樣品分別放置0、3、6、9、12 h后,分別測(cè)定EQ、EQDM峰面積的RSD值為3.61%、4.06%,RSD值均小于5%,由此表明該方法的穩(wěn)定性良好。

        2.6 方法的加標(biāo)回收率、精密度和檢出限

        在加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn)中,通過來自加標(biāo)的豬肉樣品的分析物回收率來評(píng)估該檢測(cè)方法的準(zhǔn)確性。在5.000 g樣品中按照低、中、高3個(gè)濃度加入EQ和EQDM標(biāo)準(zhǔn)溶液,即:分別加入0.012、0.036、0.060 μg EQ標(biāo)準(zhǔn)液以及0.045、0.075、0.096 μg EQDM標(biāo)準(zhǔn)液進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn),按本研究所確定的EQ、EQDM的最佳前處理方法和檢測(cè)條件,對(duì)每個(gè)加標(biāo)濃度樣品進(jìn)行3次平行試驗(yàn),并計(jì)算EQ、EQDM的加標(biāo)回收率及相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD),結(jié)果(見表3)。該方法對(duì)EQ的平均回收率為93.88%~107.18%,EQDM的回收率為80.74%~83.62%,RSD均小于2%。以3倍信噪比(S/N)計(jì)算檢出限,根據(jù)計(jì)算公式該方法的檢出限(LOD)EQ為0.000 8 μg/g,EQDM為0.003 μg/g。說明該方法的準(zhǔn)確性和重現(xiàn)性好,檢出限低,符合殘留分析要求,能夠滿足檢測(cè)豬肉樣品中EQ、EQDM含量的要求。

        表3 EQ和EQDM回收率和RSD值表Table3 EQ and EQDM Recovery rate and RSD

        2.7 樣品檢測(cè)

        采用此方法對(duì)多批次市售豬肉進(jìn)行抽樣檢測(cè),檢測(cè)結(jié)果表明,此次抽取的樣品均未檢出EQ及其代謝產(chǎn)物EQDM。

        3 結(jié)論

        本實(shí)驗(yàn)建立了采用HPLC—熒光法測(cè)定豬肉中乙氧基喹啉以及代謝產(chǎn)物二聚乙氧基喹啉殘留量的方法。該方法具有操作簡單、選擇性好、背景干擾小的特點(diǎn),對(duì)儀器要求不高,重現(xiàn)性和準(zhǔn)確度都較好,檢出限和定量限較低,滿足豬肉中EQ、EQDM殘留量檢測(cè)的需求。

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