程娜 蔡針華 呂加平 賈震虎 逄曉陽
(1. 山西師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,臨汾 041000;2. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,北京 100193)
保加利亞乳桿菌是一種重要的乳品工業(yè)發(fā)酵用菌株,是發(fā)酵過程中產(chǎn)酸、產(chǎn)風(fēng)味物質(zhì)的主要菌株。保加利亞乳桿菌在發(fā)酵過程中易受噬菌體污染導(dǎo)致發(fā)酵失敗,這一直是困擾乳品工業(yè)的難題。所以研究乳酸菌抵御噬菌體攻擊的機制,并篩選抗噬菌體侵染的菌株是發(fā)酵乳產(chǎn)業(yè)亟待解決的關(guān)鍵問題[1]。噬菌體是專以細(xì)菌作為宿主的一種生物體,通常生活在一些細(xì)菌高密度聚集的地方,乳制品發(fā)酵過程易受噬菌體侵染也正是因為給噬菌體提供了數(shù)量龐大的菌體宿主[2]。相應(yīng)地,細(xì)菌與噬菌體在長期的斗爭中也進(jìn)化出了多種抵御噬菌體侵染的方式。如細(xì)菌可以通過在菌體表面生成胞外多糖類的生物膜[3],利用物理阻隔的方式阻止噬菌體進(jìn)入菌體[4];也可以通過菌體表面的噬菌體受體基因沉默[5],進(jìn)而改變細(xì)菌表面受體來抵抗噬菌體的感染等等。但這些防御系統(tǒng)都無法給細(xì)菌提供特異性免疫,而CRISPR(Clustered regularly interspaced shortpalindromic repeats)以及Cas(CRISPR-associated)蛋白構(gòu)建的防御系統(tǒng)能夠給宿主菌提供特異性免疫以抵抗噬菌體或質(zhì)粒等外源基因的入侵[6],限制基因的水平轉(zhuǎn)移[7],并且具有精準(zhǔn)、高效、可遺傳的優(yōu)勢,近年來受到廣泛關(guān)注。
CRISPR-Cas系統(tǒng)存在于多數(shù)細(xì)菌和古細(xì)菌中,其作為后天獲得性免疫系統(tǒng)能夠抵抗噬菌體、質(zhì)粒等外源DNA的侵染,并且能夠通過不同的噬菌體感染而獲得相應(yīng)噬菌體的抗性[8]。CRISPR-Cas系統(tǒng)由重復(fù)序列(Direct Repeats,DR)、間隔序列(Spacer)、前導(dǎo)序列(Leading sequence)及Cas蛋白共同組成[9]。其中重復(fù)序列高度保守,具有回文序列,可以轉(zhuǎn)錄且形成莖環(huán)結(jié)構(gòu)[10]。間隔序列與噬菌體、質(zhì)粒有著同源性,記錄著該菌株在長期進(jìn)化過程中曾經(jīng)遭受過哪些外源基因的侵入[11-13]。細(xì)菌在感染噬菌體后,噬菌體中的一段序列(Protospacer)被菌體CRISPR/cas系統(tǒng)所識別并被捕獲整合到細(xì)菌基因組的CRISPR區(qū),形成一個間隔序列,正是間隔序列給宿主提供了識別外源噬菌體的能力。研究證實,若刪除間隔序列后,菌株抵抗噬菌體的能力隨之消失[14]。前導(dǎo)序列與重復(fù)序列相連,能夠識別新的間隔序列[15,16],并啟動 crRNA(CRISPR RNAs)的轉(zhuǎn)錄[17]。CRISPR-Cas系統(tǒng)是針對噬菌體等外源基因的獲得性免疫系統(tǒng)[18],并能將這種獲得性免疫系統(tǒng)穩(wěn)定遺傳給后代[8,16,19,20]
目前在乳酸菌上關(guān)于CRISPR-Cas系統(tǒng)防御噬菌體的系統(tǒng)研究只見于嗜熱鏈球菌,在2015年,李婉、霍貴成等[21]已對嗜熱鏈球菌基因組上的CRISPR的組成及抗噬菌體能力和作用機制進(jìn)行了初步的研究和預(yù)測,而另外一株重要的發(fā)酵菌株—保加利亞乳桿菌CRISPR的相關(guān)研究目前較少。因此本文對保加利亞乳桿菌的CRISPR序列進(jìn)行了系統(tǒng)分析,利用生物信息學(xué)方法對CRISPR區(qū)的DR序列進(jìn)行了遺傳進(jìn)化分析并預(yù)測了其二級結(jié)構(gòu),同時對間隔序列也進(jìn)行了同源性分析,為探明保加利亞乳桿菌抗噬菌體的分子機制奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 實驗菌株及培養(yǎng)基 保加利亞乳桿菌LJJ-6來源于實驗室(已在中國普通微生物菌種保藏管理中心進(jìn)行專利保藏,保藏號CGMCC No.11346)、保加利亞乳桿菌ATCC11842來源于中國普通微生物菌種保藏管理中心(菌株編號CGMCC No.1.6970);其他6株分離自市售酸奶,培養(yǎng)基采用MRS肉湯培養(yǎng)基。
1.1.2 試劑與儀器 細(xì)菌基因組提取試劑盒,北京天根生物技術(shù)有限公司;溶菌酶,Solabiro公司;TIANGEN 2×PCRMasterMix,天根生化科技有限公司;引物,華大基因科技有限公司;MRS肉湯,北京陸橋生物技術(shù)有限公司。LDZX-50KB立式壓力蒸汽滅菌器,上海申安醫(yī)療器械廠;Sigma-3K15離心機,德國SIGMA科技有限公司;DYY-6C電泳儀,北京六一儀器廠;Fluor ChemFC2凝膠成像系統(tǒng),美國Alpha公司;TP600-PCR擴(kuò)增儀,TakARA Bio INC;DHP-90278型電熱恒溫培養(yǎng)箱,上海一恒科技有限公司;WD-9403C 紫外儀,北京市六一儀器廠;HDL超凈工作臺,北京東聯(lián)哈爾儀器制造有限公司。
1.2.1 菌株的培養(yǎng)及基因組DNA的提取 將冷凍保存的實驗菌株與從酸奶中分離得到的保加利亞乳桿菌轉(zhuǎn)接到MRS肉湯培養(yǎng)基中,37℃活化培養(yǎng)兩代,每代培養(yǎng)18 h。菌株總DNA的提取按照細(xì)菌基因組提取試劑盒說明書進(jìn)行。
1.2.2 CRISPR序列擴(kuò)增與測序 在NCBI(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/)上查找已公布全基因組序列的9株保加利亞乳桿菌基因組信息作為引物設(shè)計的模板,在9株保加利亞乳桿菌中每一株菌含一個或兩個CRISPR系統(tǒng),僅少部分含2個CRISPR系統(tǒng)。根據(jù)其CRISPR上下游序列的保守性利用Primer Premier 7.0設(shè)計了5種不同類型的CRISPR區(qū)擴(kuò)增引物,確保了 CRISPR位點擴(kuò)增時不被遺漏。然后對8株實驗菌株分別用這5種不同引物進(jìn)行CRISPR一一擴(kuò)增,將有擴(kuò)增結(jié)果的條帶進(jìn)行測序驗證。按試劑盒說明書建立PCR反應(yīng)體系(50 μL):DNA 模板 2 μL;正向引物 1 μL;反向引物 1 μL ;10×LongTaqBufferⅠ 5 μL ;dNTP Mixture(2.5mmol·L-1)4 μL ;ddH2O 37 μL。
PCR反應(yīng)循環(huán)設(shè)置:94℃預(yù)變性3 min,94℃變性30 sec,60℃退火30 sec,72℃延伸3 min,72℃終延伸5 min,37 cycles。結(jié)果檢測:待反應(yīng)結(jié)束后,取PCR反應(yīng)產(chǎn)物5 μL,1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,將目的條帶單一的樣本送公司測序。
1.2.3 CRISPR基因座活性分析 對擴(kuò)增的8株實驗菌的CRISPR與NCBI中已公布全基因組序列的9株德氏乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌的CRISPR序列利用CRISPR Finder(http://crispr.u-psud.fr/Server/)在線軟件進(jìn)行查找,統(tǒng)計標(biāo)準(zhǔn)菌株及實驗菌株中每個CRISPR所含的獨特間隔序列的數(shù)目,分析基因座活性。利用GraphPad Prism 7軟件制作圖。
1.2.4 CRISPR序列同源性分析 對實驗菌株保加利亞乳酸桿菌、標(biāo)準(zhǔn)菌株保加利亞乳酸桿的CRISPR區(qū)進(jìn)行重復(fù)序列整理。將重復(fù)序列利用MEGA7軟件下的鄰接法(Neighbor-JoiningMethod),自展值(Bootstrap value)分析重復(fù)次數(shù)為1 000次構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,對重復(fù)序列進(jìn)行同源性分析。
1.2.5 重復(fù)序列二級結(jié)構(gòu)預(yù)測 將測序得到的重復(fù)序列轉(zhuǎn)換成RNA序列后,在線提交RNAfoldWebServer(http://rna.tbi.univie.ac.at/cgibin/RNAWebSuite/RNAfold.cgi)服務(wù)器,進(jìn)行重復(fù)序列二級結(jié)構(gòu)預(yù)測分析。
根據(jù)NCBI 中已公布全基因組序列的德氏乳桿菌保加利亞乳酸桿菌為標(biāo)準(zhǔn)菌株設(shè)計引物,CRISPR區(qū)序列的擴(kuò)增引物如表1。用每一類型的CRISPR引物分別對8株實驗菌進(jìn)行一一擴(kuò)增。擴(kuò)增結(jié)果見圖1。在8株實驗菌均含有一個可信CRISPR區(qū),ATCC11842、GM在以CRISPR1為擴(kuò)增引物的條件下,在大于2 000 bp附近均有清晰條帶出現(xiàn),而在其他引物擴(kuò)增中均未獲得擴(kuò)增條帶;LJJ-6在CRISPR2為擴(kuò)增引物的條件下,在2 000 bp處有清晰單一條帶,其他擴(kuò)增引物均未擴(kuò)增出相應(yīng)的條帶;SY、YL在CRISPR4為擴(kuò)增引物的條件下,在1 000-2 000 bp之間均有清晰條帶,且擴(kuò)增效率高、特異性較強,其他引物擴(kuò)增下均沒有發(fā)現(xiàn)擴(kuò)增結(jié)果;MN、JLB在CRISPR2引物擴(kuò)增下,在800 bp附近均擴(kuò)增出單一條帶,且無非特異性條帶出現(xiàn),其他引物均未獲得擴(kuò)增條帶;WD在CRISPR5為引物下出現(xiàn)了擴(kuò)增結(jié)果,大約在 500 bp附近,其余引物擴(kuò)增下均無擴(kuò)增結(jié)果。將擴(kuò)增的單一條帶送公司測序。
表1 CRISPR序列的擴(kuò)增引物
圖1 CRISPR序列擴(kuò)增
對測序結(jié)果分析整理,用CRISPR-Finder進(jìn)行CRISPR序列查找鑒定,可知圖1中擴(kuò)增條帶均為CRISPR序列。CRISPR序列信息如表2,其中CRISPR序列最長為1 820 bp,含有30個間隔序列,最短僅408 bp,含5個間隔序列。重復(fù)序列最長為36 bp,最短為28 bp。
表2 8株保加利亞乳桿菌CRISPR概況
9株保加利亞乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株及8株實驗菌株,共17株菌各個CRISPR基因座所含的獨特間隔序列數(shù)目散布圖如圖2。其中CRISPR1基因座出現(xiàn)了5次,在基因組中出現(xiàn)頻率較高,其間隔序列最多21個,平均約17個;CRISPR2基因座中間隔序列數(shù)目變化較大,最多為63個,最少只有5個,平均約33個;CRISPR3、CRISPR5在基因組中出現(xiàn)的頻率較低,其基因座間隔序列數(shù)最多為11個,最少僅8個;CRISPR4基因座中的間隔序列數(shù)目最多為39個,最少15個,平均為25個。CRISPR6基因座中間隔序列最多為30個,最少18個,分布均勻每個基因座平均約23個間隔序列。
圖2 CRISPR重復(fù)-間隔序列的數(shù)目分布
由圖2可以看出,CRISPR2基因座中間隔序列數(shù)目的最大值和平均值均為最高,因此推測出保加利亞乳桿菌中CRISPR2基因座最為活躍,則對抗外來基因元件入侵的能力更強,CRISPR4基因座次之。而CRISPR3、CRISPR5基因座中間隔序列數(shù)目最低且在基因組中出現(xiàn)的頻率最低,因此推測保加利亞乳桿菌中CRISPR3、CRISPR5基因座最不活躍。
將8株實驗菌株的重復(fù)序列與NCBI 中已公開全基因組序列的9株標(biāo)準(zhǔn)菌株保加利亞乳桿菌CRISPR重復(fù)序列歸納整理構(gòu)建遺傳進(jìn)化樹(圖3)。該進(jìn)化樹主要包含8個分支,WD菌株的DR與ND02、JCM1738標(biāo)準(zhǔn)菌株的DR位于同一分支;實驗菌株MN、YL與標(biāo)準(zhǔn)菌株2038、DSM20080、KCTC1373的DR位于同一分支,且同源性較高;JLB、SY的DR與標(biāo)準(zhǔn)菌株ND04的DR位于同一分支上,LJJ-6與GM、ATCC11842的DR位于同一分支,同源性高度一致,在進(jìn)化方向上相近。
通過對17株保加利亞乳桿菌CRISPR區(qū)的6種重復(fù)序列RNA二級結(jié)構(gòu)預(yù)測時均發(fā)現(xiàn),重復(fù)序列均可形成如圖4的莖環(huán)結(jié)構(gòu),根據(jù)莖環(huán)的數(shù)量特征可以分為兩類,一類是如圖4(a)、(b)、(c)僅有1個莖區(qū),2個大小不同的環(huán)部分配莖區(qū)兩側(cè),以“環(huán)”為主。另一類是如圖4(d)、(e)、(f)形成多個莖、環(huán),以“莖”為主,同時在序列比對分析還發(fā)現(xiàn)一個重復(fù)序列對應(yīng)多種不同的間隔序列,而一個間隔序列只對應(yīng)一個重復(fù)序列,二級結(jié)構(gòu)的形成可能與新Spacer及cas編碼蛋白的相互作用有關(guān)。據(jù)文獻(xiàn)報道,新Spacer通常會插入CRISPR區(qū)前導(dǎo)序列與第1個 DR 之間[16,17]。
圖3 重復(fù)序列的遺傳進(jìn)化分析
圖4 重復(fù)序列二級結(jié)構(gòu)預(yù)測
細(xì)菌CRISPR作為一種抵御噬菌體攻擊的獲得性防御機制,近年來已經(jīng)成為研究領(lǐng)域的熱點。在乳制品發(fā)酵行業(yè)中,CRISPR作為一種高效的抗噬菌體系統(tǒng),已在嗜熱鏈球菌中被證明[22]。對于每個獨特的間隔序列都是從入侵的外源基因元件中捕獲的,然后整合到自己的基因組中,形成一個獲得性免疫記憶系統(tǒng),產(chǎn)生特異性的記憶功能,在下次有攜帶相同序列或外源片段入侵時,它們會迅速識別,并募集體內(nèi)的相關(guān)cas蛋白(比如cas9)對目標(biāo)基因進(jìn)行切割,產(chǎn)生相對應(yīng)的抗性,來抵抗外源基因的入侵。所以通過基因改造CRISPR結(jié)構(gòu)將已知侵染發(fā)酵的噬菌體保守序列插入發(fā)酵菌的CRISPR結(jié)構(gòu)中,使之形成特異性的記憶免疫系統(tǒng)[23],在噬菌體侵染時會產(chǎn)生相應(yīng)的抗性以抵御這些噬菌體的侵染,這對于開發(fā)抗噬菌體的發(fā)酵菌株具有較好的應(yīng)用前景。本研究中8株保加利亞乳桿菌CRISPR的126個DR序列與126個spacer序列,分別來自8個不同廠家的商品化酸奶,由于發(fā)酵菌株的不同,且在長期進(jìn)化過程中遇到的外源攻擊元件也不同,因此造成菌株CRISPR序列的顯著差異。將17個CRISPR結(jié)構(gòu)進(jìn)行歸納整理為6種不同類型的CRISPR系統(tǒng),對每一類型的CRISPR基因座活性進(jìn)行了預(yù)測分析,結(jié)果顯示spacer序列豐富的其基因座活性高,可能的原因是CRISPR位點越豐富所產(chǎn)生的特異性識別就會越強,由于細(xì)菌CRISPR間隔序列來源于外源核酸片段,而核酸片段通常是指病毒噬菌體、質(zhì)粒DNA。所以來源于噬菌體的外源片段越豐富,產(chǎn)生相應(yīng)抗性的種類就越多,意味著細(xì)菌抗噬菌體能力越強。因此CRISPR基因座中間隔序列的數(shù)目和種類可在一定程度上反映該CRISPR基因座的活性程度[24]。CRISPR系統(tǒng)存在leader序列,repeat序列,spacer片段,cas基因,而leader序列與緊鄰的末端repeat序列之間存在新spacer插入位點,推測可能為相關(guān)cas蛋白的結(jié)合位點[16]。本文研究了9株保加利亞乳桿菌標(biāo)準(zhǔn)菌株及8株實驗菌株的17個CRISPR系統(tǒng)均發(fā)現(xiàn)較為保守的回文結(jié)構(gòu),該回文結(jié)構(gòu)極可能為相關(guān)cas蛋白結(jié)合位點。在對8個實驗菌株的CRISPR結(jié)構(gòu)進(jìn)行研究時發(fā)現(xiàn),除了repeat數(shù)目較多的CRISPR結(jié)構(gòu)有30個之外,有的僅有5個repeat序列的CRISPR結(jié)構(gòu)。
據(jù)文獻(xiàn)報道,獨特的間隔序列是宿主防御入侵的噬菌體或質(zhì)粒DNA形成的一種特異性免疫識別系統(tǒng)[23]。在對實驗菌株間隔序列進(jìn)行比對分析時發(fā)現(xiàn),96條間隔(除已公布序列的ATCC11842菌株的30條)序列中僅15條完全比對上原間隔序列,比對率較低,與Mojica等[25]的研究報道,對4 500條spacer進(jìn)行blast比對分析發(fā)現(xiàn)僅88條與原間隔序列且有較高的相似性。相關(guān)的原因據(jù)Edwards等[26]報道為:第一,spacer序列較短且異常多樣化,能夠比對到顯著相似性外源片段的概率較低;第二,可能是由于對應(yīng)的噬菌體數(shù)據(jù)庫目前還不夠完善,已知噬菌體的序列較少,還不能從現(xiàn)有數(shù)據(jù)庫中檢索到spacer序列相似的外源片段。此外還有49條間隔序列與自然界的質(zhì)粒與噬菌體有著高相似性,且比對到來源于噬菌體的大于質(zhì)粒的,說明很有可能CRISPR結(jié)構(gòu)間有著基因水平轉(zhuǎn)移的現(xiàn)象存在,乳酸菌抗噬菌體能力的強弱可能與CRISPR結(jié)構(gòu)存在一定的聯(lián)系,此外分析時還發(fā)現(xiàn)同一個重復(fù)序列對應(yīng)著多個不同間隔序列,而一個間隔序列只對應(yīng)一個重復(fù)序列,推測可能的原因是重復(fù)序列是一種識別機制,這還有待進(jìn)一步研究的證明。這一點與焦雪等[27]的報道相似。同時對于同源性較高的菌株它們的間隔序列和重復(fù)序列也會存在很大的不一致性,這可能是由于它們的生長環(huán)境不一致造成的差異性。本研究還發(fā)現(xiàn)乳酸桿菌屬的其他菌株Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus2038、KCTC13731、DSM20080與實驗菌株Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricusMN、YL的重復(fù)序列相同,但它們的親緣關(guān)系是相對較遠(yuǎn)的,可能的原因是發(fā)生了水平基因轉(zhuǎn)移CRISPR序列,這種情況在其他菌株中也有發(fā)現(xiàn)[28]??傊?,本研究為探明保加利亞乳桿菌抗噬菌體的分子機制奠定基礎(chǔ),也為篩選、開發(fā)和改造抗噬菌體的發(fā)酵劑菌株提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù),具有較高的實際意義和應(yīng)用價值。
本文以9株已公布全基因組序列的保加利亞乳桿菌和8株實驗株為基礎(chǔ),對保加利亞乳桿菌的CRISPR進(jìn)行了系統(tǒng)的生物信息分析,并對菌株的抗噬菌體侵染能力進(jìn)行了預(yù)測和分析。結(jié)果發(fā)現(xiàn)CRISPR中間隔序列的高度可變性的特點。進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)CRISPR2基因座的活性最高,抗噬菌體能力較強。同時發(fā)現(xiàn)在ATCC11842同一株菌的2個不同CRISPR結(jié)構(gòu)也是存在一定的差異,說明CRISPR結(jié)構(gòu)的多態(tài)性變化。
[1]Andrea Q, Sylvain M, Geneviève M, et al.Streptococcus thermophilus bacteriophages[J].International Dairy Journal, 2010, 20(10):657-664.
[2]Klaenhammer TR, Fitzgerald GF. Bacteriophages and bacteriophage resistance[J].Springer Netherlands, 1994 :106-168.
[3]ChaturongakulS, Ounjai P. Phage-host interplay:examples from tailed phages and Gram-negative bacterial pathogens[J].Frontiers in Microbiology, 2014, 5.
[4]Simon J. Labrie, Julie E. Samson, Sylvain Moineau . Bacteriophage resistance mechanisms[J].Nat Rev Microbiol, 2010, 8(5):317-327.
[5]Bikard D, Marraffini LA, et al. Innate and adaptive immunity in bacteria:mechanisms of programmed genetic variation to fight bacteriophages[J].Current Opinion in Immunology, 2012, 24(1):15-20.
[6]Manica A, Zebec Z, Teichmann D, et al.In vivoactivity of CRISPR-mediated virus defence in a hyperthermophilic archaeon[M]//Molecular Microbiology. :481-491.
[7]Wiedenheft B, Sternberg SH, Doudna JA. RNA-guided genetic silencing systems in bacteria and archaea. [J]. Nature, 2012, 482(7385):331.
[8]Horvath P, Barrangou R. CRISPR/Cas, the immune system of bacteria and archaea[J].Science, 2010, 327(5962):167-170.
[9]李婉, 邊鑫, 王娜娜, 等. 乳酸菌CRISPR-Cas系統(tǒng)研究進(jìn)展[J]. 中國乳品工業(yè) , 2016, 44(12):22-23.
[10]Kunin V, Sorek R, Hugenholtz P. Evolutionary conservation of sequence and secondary structures in CRISPR repeats[J].Genome Biology, 2007, 8(4):R61.
[11]Wang J, Friedman G, Doyon Y, et al. Targeted gene addition to a predetermined site in the human genome using a ZFN-based nicking enzyme[J].Genome Res, 2012, 22(7):1316-1326.
[12]Fyodor D. Urnov, Edward J. Rebar, Michael C. Holmes, et al.Genome editing with engineered zinc finger nucleases[J].Nat Rev Genet, 2010, 11(9):636-646.
[13]Yanfang Fu, Jennifer A Foden, Cyd Khayter, et al. High-frequency off-target mutagenesis induced by CRISPR-Cas nucleases in human cells[J].Nat Biotechnol, 2013, 31(9):822-826.
[14]Prashant Mali, John Aach, P Benjamin Stranges, et al. CAS9 transcriptional activators for target specificity screening and paired nickases for cooperative genome engineering[J]. Nat Biotechnol,2013, 31(9):833-838.
[15]Deveau, H. Barrangou, R. Garneau, et al. Phage Response to CRISPR-Encoded Resistance inStreptococcus thermophilus[J].J Bacteriol, 2007, 190(4):1390-1400.
[16]Barrangou, R. Fremaux, C. Deveau, et al. CRISPR provides acquired resistance against viruses in prokaryotes[J]. Science,2007, 315(5819):1709-1712.
[17]Rodolphe Barrangou. CRISPR-Cas systems and RNA-guided interference[J].Wiley Interdisciplinary Reviews:RNA, 2013,4(3):267-278.
[18]Ruud. Jansen, Jan. D. A. van Embden, Wim. Gaastra, et al.Identification of genes that are associated with DNA repeats in prokaryotes[J].Mol Microbiol, 2002, 43(6):1565-1575.
[19]John van der Oost, Matthijs M. Jore, Edze R. Westra, et al. CRISPR-based adaptive and heritable immunity in prokaryotes[J]. Trends Biochem Sci, 2009, 34(8):401-407.
[20]Deveau, H., J. E. Garneau, S. Moineau. CRISPR/Cas System and Its Role in Phage-Bacteria Interactions[J]. Annual Review of Microbiology, 2010, 64(1):475-493
[21]李婉, 梁宏彰, 張丹青. 等, 嗜熱鏈球菌CRISPR-Cas系統(tǒng)的檢測[J]. 微生物學(xué)報, 2016, (04):680-688.
[22]李婉, 王娜娜, 張丹青, 霍貴成. 嗜熱鏈球菌CRISPR序列的檢測及原間隔序列預(yù)測[J]. 現(xiàn)代食品科技, 2016, 32(10):252-258
[23]Bruggemann, HolgerYoung, JacqueC. Dill, et al. Phage-Induced Expression of CRISPR-Associated Proteins Is Revealed by Shotgun Proteomics inStreptococcus thermophilus[J]. PLoS One, 2012, 7(5):e38077.
[24]Datsenko KA, Pougach K, Tikhonov, et al. Molecular memory of prior infections activates the CRISPR/Cas adaptive bacterial immunity system[J]. Nat Commun, 2012, 3:945.
[25]Mojica FJ, Díez-Villase?or C, García-Martínez J, et al. Intervening sequences of regularly spaced prokaryotic repeats derive from foreign genetic elements[J]. Journal of Molecular Evolution,2005, 60(2):174-182.
[26]Edwards RA, Rohwer F. Viral metagenomics[J].Nature Reviews Microbiology, 2005, 3(6):504-510.
[27]焦雪, 張培軍, 冷東澤, 等. 溫和氣單胞菌CRISPR位點的檢測與分析.中國獸醫(yī)學(xué)報, 2017, 37(05):839-843.
[28]Chakraborty S, Snijders AP, Chakravorty R, et al. Comparative network clustering of direct repeats(DRs)and cas genes confirms the possibility of the horizontal transfer of CRISPR locus among bacteria[J]. Molecular Phylogenetics and Evolution, 2010, 56 :878-887.