劉雪云,徐守宇
1.浙江中醫(yī)藥大學附屬第三醫(yī)院,浙江杭州市310000;2.浙江中醫(yī)藥大學,浙江杭州市310053
骨骼肌穩(wěn)態(tài)取決于蛋白質周轉的動態(tài)平衡。老年人及許多疾病患者很難承受高強度耐力訓練,即>70%單次最大負荷量(one repetition maximum,1RM),每周3次并維持5~12周[1-2]。既往研究表明[3-7],阻血結合低強度抗阻訓練(20%~30%1RM),在增加肌肉體積和力量方面,可產生與高強度抗阻訓練相似的效果,且安全有效。前期我們開發(fā)了阻血誘導骨骼肌肥大大鼠模型[8],基因芯片研究發(fā)現(xiàn),阻血后超過2倍變化的基因共1649個,其中信號轉導接頭蛋白-2(signal-transducing adaptor protein-2,STAP2)和輸入蛋白5(importin 5,Ipo5)有顯著變化[9]。
myostatin是轉化生長因子(transforming growth factor-β,TGF-β)超家族成員之一,是肌肉生長的負調節(jié)因子[10],在維持肌肉蛋白質的動態(tài)平衡中有重要作用。本研究通過shRNA慢病毒感染靶基因STAP2和Ipo5,檢測不同狀態(tài)下STAP2、Ipo5和myostatin表達,探討STAP2和Ipo5對骨骼肌蛋白質周轉的影響。
健康雄性清潔級Sprague-Dawley大鼠12只,初始體質量(310±10)g,鼠齡32周,由浙江中醫(yī)藥大學實驗動物中心提供并飼養(yǎng)。飼養(yǎng)條件:溫度24~26℃,濕度55%~65%,24 h循環(huán)光照,普通飼料喂養(yǎng),自由攝食和飲水。采用隨機數(shù)字法分為模型組和對照組,每組6只。
實驗過程中對大鼠的處置嚴格遵守動物倫理準則和指南的相關規(guī)定。
myostatin抗體、GAPDH抗體:美國PROTEINTECH公司。Ipo5抗體、STAP2抗體:北京博奧森公司。第二抗體:Jackson分裝?;騃po5、STAP2過表達質粒,Lipofectamine 2000轉染試劑盒:美國INVITROGEN公司。ECL試劑盒、PVDF膜(0.45 μm):德國MILLIPORE公司。GL-400SD超聲波細胞破碎儀:南京先歐儀器制造有限公司。5810R型臺式高速冷凍離心機:北京離心機廠。SDS-PAGE蛋白凝膠電泳儀、垂直電泳轉移儀:美國BIO-RAD公司。BTY型脫色搖床:江蘇太倉醫(yī)用儀器廠。FluorChem HD2凝膠成像分析系統(tǒng):美國PROTEINSIMPLE公司。微量移液器:德國EPPENDORF公司。
參照前期研究[8]制備阻血誘導大鼠骨骼肌肥大模型。模型組右后肢在膝上方近關節(jié)處用橡皮筋捆扎,每次30 min,每周2次,共2周。捆扎時在MoorFCPI散斑全幀實時掃描成像系統(tǒng)下觀察外周循環(huán)血流,判斷是否阻血成功。最后一次捆扎24 h后,所有大鼠腹膜注射戊巴比妥鈉1.5 ml/kg麻醉,分離比目魚肌,稱重,立即異戊烷和液氮冷凍,進行細胞體外培養(yǎng)。
將比目魚肌用胰蛋白酶處理成單個細胞,制成細胞懸液,轉入培養(yǎng)液中,入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。采用shRNA慢病毒及過表達質粒轉染模型組細胞,實現(xiàn)候選基因STAP2和Ipo5的敲落、過表達和功能挽救。對照組正常培養(yǎng)。
1.4.1 基因沉默
轉染前24 h將待轉染的細胞置12孔板。加入完全培養(yǎng)基(含有血清和抗生素)1 ml孵育過夜。轉染當天細胞應達到約50%平鋪。準備完全培養(yǎng)基和Polybrene?混合物,Polybrene終濃度為5μg/ml。移去培養(yǎng)基并每孔添加Polybrene/培養(yǎng)基混合物于1 ml。在室溫下溶化慢病毒顆粒,輕輕混勻,加入培養(yǎng)液中;輕輕振動培養(yǎng)板使其混勻并孵育過夜。移去混合培養(yǎng)液,添加完全培養(yǎng)基(不含Polybrene)1 ml,孵育細胞過夜。選擇穩(wěn)定表達shRNA的克隆,根據細胞類型不同將其分成1∶3到1∶5,繼續(xù)在完全培養(yǎng)基中孵育24~48 h。以后每天用Puromycindihydrochloriede篩選穩(wěn)定表達shRNA的克隆。
1.4.2 基因過表達
轉染前1 d,將1.5×105細胞接種于12孔板,加不含抗生素的完全培養(yǎng)基500 μl,保證轉染時細胞匯合達90%~95%。將總RNA 0.8 μg稀釋于無血清無抗生素培養(yǎng)液50 μl中輕輕混勻。將Lipofectamine 2000 2 μl稀釋于無血清無抗生素培養(yǎng)液50 μl中,輕輕混勻,室溫孵育5 min。將以上兩種液體混合,輕輕混勻,室溫孵育20 min。吸去培養(yǎng)板的培養(yǎng)基,用PBS清洗細胞2次。將復合物(總體積100 μl)加入培養(yǎng)孔,前后搖動培養(yǎng)板使其分布均勻。置培養(yǎng)箱孵育4~6 h,更換含血清培養(yǎng)液,去除復合物。48 h后觀察轉入基因表達情況。
1.4.3 基因挽救
細胞基因沉默24 h后,在候選基因過表達質粒轉染(操作同前),實現(xiàn)基因挽救。
收集各組比目魚肌細胞,PBS洗2遍,RIPA裂解液裂解30 min,4℃、12000 r/min離心10 min。收集上清液,加DEPC處理的去離子水20 ml溶解,-80℃保存。
提取的蛋白質6%和10%SDS-PAGE電泳,電轉至甲醇浸透的PVDF膜上,TBST(含150 mmol/L Na-CI、10 mmol/L Tris-HCI、0.5%Tween 20,pH=7.5)洗滌 10 min,共 3 遍 ,加 Ipo5(1∶200)、STAP2(1∶200)、myostatin(1∶1000)、GAPDH(1∶2000)一抗,4℃冰箱過夜。TBST洗膜10 min,共3遍;滴加生物素化二抗(1∶10000),TBST洗膜10 min,共3遍;滴加ECL發(fā)光液孵育5 min,顯影,凝膠成像儀照相記錄。Image-Pro Plus掃描條帶,計算相對灰度。
采用SPSS 19.0進行統(tǒng)計學處理。STAP2、Ipo5及myostatin相對表達量均以(±s)表示,對照組和模型組兩組間比較采用獨立樣本t檢驗;模型組、沉默組、過表達組和挽救組多組間比較采用單因素方差分析,事后兩兩比較采用LSD-t檢驗。顯著性水平α=0.05。
模型組較對照組STAP2表達顯著升高,Ipo5和myostatin表達顯著下降(P<0.001)。見表1、表2。
shRNA慢病毒轉染各組中,與模型組比較,沉默組STAP2表達下降,myostatin表達上升(P<0.05),過表達組STAP2升高,myostatin表達下降(P<0.05),挽救組STAP2和myostatin表達介于沉默和過表達之間,見表3、圖1。與模型組比較,沉默組Ipo5和myostatin表達下降(P<0.05),過表達組Ipo5和myostatin表達上升(P<0.05),挽救組Ipo5和myostatin表達介于沉默和過表達之間。見表4、圖2。對照組、模型組、沉默組、過表達組、挽救組基因myostatin表達隨STAP2降低而升高,隨Ipo5升高而升高。
表1 兩組STAP2和myostain蛋白表達
表2 兩組Ipo5和myostain蛋白表達
表3 各轉染組STAP2和myostain蛋白表達
表4 各轉染組Ipo5和myostain蛋白表達
圖2 各組Ipo5和myostain蛋白表達
流行病學研究表明,90%以上與抗阻訓練相關的損傷是由于肌肉超負荷引起[11]。阻血可有效防止高強度抗阻訓練帶來的肌肉損傷[12-13]。絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)和磷脂酰肌醇 3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)/Akt/哺乳動物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin,mTOR)兩個信號通路是控制蛋白質合成的主要途徑[14-16]。阻血結合低強度抗阻訓練可顯著激活上述兩條信號通路[17-19]。運動刺激還激活Wnt信號通路,進而恢復因年齡或肌源性疾病引起的肌肉損傷[20]。
本研究顯示,STAP2的表達水平和myostatin相反,提示STAP2表達上調可促進蛋白質合成。GTPase活化酶可以激活MAPK三種不同的信號通路[21]。GTPase酶屬于Rho家族,包括Rho、Rac和Cdc42,在肌動蛋白細胞骨架的動態(tài)組織中發(fā)揮中心作用[22]。已有研究發(fā)現(xiàn),STAP2可以直接激活Rac和Cdc42[23],也可以通過Src同源2域,間接銜接黏著斑激酶到Grb2銜接蛋白,間接激活MAPK信號傳導通路[24]。
含IQ基元GTP酶激活蛋白1(IQ motif containing GTPase activating protein 1,IQGAP1)可調節(jié)Cdc42和Rac的活性[25],可與肌動蛋白結合,參與細胞骨架的重組、細胞黏附及細胞周期等多種細胞過程;而Ipo5可通過Wnt信號通路調節(jié)IQGAP1蛋白的轉錄[26]。我們推測,Ipo5可能通過Wnt和MAPK信號通路,調節(jié)蛋白質周轉,進而影響骨骼肌肥大。
有臨床研究表明,阻血訓練24 h后,肌肉蛋白質合成明顯增加,而蛋白質降解未受明顯抑制[17]。Booth[27]研究顯示,蛋白質合成減少可能在肌肉萎縮的始動發(fā)生中起重要作用[28]。我們推測,阻血對骨骼肌肥大的急性效應和慢性效應機制可能并不相同。但本研究未觀察阻血與基因表達的關聯(lián),有待進一步研究。
綜上所述,阻血下,STAP2和Ipo5可通過不同信號通路調節(jié)蛋白質周轉,進而維持骨骼肌動態(tài)平衡。未來需進一步明確基因表達隨阻血時間不同的變化曲線,從而最大程度促進骨骼肌肥大。
[參考文獻]
[1]Kraemer WJ,Adams K,Cafarelli E,et al.American College of Sports Medicine position stand.Progression models in resistance training for healthy adults[J].Med Sci Sports Exerc,2002,34(2):364-380.
[2]Ratamess NA,Alvar BA,Evetoch TE,et al.Progression models in resistance training for healthy adults[J].Med Sci Sports Exerc,2009,41(3):687-708.
[3]Ellefsen S,Hammarstr?m D,Strand TA,et al.Blood flow-restricted strength training displays high functional and biological efficacy in women:a within-subject comparison with high-load strength training[J].Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2015,309(7):767-779.
[4]Laurentino GC,Ugrinowitsch C,Roschel H,et al.Strength training with blood flow restriction diminishes myostatin gene expression[J].Med Sci Sports Exerc,2012,44(3):406-412.
[5]Loenneke JP,Wilson JM,Marin PJ,et al.Low intensity blood flow restriction training:a meta-analysis[J].Eur J Appl Physiol,2012,112(5):1849-1859.
[6]Martin-Hernández J,Marin PJ,Menéndez H,et al.Muscular adaptations after two different volumes of blood flow-restricted training[J].Scand J Med Sci Sports,2013,23(2):114-120.
[7]Vechin FC,Libardi CA,Concei??o MS,et al.Comparisons between low-intensity resistance training with blood flow restriction and high-intensity resistance training on quadriceps muscle mass and strength in elderly[J].J Strength Cond Res,2015,29(4):1071-1076.
[8]Xu SY.Induction of heat-shock protein 72 expression by blood flow limit in a rat model of skeletal muscular myopachynsis[J].Juntendo Med J,2005,51(2):160-166.
[9]Xu SY,Liu XY,Chen ZH,et al.Transcriptional profiling of rat skeletal muscle hypertrophy under restriction of blood flow[J].Gene,2016,594(2):229-237.
[10]Lee SJ.Regulation of muscle mass by myostatin[J].Annu Rev Cell Dev Biol,2004,20:61-86.
[11]Karabulut M,Abe T,Sato Y.The effects of low intensity resistance training with vascular restriction on leg muscle strength in older men[J].Eur JAppl Physiol,2010,108(1):147-155.
[12]Sudo M,Ando S,Poole DC.Blood flow restriction prevents muscle damage but not protein synthesis signaling following eccentric contractions[J].Physiol Rep,2015,3(7):e12449.
[13]Thiebaud RS,Loenneke JP,Fahs CA,et al.Muscle damage after low-intensity eccentric contractions with blood flow restriction[J].Acta Physiol Hung,2014,101(2):150-157.
[14]Huijing PA,Jaspers RT.Adaptation of muscle size and myofascial force ransmission:a review and some new experimental results[J].Scand J Med Sci Sports,2005,15(6):349-380.
[15]Schiaffino S,Dyar KA,Ciciliot S,et al.Mechanisms regulating skeletal muscle growth and atrophy[J].FEBS J,2013,280(17):4294-4314.
[16]劉雪云,李高權,徐守宇.廢用性肌萎縮的蛋白質合成和降解途徑[J].中國運動醫(yī)學雜志,2013,32(7):654-657.
[17]Gundermann DM,Walker DK,Reidy PT,et al.Activation of mTORC1 signaling and protein synthesis in human muscle following blood flow restriction exercise is inhibited by rapamycin[J].Am J Physiol Endocrinol Metab,2014,306(10):1198-1204.
[18]Fry CS,Glynn EL,Drummond MJ,et al.Blood flow restriction exercise stimulates mTORC1 signaling and muscle protein synthesis in older men[J].JAppl Physiol(1985),2010,108(5):1199-1209.
[19]Gundermann DM,Fry CS,Dickinson JM,et al.Reactive hyperemia is not responsible for stimulating muscle protein synthesis following blood flow restriction exercise[J].J Appl Physiol(1985),2012,112(9):1520-1528.
[20]Arthur ST,Cooley ID.The effect of physiological stimuli on sarcopenia;Impact of Notch and Wnt signaling on impaired aged skeletal muscle repair[J].Int J Biol Sci,2012,8(5):731-760.
[21]Florini JR,Ewton DZ,Coolican SA.Growth hormone and the insulin-like growth factor system in myogenesis[J].Endocr Rev,1996,17(5):481-517.
[22]Nobes CD,Hall A.Rho,rac,and Cdc42 GTPases regulate the assembly of multimolecular focal complexes associated with actin stress fibers,lamellipodia,and filopodia[J].Cell,1995,81(1):53-62.
[23]Sekine Y,Ikeda O,Tsuji S,et al.Signal-transducing adaptor protein-2 regulates stromal cell-derived factor-1 alpha-induced chemotaxis in T cells[J].J Immunol,2009,183(12):7966-7974.
[24]Schlaepfer DD,Hanks SK,Hunter T.Integrinmediated signal transduction linked to Ras pathway by GRB2 binding to focal adhesion kinase[J].Nature,1994,372(6508):786-791.
[25]Hart MJ,Callow MG,Souza B.QGAP1,a calmodulin-binding protein with a rasGAP-related domain,is a potential effector for cdc42Hs[J].EMBO J,1996,15(12):2997-3005.
[26]Goto T,Sato A,Adachi S,et al.IQGAP1 protein regulates nuclear localization of β-catenin via importin-β5 protein in Wnt signaling[J].J Biol Chem,2013,288(51):36351-36360.
[27]Booth FW.Physiologic and biochemic effects of immobilization on muscle[J].Clin Orthop Relat Res,1987,219(7):15-20.
[28]劉紅菊,騰鑫紫.廢用性肌萎縮的信號機制研究進展[J].生理科學進展,2011,42(5):386-389.