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        沉默MMP-13對皮膚基底細胞癌細胞侵襲、遷移及Wnt信號通路的影響

        2018-05-23 09:16:57周忠志黃新靈楊雙喜蘭宏偉
        中國老年學雜志 2018年9期
        關鍵詞:信號

        周忠志 黃新靈 楊雙喜 蘭宏偉

        (湖南中醫(yī)藥大學第一附屬醫(yī)院燒傷整形科,湖南 長沙 410007)

        皮膚基底細胞癌(BCC)是常見的皮膚惡性腫瘤之一,占所有皮膚惡性腫瘤的65%~75%,早期表現(xiàn)為細小的半透明樣局部隆起病變,后期癥狀多樣化,容易漏診和誤診〔1,2〕。BCC腫瘤細胞侵襲能力強,嚴重破壞深部組織〔3〕?;|金屬蛋白酶(MMP)-13參與降解細胞外基質和多種腫瘤細胞的遷移、侵襲等過程〔4〕。MMP-13在非小細胞肺癌〔4〕、乳腺癌〔5〕、肝癌〔6〕等多種腫瘤組織中表達量升高,提示MMP-13升高與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展有重要聯(lián)系。本研究探討RNA干擾抑制MMP-13的表達對BCC癌細胞侵襲、遷移能力的影響及作用機制。

        1 材料與方法

        1.1實驗材料 人BCC A431細胞系由湖南中醫(yī)藥大學實驗室保存,胎牛血清、DMEM培養(yǎng)基、Lipofectamine2000轉染試劑盒購自美國Invitrogen公司,Transwell試劑盒購自BD Bioscience公司,蛋白提取試劑盒購自上海碧云天公司,MMP-13抗體購自Calbiochem公司,上皮細胞鈣黏蛋白(E-cadherin)抗體、細胞周期蛋白(Cyclin)D1抗體、β-鏈蛋白(catenin)抗體、β-actin等抗體、羊抗鼠二抗購自美國abcam公司。

        1.2細胞培養(yǎng) A431細胞培養(yǎng)于含有10%胎牛血清、100 U/ml青霉素、100 μg/ml鏈霉素的DMEM高糖培養(yǎng)基中,培養(yǎng)條件為37℃、5% CO2,每天觀察細胞生長狀態(tài),0.25%胰酶消化收集細胞進行傳代,及時更換新鮮培養(yǎng)基,生長狀態(tài)良好的對數(shù)期細胞用于后期實驗。

        1.3細胞轉染 取對數(shù)期細胞,胰酶消化成單細胞懸液,以1×106/孔接種至6孔板中,置于37℃、5% CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,與轉染前1 h更換為不含抗生素的新鮮培養(yǎng)基。待細胞融合度約為80%時按照轉染試劑說明書進行轉染,轉染后每天觀察細胞狀態(tài)。實驗分為3組,對照組:不做任何處理的細胞,加入等量的Lipofectamine2000;MMP-13組:加入Lipofectamine2000和pLightSwith-MMP13-NC;MMP13-siRNA組:Lipofectamine2000和pLightSwith-MMP13-siRNA。各組細胞置于37℃、5% CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)6 h后更換含10%胎牛血清和青霉素、鏈霉素的培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h,Western印跡檢測轉染效果。

        1.4Transwell實驗檢測細胞的侵襲、遷移能力 實驗前將提前配置好的Matrigel膠包被在Transwell小室基底膜上室,置于24孔板上,37℃孵育2 h。將轉染后48 h的各組細胞用不含血清的培養(yǎng)基重懸,以1×103/孔接種于小室上室,下室中加入600 μl 10%胎牛血清的培養(yǎng)基作為趨化因子,待細胞侵襲24 h后,取出小室,棄去培養(yǎng)液,95%乙醇固定15 min,5%結晶紫染色15 min,磷酸鹽緩沖液(PBS)清洗3次,用棉簽輕輕拭去Matrigel膠和上室中未穿出的細胞,在倒置顯微鏡下取上、下、左、右、中5個視野計數(shù),取平均數(shù)表示細胞侵襲、遷移力,每組3個復孔。遷移實驗上室不包被Matrigel膠,其余步驟與侵襲實驗相同。

        1.5Western印跡檢測轉染細胞中β-catenin、CyclinD1、E-cadherin蛋白表達量 取各組轉染后48 h的細胞,PBS洗滌,加入RIPA裂解液,10 000 r/min,4℃離心10 min,保留上清液,利用二喹啉甲酸(BCA)法測定蛋白的濃度,取30 μg蛋白煮沸變性5 min,使用8%~15%的十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)膠進行電泳,待溴酚藍到達膠的底部,終止電泳。將凝膠轉入聚偏氟乙烯(PVDF)膜上,Tris緩沖鹽水-吐溫(TBST)緩沖液清洗后,5%的脫脂奶粉室溫封閉2 h,加入牛奶封閉液稀釋的一抗,室溫下孵育2 h,TBST清洗3次,每次10 min,加入二抗,室溫避光孵育1 h,TBST清洗3次,每次10 min。通過電化學發(fā)光(ECL)蛋白印跡檢測系統(tǒng)進行檢測,以目的條帶灰度值與內參β-actin灰度值的比值為各目的蛋白的相對表達量。

        1.6統(tǒng)計學方法 使用SPSS22.0軟件進行單因素方差分析、t檢驗。

        2 結 果

        2.1各組MMP-13蛋白表達量、細胞遷移、侵襲數(shù)比較 與對照組比較,MMP-13組MMP-13蛋白表達量、細胞遷移、侵襲數(shù)差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05);MMP-13-siRNA組MMP-13蛋白表達量、細胞遷移、侵襲數(shù)均顯著低于對照組及MMP-13組(均P<0.05)。見圖1、表1。

        2.2各組β-catenin、CyclinD1、E-cadherin蛋白表達量比較 與對照組相比,MMP-13組β-catenin、CyclinD1、E-cadherin蛋白表達量差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05);MMP-13-siRNA組β-catenin、CyclinD1蛋白表達量顯著低于對照組及MMP-13組(P<0.05),E-cadherin蛋白表達量顯著高于對照組及MMP-13組(P<0.05)。見表2、圖2。

        圖1 各組MMP-13的表達量

        表1 各組MMP-13蛋白表達量、細胞遷移、侵襲數(shù)比較

        與MMP-13-siRNA組比較:1)P<0.05;下表同

        圖2 各組β-catenin、CyclinD1、E-cadherin蛋白表達情況

        表2 各組β-catenin、CyclinD1、E-cadherin蛋白表達量比較

        3 討 論

        BCC常發(fā)生于面部、頸部、四肢的皮膚表層或附屬器,少見于軀干。研究認為,BCC由太陽輻射、電離輻射、放療、局部慢性炎癥等高危因素引起〔7〕,但發(fā)生發(fā)展機制尚不清楚,治療目前多采用手術切除、放療、局部用藥或光動力療法,但手術和放療治療復發(fā)率較高〔8〕。腫瘤惡化和復發(fā)多是因為局部腫瘤細胞發(fā)生浸潤和遠端轉移。MMPs在降解細胞外基質和血管基底膜的過程中發(fā)揮重要作用,同時調節(jié)多種腫瘤細胞侵襲、遷移過程〔9〕。研究證明,S100A4可通過調節(jié)下游信號通路的靶基因MMPs增強腫瘤細胞侵襲、遷移能力〔10~12〕。MMP-13屬于MMPs家族成員之一,對腫瘤細胞的轉移浸潤過程起重要調節(jié)作用。研究結果顯示,MMP-13的表達量下降可抑制腫瘤細胞侵襲、轉移〔13,14〕。為闡明MMP-13對皮膚基底細胞癌細胞侵襲、遷移的影響,本研究結果提示MMP-13參與了基底細胞癌細胞的侵襲、遷移過程。原癌基因int1與果蠅無翅基因wingless具有同源性,合稱為Wnt。研究發(fā)現(xiàn),Wnt信號通路調節(jié)某些正常的生理過程和誘導多種腫瘤的發(fā)生、發(fā)展〔15〕。Wnt/β-catenin通路是Wnt信號通路的經典途徑。β-catenin是Wnt/β-catenin通路的核心作用因子,其在細胞質的含量升高并逐漸向核內轉移是該通路的標志。Wnt蛋白可降低β-catenin復合物的穩(wěn)定性,妨礙β-catenin磷酸化降解,從而引起β-catenin在細胞質中積累,轉入細胞核中激活Wnt/β-catenin信號通路,增強下游靶基因的表達〔16〕。E-cadherin是Wnt信號通路的重要調節(jié)因子,主要影響β-catenin的活化。在細胞質中,β-catenin可與E-cadherin結合形成黏附性連接,若阻礙β-catenin與E-cadherin形成黏附連接,能夠影響細胞質中β-catenin的磷酸化水平,從而影響Wnt信號通路發(fā)揮作用〔17〕。研究表明,當E-cadherin的表達量下降會降低細胞間的黏附力,導致腫瘤細胞侵襲、轉移能力增強〔18〕。CyclinD1是Wnt信號通路的下游靶基因,調控細胞周期和腫瘤的發(fā)生、發(fā)展。當胞質內β-catenin積累量較多時,細胞膜的通透性增強,β-catenin進入細胞核,激活靶基因CyclinD1的表達,誘導腫瘤的發(fā)生、發(fā)展〔19〕。研究顯示,CyclinD1表達量升高可調節(jié)乳腺癌細胞侵襲、遷移能力〔20〕。本研究提示MMP-13可能通過抑制Wnt信號通路的激活從而降低細胞侵襲、遷移能力,抑制腫瘤惡化。

        綜上,RNA干擾基底細胞癌細胞中的MMP-13的表達可抑制細胞的遷移、侵襲能力,其作用機制可能是通過影響Wnt信號通路的活性發(fā)揮作用。

        4 參考文獻

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