亓麗紅,黃 兵,吳家強(qiáng),宋玲玲,王友令,馬秀麗,于可響,劉 濤,艾 武,徐懷英
(山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 家禽研究所,山東 濟(jì)南 250023)
雞傳染性支氣管炎病毒(IBV)引起雞急性高度接觸性傳染病,以呼吸道癥狀、蛋種雞產(chǎn)蛋量下降、蛋品質(zhì)下降、腎臟病變及胃腸炎變化為主要特征,是目前危害國(guó)際養(yǎng)禽業(yè)的主要疾病之一。由于IBV血清型多,且新的血清型不斷涌現(xiàn),而各型間交叉保護(hù)率低,新的變異株不斷出現(xiàn),組織嗜性也多變,給診斷和防治帶來(lái)一定困難[1-5]。
IBV含有3種結(jié)構(gòu)蛋白,即纖突蛋白S、膜蛋白M和核衣殼蛋白N。N蛋白占病毒總蛋白量的40%,主要作用是包裹核酸,與病毒的復(fù)制有關(guān)[6]。N蛋白還能免疫識(shí)別相關(guān)靶位,在細(xì)胞免疫和體液免疫中起作用。在進(jìn)化過(guò)程中N蛋白比S1蛋白相對(duì)保守,因此我們通過(guò)對(duì)N蛋白進(jìn)行表達(dá),以此作為群特異性診斷抗原,建立了檢測(cè)不同IBV抗體水平的間接ELISA診斷試劑盒。自建試劑盒選擇原核表達(dá)載體pET-32 a(+)構(gòu)建重組表達(dá)質(zhì)粒進(jìn)行融合表達(dá)并純化,解決了IBV全病毒純化困難的問(wèn)題。檢測(cè)雞傳染性支氣管炎病毒抗體的間接ELISA試劑盒,成本低廉、操作簡(jiǎn)便、快速,尤其適合批量樣品的檢測(cè),大大提高了雞傳染性支氣管炎血清學(xué)診斷的效率[7-10]。
IBV-LC2、表達(dá)載體pET32 a、大腸桿菌BL21均為山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院家禽研究所禽病診斷與免疫重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室保存。限制性?xún)?nèi)切酶SalⅠ、EcoRⅤ及Trizol RNA提取試劑購(gòu)自TaKaRa公司;反轉(zhuǎn)錄酶(AMV)、RNA酶抑制劑及dNTP混合物購(gòu)自Promage公司;酶標(biāo)HRP-羊抗雞IgG(工作濃度為1∶3 000)購(gòu)自SouthernBiotech公司;rTaqDNA聚合酶、DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)(Marker)購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司;IBV ELISA檢測(cè)試劑盒購(gòu)自IDEXX公司,其他試劑均為國(guó)產(chǎn)或進(jìn)口分析純。
參照GenBank已公布的IBV-LC2N基因(DQ377139)序列,設(shè)計(jì)一對(duì)特異性引物,正鏈引物為5′-CCGATATCATGGCAAGCGGTAAAGCA-3′(EcoRⅤ位點(diǎn)),負(fù)鏈引物為5′-CCGTCGACACTC AAAGTTCATTCTCTCC-3′(SalⅠ位點(diǎn)),擴(kuò)增片段大小為1 230 bp。引物合成由生工生物工程(上海)有限公司完成。提取核酸,進(jìn)行RT-PCR。PCR循環(huán)參數(shù)為:94 ℃變性2 min后,經(jīng)94 ℃ 1 min,50 ℃ 60 s,72 ℃ 2 min,共30個(gè)循環(huán),最后于72 ℃延伸10 min。將載體pET32 a和PCR產(chǎn)物進(jìn)行EcoR V、SalⅠ雙酶切并回收。用T4 DNA連接酶將二者進(jìn)行16 ℃過(guò)夜連接,轉(zhuǎn)化表達(dá)宿主菌感受態(tài)細(xì)菌BL21,37 ℃溫箱培養(yǎng)16~20 h。挑取單菌落擴(kuò)大培養(yǎng),提取質(zhì)粒,用EcoR V、SalⅠ進(jìn)行雙酶鑒定。將陽(yáng)性重組質(zhì)粒送上海博亞生物技術(shù)有限公司測(cè)序。
將鑒定為陽(yáng)性的重組菌接種于4 mL LB(含100 μg·mL-1Amp)試驗(yàn)培養(yǎng)基中,待37 ℃振蕩過(guò)夜,取出1 mL,離心,去上清,菌體接種于100 mL含Amp的 LB(100 μg·mL-1)培養(yǎng)基中。37 ℃ 200 r·min-1振蕩培養(yǎng)至D600=0.6,加IPTG至終濃度為1.0 mmol·L-1,繼續(xù)誘導(dǎo)培養(yǎng)至4 h,10 000 r·min-1離心5 min,收集菌體,加適量裂解緩沖液,于冰浴中超聲破碎,10 000 r·min-1離心5 min,收集上清。加入等體積SDS-PAGE上樣緩沖液,煮沸3~5 min。每孔上樣15 μL,進(jìn)行SDS-PAGE電泳。用染色液 R-250染色,后放入脫色液中脫色。
將表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE電泳,待電泳分離后,切出含待轉(zhuǎn)膜蛋白的凝膠轉(zhuǎn)至硝酸纖維素膜。用含10%小牛血清的PBST洗液浸泡硝酸纖維膜,37 ℃封閉2 h。用洗液1∶100倍稀釋雞抗IBV陽(yáng)性血清,將硝酸纖維素膜浸泡其中,反應(yīng)1 h,洗液洗膜3次,每次5 min。加入新配置的DAB顯色液,避光反應(yīng)15 min。顯色完成后,將硝酸纖維素膜移至蒸餾水中終止顯色。
按照His-Bind蛋白純化柱使用說(shuō)明進(jìn)行表達(dá)蛋白的純化。將破碎好的重組菌進(jìn)行SDS-PAGE電泳,電泳結(jié)束后取下凝膠,先用雙蒸水洗滌,然后浸入4 ℃預(yù)冷的250 mmol·L-1的KCl溶液中顯色5~10 min,最后用雙蒸水洗滌。將目的蛋白條帶切下,放入2 mL的Eppendorf管中,加少量的PBS洗滌數(shù)次,加少量的PBS,用玻璃棒將其搗細(xì),反復(fù)凍融數(shù)次,8 000 r·min-1離心10 min,吸取上清,SDS-PAGE電泳進(jìn)行純度鑒定,核酸蛋白分析儀測(cè)定蛋白濃度。經(jīng)SDS-PAGE驗(yàn)證后將純化后的蛋白分裝放入-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
用包被緩沖液將IBV N重組蛋白進(jìn)行倍比稀釋?zhuān)籈LISA反應(yīng)板,每孔80、40、20、10、5、2.5 μg·mL-1包被ELISA反應(yīng)板,IBV陽(yáng)性血清和陰性血清經(jīng)大腸桿菌裂解液處理后分別作1∶25,1∶50,1∶100,1∶200,1∶400,1∶800系列稀釋?zhuān)贿M(jìn)行間接ELISA測(cè)定。TMB底物顯色,硫酸終止反應(yīng);測(cè)定光波長(zhǎng)450 nm的D值。在最佳工作條件下,對(duì)收集的20份無(wú)IBV抗體雞血清進(jìn)行間接ELISA測(cè)定,確定陰陽(yáng)性臨界值。
用IBV-N蛋白建立的間接ELISA方法分別檢測(cè)NDV、AIV、EDS-76、IBDV、ILTV等陽(yáng)性血清及IBV陰性血清進(jìn)行交叉反應(yīng)性測(cè)定,每樣本2個(gè)重復(fù)。用2次包被的酶標(biāo)板,檢測(cè)10份IBV陽(yáng)性血清和10份陰性血清,每個(gè)樣品重復(fù)檢測(cè)5次,測(cè)定其變異系數(shù)。純化的重組N蛋白以最佳工作濃度包被封閉后,待其干燥后裝入含干燥劑的包裝袋中4 ℃保存,后隔12個(gè)月取出用已知陰陽(yáng)性血清按所建立的方法進(jìn)行檢測(cè)。
臨床應(yīng)用檢驗(yàn)的樣品80份。應(yīng)用自制ELISA試劑盒和進(jìn)口IDEXX試劑盒同時(shí)檢測(cè)送檢樣品,比較試劑盒的符合率。
將免疫雛雞所孵出的12日齡的雛雞分別在免疫前、免疫H120后5、9、21和28 d采血,分離血清,間接ELISA測(cè)定,分析母源抗體的消長(zhǎng)情況。
陽(yáng)性重組表達(dá)質(zhì)粒經(jīng)EcoR V、SalⅠ雙酶切產(chǎn)生5.9 kb的載體條帶和約1.23 kb的外源基因片段。并將陽(yáng)性重組表達(dá)質(zhì)粒命名為PET32 a-LC2-N。結(jié)果見(jiàn)圖1。測(cè)序結(jié)果顯示插入方向正確,插入片斷為 1 230個(gè)核苷酸,編碼410個(gè)氨基酸。推測(cè)IBV-LC2-N蛋白分子量為45.1 ku,融合伴侶分子量為20.4 ku,整個(gè)表達(dá)融合蛋白為65.5 ku。
1為EcoR V、SalⅠ雙酶切質(zhì)粒pET-LC2-N;2為DNA分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);3為EcoR V、SalⅠ雙酶切質(zhì)粒pET-LC2-N;4為DNA分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)圖1 pET32 a-LC2-N重組質(zhì)粒酶切鑒定的結(jié)果
將含有陽(yáng)性重組載體的大腸桿菌在IPTG誘導(dǎo)下表達(dá),產(chǎn)物經(jīng) SDS-PAGE檢測(cè),在大約65 ku處可見(jiàn)表達(dá)條帶,與預(yù)期蛋白大小相一致,而空載體菌誘導(dǎo)后,沒(méi)有出現(xiàn)此蛋白條帶(圖2)。將目的蛋白進(jìn)行純化(圖3)。Western-blotting分析發(fā)現(xiàn)該融合蛋白能與雞抗IBV陽(yáng)性血清進(jìn)行反應(yīng),具有良好的免疫原性,確定了65.5 ku的蛋白為重組的N蛋白(圖4)。
1為pET-32 a誘導(dǎo)表達(dá)4 h;2~6為pET-32 a-IBV-N-BL21誘導(dǎo)表達(dá)4 h;7 為蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)圖2 重組蛋白的誘導(dǎo)表達(dá)
1為純化的重組蛋白;2為蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);3~6為純化的重組蛋白圖3 重組蛋白的純化
1為重組蛋白;2為蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn);3為pET-32(+)空載體圖4 重組蛋白的Western-blot 檢測(cè)
間接ELISA方陣實(shí)驗(yàn)結(jié)果(表1)取陽(yáng)性血清D450在1.0左右,陰性血清D450在 0.297左右,且陽(yáng)性血清D450/陰性血清D450即P/N值大于2.1的抗原濃度和血清稀釋度為最佳工作濃度,結(jié)果如表1所示。從表1~2可以看出,抗原最佳濃度為20 μg·mL-1,血清最佳稀釋濃度為1∶200。
用IBV-N蛋白建立的間接ELISA方法分別檢測(cè)NDV、AIV、EDS-76、IBDV、ILTV等陽(yáng)性血清及IBV陰性血清進(jìn)行交叉反應(yīng)性測(cè)定,結(jié)果均為陰性,表明該方法與上述病毒無(wú)交叉反應(yīng)。用2次包被的酶標(biāo)板,檢測(cè)10份IBV陽(yáng)性血清和10份陰性血清,每個(gè)樣品重復(fù)檢測(cè)5次,測(cè)定其變異系數(shù)結(jié)果表明,變異系數(shù)最大為4.80%,最小為0.8%。20份血清變異系數(shù)都較小,具有較好的重復(fù)性。隔12個(gè)月取出用已知陰陽(yáng)性血清按所建立的方法進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果顯示,包被本發(fā)明的重組N蛋白保存12個(gè)月仍可用于檢測(cè)。
表1 不同抗原包被量和血清稀釋度對(duì)D450值的影響
注:P代表陽(yáng)性血清;N代表陰性血清。
表2 不同抗原包被量和血清稀釋度對(duì)P/N值的影響
臨床應(yīng)用檢驗(yàn)的樣品80份。應(yīng)用自制ELISA試劑盒和進(jìn)口IDEXX試劑盒同時(shí)檢測(cè)送檢樣品,比較試劑盒的符合率。其中自制ELISA試劑盒檢出陽(yáng)性血清為50份,陽(yáng)性檢出率為62.5%,進(jìn)口IDEXX試劑盒檢出陽(yáng)性血清47份,陽(yáng)性檢出率為58.75%,2種方法的符合率為96.25%(表3)。
表3 血清樣品的檢測(cè)結(jié)果與IDEXX公司的ELISA試劑盒比較
用該試劑盒對(duì)雛雞免疫 IBV H120前及免疫后5、9、21及28 d雞的抗體滴度進(jìn)行檢測(cè),免疫7 d后開(kāi)始出現(xiàn)免疫抗體,然后抗體水平不斷升高,到21 d抗體水平達(dá)到最高峰,隨后抗體水平逐漸下降,28 d時(shí)抗體檢測(cè)為陽(yáng)性,抗體持續(xù)到28日齡(圖5)。
圖5 SPF雛雞免疫后抗體的消長(zhǎng)規(guī)律
IBV核衣殼蛋白又稱(chēng)核蛋白(N蛋白),具有很好的抗原性和免疫原性,在細(xì)胞免疫和體液免疫中起著重要作用。體外表達(dá)的N蛋白能引起免疫應(yīng)答,能使免疫雞增速產(chǎn)生抗IBV抗體,可誘導(dǎo)雞對(duì)IBV氣管感染的免疫保護(hù)作用。用N蛋白免疫雞后,可激活T輔助細(xì)胞,同時(shí)可增強(qiáng)B淋巴細(xì)胞產(chǎn)生抗體的能力。加上N蛋白具有高保守性,這使得N蛋白及其抗體在IBV診斷方面顯示出優(yōu)勢(shì)。核蛋白占病毒總蛋白量大,而且核蛋白為非糖基化蛋白,由于它能檢測(cè)群抗體應(yīng)答,可以作為IBV群特異性診斷抗原。本研究在利用RT-PCR成功獲得了IBVN基因的基礎(chǔ)上,利用原核表達(dá)載體pET-32 a成功地表達(dá)了N蛋白,并證實(shí)了其具有良好的反應(yīng)原性。以此重組N蛋白建立了N-ELISA,經(jīng)特異性、重復(fù)性試驗(yàn)證實(shí)了建立的N-ELISA具有良好的應(yīng)用價(jià)值。
通過(guò)自制試劑盒來(lái)檢測(cè)免疫H120的IBV抗體消長(zhǎng)變化,可知,在免疫7 d后,機(jī)體開(kāi)始產(chǎn)生抗體,然后抗體水平不斷升高,到21 d抗體水平達(dá)到最高峰,隨后抗體水平逐漸下降,抗體持續(xù)到28 d,符合IBV弱毒疫苗抗體的消長(zhǎng)規(guī)律,說(shuō)明該試劑盒的檢測(cè)結(jié)果可以適用于IBV免疫后的抗體水平檢測(cè)。自制試劑盒的包被抗原區(qū)別于IDEXX的包被抗原IBV。自建試劑盒檢測(cè)血清時(shí)做200稀釋。IDEXX試劑盒檢測(cè)樣品時(shí),血清樣品是做500倍稀釋?zhuān)眠@2種方法對(duì)80份血清樣本進(jìn)行檢測(cè),比較它們的檢測(cè)結(jié)果發(fā)現(xiàn),自建試劑盒檢測(cè)D值普遍都比IDEXX試劑盒的D值高。出現(xiàn)這樣的差異可能是由于血清稀釋度不同造成的,也可能與2種試劑盒的包被抗原不同有關(guān)。通過(guò)比較實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明自制試盒質(zhì)量可靠,結(jié)果確實(shí),是一種敏感、快速的臨床檢測(cè)方法。但自制試劑盒其成本低,可以用于大批量檢測(cè),是我們急需研制的國(guó)產(chǎn)同類(lèi)試劑盒,以提高我國(guó)對(duì)IBV的檢測(cè)水平[8,11]。
參考文獻(xiàn):
[1] 劉程. 雞傳染性支氣管炎病毒RT-PCR和RT-LAMP檢測(cè)方法的建立 [D]. 成都:四川農(nóng)業(yè)大學(xué),2012:9-23.
[2] BANDE F, ARSHAD S S, OMAR A R, et al. Global distributions and strain diversity of avian infectious bronchitis virus: a review [J]. Animal Health Research Reviews, 2017, 18(1):70-83.
[3] SEGER W, GHALYANCHI LANGEROUDI A, KARIMI V, et al. Prevalence of avian infectious bronchitis virus in broiler chicken farms in south of Iraq, 2014—2015 [J]. Veterinary Research Forum, 2016, 7(4):317-321.
[4] ZANATY A, ARAFA A S, HAGAG N, et al. Genotyping and pathotyping of diversified strains of infectiousbronchitis viruses circulating in Egypt [J]. World Journal of Virology, 2016, 5(3):125-134.
[5] HEMIDA M G, AL-HAMMADI M A, DALEB A H S, et al. Molecular characterization and phylogenetic analyses of virulent infectious bronchitis viruses isolated from chickens in Eastern Saudi Arabia [J]. Virusdisease, 2017, 28(2):189-199.
[6] 李敏, 李俐睿, 岳建國(guó), 等. 雞傳染性支氣管炎病毒重組N蛋白克隆表達(dá)與免疫原性檢測(cè) [J]. 四川畜牧獸醫(yī),2017, 44(4):24-27.
[7] MODIRI HAMADAN A, GHALYANCHILANGEROUDI A, HASHEMZADEH M, et al. Genotyping of Avian infectious bronchitis viruses in Iran (2015—2017) reveals domination of IS-1494 like virus [J]. Virus Research, 2017, 240:101-106.
[8] 王俞丹, 楊保收, 陳冰, 等. 雞IBV鑒別診斷ELISA方法的研究 [J]. 黑龍江畜牧獸醫(yī),2016(3):116-117.
[9] SULTANKULOVA K T, KOZHABERGENOV N S, STROCHKOV V M, et al. New oligonucleotide microarray for rapid diagnosis of avian viral diseases [J]. Virology Journal, 2017, 14(1):69.
[10] BATRA A, MAIER H J, FIFE M S. Selection of reference genes for gene expression analysis by real-time qPCR in avian cells infected with infectious bronchitis virus [J]. Avian Pathology, 2017, 46(2):173-180. doi: 10.1080/03079457.2016.1235258. Epub 2016 Dec 7.
[11] TSAI C T, TSAI H F, WANG C H. Detection of infectious bronchitis virus strains similar to Japan in Taiwan[J]. Journal of Veterinary Medical Science, 2016, 78(5):867-871.