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        氫氣對大鼠腦缺血/再灌注損傷線粒體功能的影響機制

        2018-05-17 11:30:12張鑫磊陳盼夏裕寧李雪梅戴春光譚永星桂林醫(yī)學院研究生院廣西桂林5400桂林醫(yī)學院附屬醫(yī)院護理部重癥醫(yī)學科廣西桂林5400
        實用醫(yī)學雜志 2018年2期
        關鍵詞:開放度氫氣線粒體

        張鑫磊 陳盼 夏裕寧 李雪梅 戴春光 譚永星桂林醫(yī)學院研究生院(廣西桂林 5400);桂林醫(yī)學院附屬醫(yī)院護理部,重癥醫(yī)學科(廣西桂林5400)

        腦缺血/再灌注(I/R)損傷是臨床常見的具有嚴重危害的病理生理過程,其損傷機制十分復雜,其中ROS自由基的大量生成及釋放是造成細胞損傷的主要因素,并引起一系列的反應。線粒體是細胞內重要的細胞器,I/R發(fā)生時,線粒體結構破壞、功能受損,啟動了線粒體途徑的凋亡[1];其功能和結構的研究對于臨床上I/R損傷的防治具有重要意義,并已成為當前該領域的研究熱點之一。氫氣是一種重要的生理性調節(jié)因子,研究[2]證實其在細胞和器官水平上具有明確的抗氧化應激、抗凋亡作用;本研究擬用大鼠局灶性腦I/R損傷模型,觀察腹腔注射純H2后對大鼠腦I/R后神經功能缺損評分及缺血皮質區(qū)神經細胞ROS生成率、線粒體膜電位水平變化、通透性轉換孔(MPTP)開放度和線粒體腫脹度等影響,探討氫氣對大鼠腦I/R損傷腦皮質區(qū)線粒體功能和結構的調控機制與氧化應激時ROS生成率的相關性。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 實驗動物 成年健康雄性SPF級SD大鼠,體質量為(230±10)g,由桂林醫(yī)學院實驗動物中心提供,許可證號:SCXK(桂)2013?0001。

        1.1.2 氫氣制備 使用純水氫氣發(fā)生器(濟南浩偉實驗儀器有限公司,型號SPE?300)產氫,電解純水后氫氣氧氣比例為2∶1。

        1.2 方法

        1.2.1 動物模型制備及處理 隨機將大鼠分為假手術組(Sham)、腦I/R組(MOD組)、氫氣治療組(H2組)。應用Longa等的方法改良,使大鼠大腦中動脈阻塞形成實驗所需模型。此模型采用左側頸內動脈線栓法。手術采用4%水合氯醛400 mg/kg腹腔注射麻醉。90 min后拔出栓線至頸外動脈殘端內進行再灌注24 h。Sham組除不插入栓線外其余操作同上。H2組于拔出栓線時腹腔注射10 mL氫氣,后每隔12 h注射1次。

        1.2.2 神經功能缺損評分 采用Longa等的5級4分法進行神經功能缺損評分并記錄神經功能癥狀,0分:正常,無神經損傷癥狀;1分:提尾時右側前肢不能完全伸展;2分:行走時向右側轉圈;3分:行走時向右側跌倒;4分:不能自發(fā)行走,意識水平下降。1~3分即為制模成功。

        1.2.3 皮質區(qū)缺血神經細胞線粒體的提取 每組8只,I/R手術24 h后麻醉狀態(tài)下用冰生理鹽水經心臟灌注后取腦,按照線粒體提取試劑盒(索萊寶)步驟進行操作,整個提取過程在0~4℃下進行,線粒體含量以分離出的胞漿蛋白含量表示。提取出的線粒體進行后續(xù)檢測。

        1.2.4 ROS生成率測定 按照活性氧檢測試劑盒(碧云天)操作。用熒光酶標儀進行檢測(Tecan,In?finite F500)熒光強度變化情況(測定5~10 min,激發(fā)波長499 nm,發(fā)射波長521 nm)。測試過程保持37℃恒溫。以熒光強度(RFU)來表示生成速率。

        1.2.5 JC?1法測定△ψm水平變化 按照線粒體膜電位檢測試劑盒(JC?1)說明操作,用熒光酶標儀進行檢測,激發(fā)波長484 nm,發(fā)射波長590 nm,以熒光強度(RFU)來表示各組膜電位水平。同時將此樣本用倒置熒光顯微鏡進行熒光拍照,正常線粒體內,JC?1聚集在線粒體基質中形成聚合物,聚合物發(fā)出強烈的紅色熒光;不健康的線粒體由于膜電位的下降或喪失,JC?1只能以單體的形式存在于胞漿中,產生綠色熒光。

        1.2.6 MPTP開放度測定 按照純化線粒體膜通道孔紅色熒光檢測試劑盒(GENMED)說明操作,用熒光酶標儀進行檢測,激發(fā)波長540 nm,發(fā)射波長580 nm,以熒光強度降低來表明MPTP增強。

        1.2.7 線粒體腫脹度的測定 將提取的線粒體懸液分裝出數(shù)份,加入蔗糖溶液,充分混勻后7 000g,4℃,離心10 min后去上清,重復洗滌1次。加入1 mL蔗糖溶液,混勻后移入清潔的比色杯中,再加入1 μL 200 mmol/L的CaCl2溶液充分混勻。用熒光酶標儀進行檢測在單波長540 nm處每隔30 s連續(xù)監(jiān)測3 min,記錄數(shù)值。

        1.3 統(tǒng)計學方法 實驗結果用SPSS 18.0進行統(tǒng)計分析處理,所得的數(shù)值均以±s表示。各組間數(shù)據(jù)進行單因素方差分析比較,兩兩比較應用最小顯著性差異法(LSD)檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結果

        2.1 SD大鼠神經功能缺損癥狀及評分 Sham組的大鼠無行為學異常,行動敏捷,反應正常;MOD組的大鼠精神不振,前進時向右側轉圈跛行,反應遲鈍;H2組的大鼠行動較MOD組敏捷,行走較快且不轉圈,反應較快,神經功能缺損評分明顯低于MOD組(P<0.01)。見表1。

        表1 各組大鼠神經功能缺損評分(n=6)Tab.1 Neurological deficit scores of rats in each group

        2.2 ROS生成率 熒光強度的大小代表ROS的生成率,結果顯示,與Sham組相比,MOD組ROS水平明顯升高(P<0.01);與MOD組相比,H2組ROS水平有明顯降低(P<0.01),見圖1。

        2.3 線粒體腫脹度的水平 線粒體腫脹時540 nm處吸光度下降,結果顯示,與Sham組相比,MOD組線粒體腫脹度升高(P<0.01);與MOD組相比,H2組線粒體腫脹度降低(P<0.01),見圖2。

        2.4 △ψm水平及MPTP開放度 熒光強度的大小代表△ψm水平及MPTP開放度的高低,結果顯示,與Sham組相比,MOD組△ψm水平降低(P<0.01)、MPTP開放度升高(P<0.01);與MOD組相比,H2組△ψm水平升高(P<0.01)、MPTP開放度降低(P<0.01),見圖 3、4。熒光拍照顯示,與Sham組相比,MOD組紅色熒光減弱,綠色熒光增強;與MOD組相比,H2組紅色熒光增強,綠色熒光減弱,見圖5。

        圖1 R O S生成率Fig.1 Active oxygen generation rate

        圖2 線粒體腫脹度Fig.2 Mitochondrial swelling degree

        圖3 線粒體膜電位 圖4 線粒體熒光拍照 圖5 MPTP開放度Fig.3 Mitochondrial membrane potential Fig.4 Mitochondrial fluorescence photography Fig.5 Opening degree of mitochondrial permeability transition pore

        3 討論

        目前研究發(fā)現(xiàn)[3-4],正常生理狀態(tài)下ROS生成率處于低水平,當I/R使腦細胞產生損傷時ROS自由基的大量生成及釋放引起氧化應激損傷;I/R同時可引起線粒體功能受損,最終造成細胞凋亡,但其具體機制及與ROS生成率的關系尚不明確。為探討大鼠腦I/R皮質區(qū)神經細胞線粒體結構功能異常是否由過量的ROS引發(fā)和H2對神經細胞線粒體結構功能的保護作用機制。本研究擬采用大鼠局灶性腦I/R損傷模型,觀察應用H2后對大鼠腦I/R后神經功能缺損評分及缺血皮質區(qū)神經細胞線粒體功能的影響。

        線粒體作為細胞呼吸和物質氧化的中心,在各種細胞過程中發(fā)揮關鍵作用[5-7]。研究[8]表明,正常生理狀態(tài)下,線粒體膜的完整性維持著△ψm及MPTP開放度處于正常水平?!鳓譵是由線粒體膜內負外正的電位差特性形成,其在維護線粒體內外物質平衡及保持線粒體正常功能方面發(fā)揮著重要作用?!鳓譵是線粒體合成ATP的動力,一旦△ψm消散和(或)電子傳遞受阻導致△ψm下降,可使細胞不能合成足夠的ATP而無法完成正常的生命活動[10]。MPTP是反映線粒體功能及結構完整性的重要指標,防止其大量開放可有效預防腦I/R引起的神經細胞結構損傷及功能損害,現(xiàn)已逐漸成為關注的熱點[11]。同時線粒體通常被認為是在I/R時ROS產生的主要場所,腦I/R損傷初期即有大量的ROS生成[9];本研究結果顯示,Sham組沒有發(fā)生I/R,ROS處于正常水平,未產生氧化應激損傷,線粒體功能指標△ψm,MPTP開放度,腫脹度都處于正常水平。MOD組因發(fā)生I/R,ROS生成率升高產生氧化應激損傷;同時△ψm,MPTP開放度,腫脹度都發(fā)生改變,線粒體功能受損。因此筆者猜測I/R時引起ROS升高,過量的ROS自由基破壞了線粒體膜,引起線粒體功能受損,△ψm水平下降,MPTP開放增加,線粒體發(fā)生腫脹。因此減少ROS的生成,維護線粒體結構完整性,穩(wěn)定△ψm水平,抑制并阻斷病理狀態(tài)下MPTP不可逆的長時程開放,是腦保護的重要環(huán)節(jié)。

        H2是一種重要的生理性調節(jié)因子,能通過氣體擴散穿過血腦屏障和細胞膜及細胞器膜到達線粒體,具有明確的選擇性抗氧化等臟器保護作用。國內外研究表明[12-15],呼吸氫氣或注射飽和氫氣生理鹽水均可通過抗炎、抗氧化和抗凋亡等作用對大鼠腦缺血缺氧和腦創(chuàng)傷,以及對心臟、肺臟、腎臟I/R損傷產生明顯保護作用。本實驗采用電解水制取H2并直接腹腔注射,相比于呼吸氫氣或靜脈注射飽和氫氣生理鹽水效果更加確切,可控性更好。H2主要作用是選擇性清除自由基,減少ROS的產生。活性氧具有很強的氧化還原作用,可以和細胞的各種成分發(fā)生相互作用,引起一些膜和酶的功能改變[16],尤其是線粒體膜損傷,導致細胞損傷,最終導致MPTP開放增加。所以應用氫氣治療后可以減少氧化應激的損害,從而使線粒體膜的破壞程度降低維持其完整性。實驗結果中,使用氫氣治療后與MOD組相比,ROS生成率明顯降低,膜電位明顯升高,MPTP開放度降低,線粒體腫脹度降低,起到了保護線粒體功能的作用。本研究同時引入缺損功能評分檢測,可以更直觀地分析大鼠I/R損傷線粒體功能下降后在行為上的變化,以及氫氣治療后在行為表現(xiàn)上的改善效果。

        綜上所述,I/R同時腹腔注射純氫氣可改善大鼠I/R后的神經功能評分,對I/R損傷后的大鼠有明確的保護作用。其機制可能通過減少ROS生成,減輕氧化應激損傷,維持了線粒體膜完整性從而增強△ψm的穩(wěn)定性限制線粒體MPTP開放,進而維持線粒體結構完整及功能穩(wěn)態(tài)等有關。同時本研究僅從單方面分析了線粒體損傷的機制,存在許多不足,下一步將從細胞自噬方面來分析線粒體損傷的更多可能的機制。

        參考文獻

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