任本洪, 孫雪嬌, 郝躍鵬, 寇俊婷, 牛仕詩, 楊成園, 王曉霞
(山西醫(yī)科大學(xué)生物化學(xué)與分子生物學(xué)教研室, 山西 太原 030001)
原發(fā)性肝癌是一種發(fā)病率高、侵襲性高、易轉(zhuǎn)移的惡性腫瘤,死亡率居全球惡性腫瘤第2位,僅次于肺癌[1]。肝癌具有高復(fù)發(fā)的特點,有研究表明,肝癌術(shù)后1年和2年復(fù)發(fā)率分別為42.8%和38.8%[2];5年復(fù)發(fā)率可達60%左右[3]。因此,對肝癌的發(fā)生和轉(zhuǎn)移機制進行深入研究,尋求有效抑制肝癌發(fā)生發(fā)展的藥物已成為當今肝癌研究的一個方向。
Aurora蛋白激酶是近年來發(fā)現(xiàn)的一組絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶, 由Aurora A、B和C 3個成員組成,它們在催化結(jié)構(gòu)域中具有67%~76%的氨基酸序列同一性,僅僅在NH2末端有所不同[4],分別發(fā)揮著不同的生物功能。近年來研究表明,在卵巢癌[5]、胃癌[6]和乳腺癌[7]中均存在Aurora激酶的高表達。研究Aurora激酶在腫瘤細胞中的作用機理,對研發(fā)腫瘤靶向藥物具有重要的臨床意義。例如AZD-1152(barasertib)、MLN-8237(alisertib)和VX-680(tozasertib)[8]幾個Aurora蛋白激酶抑制劑已步入臨床試驗階段。據(jù)報道,VX-680能夠與Aurora蛋白激酶結(jié)合使Aurora A和B激酶的活性降低[9],導(dǎo)致細胞分裂停止和細胞凋亡,抑制腫瘤細胞生長。然而關(guān)于VX-680對HepG2細胞間黏附能力及遷移能力的影響,目前尚未見文獻報道。因此,本研究將有助于闡明VX-680 的作用機制,從而為臨床用藥提供實驗依據(jù)。
1.1細胞 人肝癌細胞系HepG2由山西醫(yī)科大學(xué)生物化學(xué)與分子生物學(xué)教研室保存。
1.2主要試劑 胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購自Gibco;DMEM高糖培養(yǎng)基購于HyClone;瓊脂粉購于北京索萊寶有限公司;VX-680購于Merck,用DMSO溶解并貯存。
2.1細胞培養(yǎng) 將HepG2細胞用含10% FBS的DMEM高糖培養(yǎng)基于5% CO2、37 ℃培養(yǎng)箱中孵育培養(yǎng)。
2.2細胞緩慢聚集實驗[10]取對數(shù)生長期細胞消化傳代于培養(yǎng)皿中,待細胞長至70%左右時,分別向其中加入不同濃度(3.125 μmol/L,6.25 μmol/L和12.5 μmol/L)的VX-680,放于孵箱中孵育48 h;消化細胞并加入提前用瓊脂鋪好的96孔板中,每組設(shè)置5個平行孔,在孵箱中孵育12 h,觀察細胞聚集情況,拍照并計算各組形成的細胞團數(shù)。
2.3細胞分離實驗[11]取對數(shù)生長期的細胞消化傳代于培養(yǎng)皿中,待細胞長至70%左右時,加入不同濃度(3.125 μmol/L、6.25 μmol/L和12.5 μmol/L)的VX-680作用48 h;常規(guī)消化細胞于48孔板中鋪板,每組設(shè)置10個平行孔,待細胞長滿時,分別用含1 mmol/L EDTA(TE)的0.2%胰酶及1 mmol/L CaCl2(TC)的0.2%胰酶處理細胞,于倒置顯微鏡下計數(shù)單個細胞和細胞團總數(shù)(N),并用 NTC/NTE值來表示細胞分散程度。
2.4劃痕愈合實驗 常規(guī)消化不同濃度 (3.125 μmol/L、6.25 μmol/L和12.5 μmol/L) VX-680作用24 h后的HepG2細胞,使其濃度為1×109/L,接種于35 mm的培養(yǎng)皿中,置于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞匯合長滿后,用200 μL移液槍槍頭在單層細胞上呈“一”字垂直劃痕,用PBS洗2次,然后加入無血清的培養(yǎng)基培養(yǎng),48 h后取出,倒置顯微鏡觀察并拍照,采用Image-Pro Plus軟件測量劃痕寬度。
2.5Western blot 檢測蛋白的表達水平 收集對數(shù)生長期細胞加入含有PMSF的細胞蛋白裂解液,冰上裂解40 min,每隔10 min輕彈1次,以防結(jié)冰,12 000 r/min 離心20 min收集上清液,提取細胞總蛋白,考馬斯亮藍法測定蛋白濃度。采用 SDS-PAGE 進行蛋白分離后,轉(zhuǎn)至0.45 μm NC膜上,5%脫脂奶粉室溫封閉3 h,加入稀釋好的E-鈣黏蛋白(E-cadherin)和β-actin Ⅰ抗,4 ℃搖床過夜,PBST洗膜3次,加入相應(yīng)的 Ⅱ 抗室溫搖床孵育2 h,PBST洗膜3次,使用ECL化學(xué)發(fā)光成像。
利用SPSS 22.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析。實驗結(jié)果用均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),組間兩兩比較采用最小顯著性差異法(LSD法)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
隨著VX-680濃度的增加,細胞聚集形成的細胞團塊數(shù)減少,體積增大,團塊越來越致密;而對照組細胞聚集形成的團塊較多,體積較小,且疏松。通過計數(shù)每組的細胞團數(shù),發(fā)現(xiàn)對照組所形成的細胞團塊數(shù)為63.67±7.2,而實驗組不同濃度(3.125 μmol/L、6.25 μmol/L和12.5 μmol/L)VX-680所形成的細胞團塊數(shù)分別為24.67±3.5、14.0±3.0和1.3±0.6,與對照組相比差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),且各實驗組間差別亦有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。結(jié)果表明實驗組HepG2細胞間的細胞聚集能力明顯高于對照組,并且聚集能力隨VX-680濃度的增加逐漸增強,見圖1。
Figure 1. Aggregation ability of HepG2 cells treated with VX-680 at different concentrations observed under inverted microscope. Mean±SD.n=3.**P<0.01vscontrol group;△P<0.05vs3.125 μmol/L group;#P<0.05vs6.25 μmol/L group.
圖1不同濃度VX-680作用HepG2細胞后的細胞聚集情況
用含1 mmol/L EDTA的胰酶處理后,VX-680各濃度組的HepG2細胞大多分散成單個,各組細胞的分散程度幾乎沒有差異;用含1 mmol/L CaCl2的胰酶處理后,與對照組相比,隨著VX-680濃度的增加,實驗組所形成的細胞團塊越來越大。經(jīng)計算,對照組NTC/NTE值為(0.90±0.13);而不同濃度(3.125 μmol/L、6.25 μmol/L和12.5 μmol/L)VX-680處理組NTC/NTE比值分別為0.48±0.07、0.34±0.03和0.19±0.01,與對照組相比,具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),且各實驗組間差別亦具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。上述結(jié)果表明,實驗組細胞間的細胞黏附能力明顯強于對照組,并且黏附能力隨著VX-680濃度的增加逐漸增強,細胞越來越不容易被分散,見圖2。
劃痕愈合實驗結(jié)果顯示,劃痕后0 h,對照組和VX-680各濃度組的劃痕寬度基本相同,48 h后,對照組的劃痕基本愈合,而VX-680各濃度組細胞的劃痕愈合延遲,并且隨著VX-680濃度的升高,細胞劃痕的愈合能力逐漸降低,與對照組相比,具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01),且各實驗組間差別亦具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。結(jié)果表明VX-680能夠抑制HepG2細胞的遷移,見圖3。
Western blot檢測結(jié)果顯示,DMSO和不同濃度(3.125 μmol/L、6.25 μmol/L和12.5 μmol/L)VX-680作用于HepG2細胞24 h后,細胞中E-cadherin蛋白的表達水平隨著VX-680濃度的增加而升高,差別具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),見圖4。
Aurora激酶在大多數(shù)惡性腫瘤中均存在高表達,如乳腺癌、肝癌、肺癌、胃癌、結(jié)腸癌、食管癌和胰腺癌等。Aurora激酶的過表達可以促進腫瘤細胞增殖,抑制腫瘤細胞凋亡。VX-680可以抑制Aurora激酶的活性,阻滯細胞周期,誘導(dǎo)細胞凋亡[12]。
Figure 2. Dissociation of the HepG2 cells treated with different concentration of VX-680. A: the dissociation ability of the HepG2 cells detected by the method of exposure to trypsin in the presence of EDTA or CaCl2(×200); B: the cell dissociation index (NTC/NTE). Mean±SD.n=3.**P<0.01vscontrol group;△P<0.05vs3.125 μmol/L group;#P<0.05vs6.25 μmol/L group.
圖2不同濃度VX-680作用的HepG2細胞分離情況
Figure 3. The effects of VX-680 at different concentrations on the migration ability of HepG2 cells. A: the representative pictures of wound healing assay (×100); B: the scratch width of HepG2 cells treated with VX-680 at different concentrations. Mean±SD.n=3.**P<0.01vscontrol group;△P<0.05vs3.125 μmol/L group;#P<0.05vs6.25 μmol/L group.
圖3不同濃度的VX-680對HepG2細胞遷移的影響
Figure 4. The protein levels of E-cadherin in the HepG2 cells treated with VX-680 at different concentrations. Mean±SD.n=3.*P<0.05,**P<0.01vscontrol group;△P<0.05vs3.125 μmol/L group;#P<0.05vs6.25 μmol/L group.
圖4不同濃度的VX-680作用下HepG2細胞中E-cadherin蛋白表達水平
腫瘤的發(fā)生和發(fā)展往往與細胞行為的改變有關(guān)。大量的研究顯示,腫瘤細胞間黏附力的下降是造成腫瘤細胞發(fā)生遷移和轉(zhuǎn)移的首要原因,鈣黏蛋白是一類主要介導(dǎo)細胞間同質(zhì)黏附的鈣依賴性跨膜糖蛋白,其中上E-cadherin能以嗜同性方式(同種分子間拉鏈式結(jié)合)介導(dǎo)同型細胞與細胞間的黏附。當E-cadherin失活時,可以促進腫瘤細胞脫離原發(fā)灶發(fā)生轉(zhuǎn)移[13]。本實驗主要采用細胞緩慢聚集實驗和分離實驗闡明了VX-680對人肝癌細胞HepG2細胞間黏附能力的影響。細胞緩慢聚集實驗主要是通過用瓊脂包被培養(yǎng)皿的方式模擬細胞在懸浮狀態(tài)下發(fā)生聚集的情況,通過顯微鏡下觀察細胞聚集成細胞團塊的大小、數(shù)量,來判斷細胞間黏附力的強弱。細胞間黏附力強,所形成的細胞團塊數(shù)少,團塊較大且緊密。細胞間黏附力降低時,所形成的細胞團塊相對多,團塊較小且疏松[14]。細胞分離實驗主要是基于E-cadherin對Ca2+的依賴性而設(shè)計的。首先,我們分別用含EDTA(TE)及 CaCl2(TC)的胰酶處理細胞。用含EDTA(TE)的0.2%胰酶處理細胞后,由于EDTA可以螯合金屬陽離子Ca2+而抑制Ca2+依賴型鈣黏蛋白E-cadherin所介導(dǎo)的細胞與細胞間黏附,使細胞間連接破壞,細胞分散為單個細胞。用含CaCl2(TC)的0.2%胰酶處理細胞后,由于Ca2+的存在E-cadherin的黏附功能可以正常發(fā)揮,單層細胞被分散為單個細胞的能力減弱,細胞團塊增多。也就是說,隨著E-cadherin功能的增強,細胞越來越不容易被分散為單個細胞。因此可以用NTC/NTE來反映E-cadherin的功能[15-18]。NTC/NTE值越小,E-cadherin的功能越強,細胞間黏附能力越強。通過細胞緩慢聚集實驗和細胞分離實驗我們發(fā)現(xiàn),相比對照組,實驗組細胞的細胞聚集能力明顯增強,細胞的分散能力顯著降低;并且隨著VX-680濃度的升高,細胞間的聚集能力逐漸增強。Western blot實驗結(jié)果也證實HepG2細胞中E-cadherin的表達隨著VX-680濃度的升高而增加。另外,劃痕實驗結(jié)果表明,VX-680可以抑制HepG2細胞的遷移。
綜上所述,Aurora蛋白激酶抑制劑VX-680能夠增強人肝癌細胞HepG2細胞間的同質(zhì)黏附力,抑制腫瘤細胞的遷移。
[參 考 文 獻]
[1] Ferlay J, Soerjomataram I, Dikshit R, et al. Cancer incidence and mortality worldwide: sources, methods and major patterns in GLOBOCAN 2012[J]. Int J Cancer, 2015, 136(5):E359-E386.
[2] Que J, Kuo HT, Lin LC, et al. Clinical outcomes and prognostic factors of cyberknife stereotactic body radiation therapy for unresectable hepatocellular carcinoma[J]. BMC Cancer, 2016, 16:451.
[3] Cherqui D, Husson E, Hammoud R, et al. Laparoscopic liver resections: a feasibility study in 30 patients[J]. Ann Surg, 2000, 232 (6):753-762.
[4] Bischoff JR, Plowman GD. The Aurora/Ipl1p kinase family: regulators of chromosome segregation and cytokinesis[J]. Trends Cell Biol, 1999, 9(11):454-459.
[5] Landen CN Jr, Lin YG, Immaneni A, et al. Overexpression of the centrosomal protein Aurora-A kinase is associated with poor prognosis in epithelial ovarian cancer patients[J]. Clin Cancer Res, 2007, 13(14):4098-4104.
[6] Kamada K, Yamada Y, Hirao T, et al. Amplifcation/overexpression of Aurora-A in human gastric carcinoma: potential role in differentiated type gastric carcinogenesis[J]. Oncol Rep, 2004, 12(3):593-599.
[7] Sen S, Zhou H, White RA. A putative serine/threonine kinase encoding gene BTAK on chromosome 20q13 is amplified and overexpressed in human breast cancer cell lines[J]. Oncogene, 1997, 14(18):2195-2200.
[8] Harrington EA, Bebbington D, Moore J, et al. VX-680, a potent and selective small-molecule inhibitor of the Aurora kinases,suppresses tumor growthinvivo[J]. Nat Med, 2004, 10(3):262-267.
[9] Tyler RK, Shpiro N, Marquez R, et al. VX-680 inhibits Aurora A and Aurora B kinase activity in human cells[J]. Cell Cycle, 2007, 6(22):2846-2854.
[10] Comijn J, Berx G, Vermassen P, et al. The two-handed E box binding zinc finger protein SIP1 downregulates E-cadherin and induces invasion[J]. Mol Cell, 2001, 7(6):1267-1278.
[11] Akita K, Tanaka M, Tanida S, et al. CA125/MUC16 interacts with Src family kinases, and over-expression of its C-terminal fragment in human epithelial cancer cells reduces cell-cell adhesion[J]. Eur J Cell Biol, 2013, 92 (8-9):257-263.
[12] Arlot-Bonnemains Y, Baldini E, Martin B, et al. Effects of the Aurora kinase inhibitor VX-680 on anaplastic thyroid cancer-derived cell lines[J]. Endocr Relat Cancer, 2008, 15(2):559-568.
[13] 隋立榮, 呂英志, 孫立斌, 等. 應(yīng)用組織芯片研究E-cadherin在大腸癌的表達[J]. 中國病理生理雜志, 2007, 23(7):1439-1441.
[14] Nagafuchi A, Ishihara S, Tsukita S. The roles of catenins in the cadherin-mediated cell adhesion: functional analysis of E-cadherin-alpha catenin fusion molecules[J]. J Cell Biol, 1994, 127(1):235-245.
[15] Schepis A, Sepich D, Nelson WJ. αE-catenin regulates cell-cell adhesion an membrane blebbing during zebrafish epiboly[J]. Development, 2012, 139(3):537-546.
[16] Sulaiman A, Li L, Wang L, et al. E-cadherin adhesion-mediated Wnt activation for mesodern specificat-ion in human embryonic stem cells needs a soft mattress[J]. Stem Cell Investig, 2016, 3:77.
[17] Gloerich M, Bianchini JM, Siemers KA. Cell division orientation is coupled to cell-cell adhesion by the E-cadherin/LGN complex[J]. Nat Commun, 2017, 8:13996.
[18] Xu XY, Chen F, Sun H, et al. Important factors mediates the adhesion of aspergillus fumigatus to alveolar epithelial cells with E-cadherin[J]. Am J Transl Res, 2016, 8(5):2419-2425.