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        HPLC測定經(jīng)肉蓯蓉藥材中松果菊苷的含量

        2018-05-14 16:03:51魏文強(qiáng)王翠艷
        南方農(nóng)業(yè)·中旬 2018年10期
        關(guān)鍵詞:肉蓯蓉高效液相色譜法

        魏文強(qiáng) 王翠艷

        摘 要 目的:HPLC測定在液氮條件研磨以及在自然風(fēng)干條件下研磨不同種肉蓯蓉中松果菊苷的含量,比較野生肉蓯蓉和人工培養(yǎng)的肉蓯蓉中松果菊苷含量。方法:采用日本島津LC-20A高效液相色譜儀測定。色譜柱為YMC-Inertsil ODS-SP(4.6 mm×150 mm,5μm;YMC Co Ltd,Japan);流動(dòng)相:乙腈-甲醇-1%甲酸(10∶15∶75);檢測波長334 nm;流速0.7 mg·mL-1。柱溫30 ℃。結(jié)果:處理?xiàng)l件的不同對松果菊苷含量有非常明顯影響,液氮條件下研磨的肉蓯蓉中松果菊苷的含量普遍高于自然風(fēng)干條件下研磨的肉蓯蓉;野生肉蓯蓉的有效成分含量要遠(yuǎn)高于人工培養(yǎng)。

        關(guān)鍵詞 肉蓯蓉;松果菊苷;高效液相色譜法

        中圖分類號(hào):R284 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:B DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2018.29.066

        肉蓯蓉(Herba Cistanches Y.C.Ma)又稱紅柳、大蕓,屬于瀕危物種,是一種寄生在沙漠樹木梭梭、紅柳根部的寄生植物。在我國主要分布于內(nèi)蒙古、寧夏、甘肅和新疆[1],素有“沙漠人參”之美譽(yù),具有極高的藥用價(jià)值。中國藥典規(guī)定,以列當(dāng)科植物肉蓯蓉的干燥帶鱗片肉質(zhì)莖入藥[2],其主要藥用成分有苯乙醇苷類,根據(jù)其取代基的不同可分為松果菊苷、類葉升麻苷、肉蓯蓉苷等[3]。其中,松果菊苷(Echinacoside)具有改善性功能、抗氧化和清除自由基作用,而且具有一定的抗凋亡作用[4]。20世紀(jì)80年代以來,高速液相色譜技術(shù)(HPLC)廣泛應(yīng)用于天然產(chǎn)物的分離中,這種技術(shù)為苯乙醇苷類化合物的分離提供了一種簡單快速的方法[5-6]。選擇采用HPLC法,分析不同生長時(shí)期野生肉蓯蓉和人工栽培肉蓯蓉主要有效成分松果菊苷的含量,為合理開發(fā)和利用肉蓯蓉及有效評(píng)價(jià)肉蓯蓉的質(zhì)量提供一定科

        學(xué)依據(jù)。

        1 儀器與試劑

        日本島津LC-20A高效液相色譜儀,LC-20AT串聯(lián)雙柱塞泵,CTO-20A柱溫箱,SPDA-20A紫外可見雙波長檢測器;昆山KQ-100型超聲波清洗器;乙腈(色譜純,天津光復(fù)化工研究所);甲醇(色譜純,天津光復(fù)化工研究所);甲酸(色譜純,天津光復(fù)化工研究所);水(屈臣氏蒸餾水)。

        對照品:松果菊苷,含量≥98.43%(上海原葉生物科技有限公司)。

        肉蓯蓉樣品5種:人工鮮一年期以下(未出頭)肉蓯蓉,人工鮮(出頭)肉蓯蓉,人工干肉蓯蓉,野生鮮肉蓯蓉,野生三年期以上干肉蓯蓉。

        2 方法與結(jié)果

        2.1 色譜條件的確定

        為使所測松果菊苷在液相色譜圖中的峰與其他物質(zhì)分離,以及控制泵壓、時(shí)間能在合適的范圍內(nèi),對色譜的條件進(jìn)行了實(shí)驗(yàn)改進(jìn),經(jīng)流動(dòng)相的優(yōu)化實(shí)驗(yàn)得出結(jié)論:溫度越高,液相的保留時(shí)間越短,濃度越低,泵壓越小且保留時(shí)間變短,但峰高變低,不利于測量。根據(jù)室溫、泵的最大承壓等客觀狀況,最終確定以流動(dòng)相為乙腈-甲醇-1%甲酸(10∶15∶75)、檢測波長334 nm、流速0.7 mL/min、柱溫30 ℃的條件進(jìn)行分析,得到的信息較為豐富,各成分峰形尖銳而且分離度良好。

        2.2 色譜柱的確定

        色譜柱:YMC-Inertsil ODS-SP(4.6 mm×150 mm,

        5 μm;YMC Co Ltd,Japan)。

        2.3 實(shí)驗(yàn)溶液制備

        2.3.1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液的制備

        精密稱取松果菊苷標(biāo)準(zhǔn)品適量,加流動(dòng)相乙腈-甲醇-1%甲酸(10∶15∶75),分別制成0.06 mg·mL-1、

        0.05 mg·mL-1、0.04 mg·mL-1、0.03 mg·mL-1、

        0.02 mg·mL-1、0.01 mg·mL-1和0.005 mg·mL-1的松果菊苷標(biāo)準(zhǔn)品溶液。

        2.3.2 供試品溶液的制備

        取適量的人工一年期以下(未出頭)鮮肉蓯蓉、人工鮮肉蓯蓉、野生鮮肉蓯蓉用研缽在液氮下研磨成粉末;同樣再取適量的上述3種肉蓯蓉切成塊狀,在陰涼通風(fēng)處自然風(fēng)干,干燥后,將其粉碎研磨成粉末狀。人工干肉蓯蓉及野生三年期以上干肉蓯蓉直接粉碎研磨成粉末狀。取上述制的肉蓯蓉粉末(過100目篩)0.5 g,置于離心管中,加入流動(dòng)相25 mL,稱重后浸泡30 min,超聲處理40 min,冷卻后再稱定重量,用流動(dòng)相補(bǔ)足缺失的重量,搖勻后離心,取上清液用0.45 μm微孔濾膜過濾,即得。

        2.4 松果菊苷標(biāo)準(zhǔn)樣品回歸曲線的繪制

        將配制好的松果菊苷標(biāo)準(zhǔn)樣品分別注入液相色譜儀,以對照品的濃度(mg·L-1)為橫坐標(biāo),相應(yīng)的峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線圖,得到回歸方程為

        Y=66 867 100X-46 360.83,R2=0.986 37,顯示松果菊苷在0.1~1.2μg內(nèi)呈良好線性關(guān)系。

        2.5 樣品測定

        按照2.3所示方法,制備樣品液,然后在色譜條件項(xiàng)下測定,標(biāo)樣及樣品的HPLC圖譜見圖1。各樣品中松果菊苷的含量見表1。

        3 討論

        松果菊苷是肉蓯蓉主要的有效成分之一,松果菊苷能夠很好地代表肉蓯蓉藥理作用的化學(xué)物質(zhì)基礎(chǔ),使藥材的質(zhì)量評(píng)價(jià)和其藥理作用相對應(yīng),提高肉蓯蓉質(zhì)量評(píng)價(jià)的針對性。

        處理?xiàng)l件的不同對松果菊苷含量有明顯的影響,在液氮條件下研磨的肉蓯蓉要比在自然風(fēng)干條件下研磨的肉蓯蓉中松果菊苷的含量普遍都高。普通的風(fēng)干會(huì)降低松果菊苷的含量,可能是在風(fēng)干過程中損耗或是松果菊苷發(fā)生了轉(zhuǎn)化。為防止有效成分含量減少、保證肉蓯蓉藥效,應(yīng)選取合適的處理方法。

        一直以來,大部分人認(rèn)為肉蓯蓉的人工栽培環(huán)境以及生長習(xí)性與野生品沒有明顯區(qū)別,質(zhì)量也相差無幾,往往只重視產(chǎn)量,并未對質(zhì)量進(jìn)行分析。本研究表明,人工栽培的肉蓯蓉松果菊苷的含量低于野生肉蓯蓉松果菊苷的含量。最高的為野生鮮肉蓯蓉0.336 0%,含量最低的是人工鮮肉蓯蓉0.007 0%。因此在栽培技術(shù)上仍需研究,提高有效成分的含量。

        肉蓯蓉質(zhì)量的好壞取決于其有效成分松果菊苷含量的多少,而有效成分又與采收的季節(jié)、時(shí)間、方法有很大的關(guān)系,所以肉蓯蓉的采收應(yīng)該考慮有效成分的積累狀態(tài)和生長發(fā)育階段。既考慮質(zhì)量,又考慮產(chǎn)量。

        本方法測定松果菊苷的含量,簡便、精密度高、重復(fù)性好,結(jié)果準(zhǔn)確可靠。可用于肉蓯蓉藥材的含量測定。

        參考文獻(xiàn):

        [1] 雷載權(quán).中藥學(xué)[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,2001.

        [2] 國家藥典委員會(huì).中華人民共和國藥典:一部[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2000.

        [3] 吳培培,閆明,霍仕霞.苯乙醇苷類化合物的藥理研究進(jìn)展[J].醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2006,30(3):142-143.

        [4] 蒲小平,李曉蓉,李慧濃,等.肉蓯蓉成分campneosideⅡ?qū)ι窠?jīng)毒索MPP+誘發(fā)細(xì)胞凋亡的保護(hù)作用[J].北京大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2001,33(3):217-220.

        [5] Lei L, Yang F, Zhang T, et al. Ito. preparative isolation and Purification of Acteoside and 2-acety-lacteoside from Cistanches Salsa (C.A.Mey.)G.Beck by High-speed Counter-current Chromatography[J].J. Chromatogr. A., 2001,912:181-185.

        [6] Li L, Tsao R, Liu Z, et al. Isolation and Purification of Actcoside and lsoacteoside from Plantago Psyllium L,by High-speed Counter-current Chromatography[J].J. Chromatogr. A.,2005,1063(1):161-169.

        (責(zé)任編輯:劉昀)

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