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        毒死蜱/陽離子改性殼聚糖/海藻酸鈉復(fù)合微球的表征與緩釋

        2018-05-10 09:21:05周紅軍周新華李英玲穆筱梅
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2018年7期
        關(guān)鍵詞:毒死海藻微球

        徐 華, 周紅軍, 周新華, 李英玲, 穆筱梅, 林 椰

        (仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院化學(xué)化工學(xué)院,廣東廣州 510225)

        常規(guī)化學(xué)農(nóng)藥制劑由于其利用率低、流失嚴(yán)重、環(huán)境食品安全等缺點(diǎn),很難適應(yīng)當(dāng)代社會可持續(xù)發(fā)展的理念,而緩釋技術(shù)為化學(xué)農(nóng)藥的發(fā)展提供了思路,并得到了廣泛關(guān)注[1-2]。目前,已有多種緩釋劑型被報(bào)道,如微膠囊制劑[3]、包結(jié)化合物制劑[4]、均一體制劑[5]、吸附型制劑[6]等。無論何種制劑,緩釋載體都是非常重要的組成部分[7-9]。

        海藻酸鈉作為緩釋載體具有無毒、成本低、可生物降解、良好的生物相容性等特點(diǎn),是常用的藥物緩釋載體[10]。由于其多糖構(gòu)建的多孔網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)在溶劑中的溶蝕,藥物突釋現(xiàn)象顯著[11],制約了這類材料在藥物傳輸系統(tǒng)中的發(fā)展。殼聚糖是一類天然陽離子高分子材料,將殼聚糖用于聚陰離子的海藻酸鈉緩釋材料中,通過靜電、氫鍵等作用可達(dá)到調(diào)節(jié)緩釋性能的目的[12]。將殼聚糖陽離子化,進(jìn)一步提高殼聚糖分子內(nèi)陽離子的密度用于海藻酸鈉緩釋體系中的報(bào)道較少。

        本研究以陽離子改性殼聚糖和海藻酸鈉作為緩釋載體,采用擠壓法制備改性殼聚糖/海藻酸鈉/毒死蜱復(fù)合緩釋微球。研究復(fù)合微球的緩釋性能,為開發(fā)對環(huán)境友好的緩釋農(nóng)藥新劑型提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        主要材料有海藻酸鈉(分析純,天津市北聯(lián)精細(xì)化學(xué)品開發(fā)有限公司)、毒死蜱(分析純,江蘇景宏化工有限公司)、氯化鈣(分析純,天津市福晨化學(xué)試劑廠)、殼聚糖(chitosan,簡稱CTS,脫乙酰度≥95%,分子量為20~40萬,上海麥克林生化科技有限公司)、無水乙醇(分析純,天津市大茂化學(xué)試劑廠);丙烯酰胺、過硫酸銨、亞硫酸氫鈉、2,3-環(huán)氧丙基三甲基氯化銨(glycidyl trimethyl ammonium chloride,簡稱GTA)、丙酮、氫氧化鈉,均為分析純,購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。

        1.2 儀器與設(shè)備

        主要儀器有85-2型恒溫磁力攪拌器(常州澳華儀器有限公司)、KH-250 型超聲波清洗器(昆山禾創(chuàng)超聲儀器有限公司)、T6新世紀(jì)型紫外可見分光光度計(jì)(北京普析通用儀器有限責(zé)任公司)、Q600熱重分析儀(美國TA儀器公司)、Spectrum 100型傅立葉變換紅外光譜儀(珀金埃爾默儀器有限公司)、CX41型光學(xué)顯微鏡(日本Olympus公司)。

        1.3 改性殼聚糖的制備[13]

        在裝有聚四氟乙烯攪拌器、回流冷凝管的 500 mL 三口燒瓶中加入 5 g殼聚糖、100 mL 無水乙醇,置于恒溫水浴中,在78 ℃條件下加熱60 min,然后冷卻至50 ℃,加入1.05 g過硫酸銨、0.35 g亞硫酸氫鈉,攪拌10 min,加入20 g丙烯酰胺,恒溫?cái)嚢? h。將恒溫水浴調(diào)至70 ℃,加入0.24 g氫氧化鈉,后加入2.6 g 2,3-環(huán)氧丙基三甲基氯化銨,恒溫?cái)嚢?.5 h,過濾,用丙酮洗滌濾餅數(shù)次,100 ℃條件下干燥24 h,得到改性殼聚糖產(chǎn)品。

        1.4 復(fù)合微球的制備

        稱取0.30 g海藻酸鈉于10 mL水中,稱取0.25 g 毒死蜱于5 mL乙醇中,稱取0.25 g改性殼聚糖于5 mL水中。將上述溶液混合,混合后倒入海藻酸鈉溶液中攪拌并超聲 20 min。利用注滴法將上述混合液滴入80 mL 8% CaCl2溶液,滴加速度為50 mL/h,滴加完后繼續(xù)攪拌1 h。過濾得到產(chǎn)品,并于50 ℃條件下干燥24 h,得到復(fù)合微球,并測得復(fù)合微球的載藥量(loading capacity 簡稱LC)[14]。

        1.5 空白微球的制備

        稱取0.30 g海藻酸鈉于10 mL水中,稱取0.25 g 毒死蜱于5 mL乙醇中,后倒入海藻酸鈉溶液中攪拌并超聲 20 min。利用注滴法將上述混合液滴入80 mL 8% CaCl2溶液,滴加速度為50.0 mL/h,滴加完繼續(xù)攪拌1 h。過濾得到產(chǎn)品,并于50 ℃條件下干燥24 h,得到空白微球,并測得復(fù)合微球的載藥量。

        1.6 復(fù)合微球緩釋性能測試[14]

        稱取定量(M1,mg)復(fù)合微球,轉(zhuǎn)移至有100 mL 50%乙醇水溶液的錐形瓶中。間隔固定時(shí)間(t),取出5 mL樣品溶液,同時(shí)向錐形瓶中補(bǔ)充等體積介質(zhì),將5 mL樣品溶液稀釋到50 mL,用紫外分光光度計(jì)掃描,毒死蜱隨著時(shí)間的累積釋放率為Ri,繪制t-Ri曲線作為毒死蜱的緩釋動力學(xué)曲線。

        毒死蜱隨著時(shí)間的累積釋放率Ri按式(1)進(jìn)行計(jì)算:

        (1)

        式中:ρi為第i次取出液中毒死蜱的質(zhì)量濃度(mg/L)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 傅氏轉(zhuǎn)換紅外線光譜分析(fourier transform infrared spectroscopy,簡稱FTIR)

        2.2 熱重分析(thermogravimetric analysis,簡稱TG)

        復(fù)合微球的第1個熱失重峰出現(xiàn)在110 ℃,失質(zhì)量率為30%,這是復(fù)合微球脫去物理吸附水與結(jié)晶水所致。復(fù)合微球30%的失質(zhì)量率較改性殼聚糖以及海藻酸鈉都大,這是由于微球形成后外層的致密空間導(dǎo)致微球內(nèi)部的水分較難移除。由于海藻酸鈉、毒死蜱與殼聚糖絮凝劑的熱失重峰比較接近,且相互交集,故復(fù)合微球的熱失重峰在200~400 ℃區(qū)間內(nèi)的熱失重峰較寬,由多個小峰組成,該區(qū)間內(nèi)總失質(zhì)量率為31%(圖2)。

        2.3 復(fù)合微球形貌分析

        由圖3-A、圖3-C可知,復(fù)合微球的尺寸比較均勻,球型較好。由圖3-B可以看出,微球的球形飽滿、表面光滑,沒有其他微小顆粒的存在。

        2.4 緩釋性能分析

        由圖4-A可知,隨著離子濃度的增加,緩釋時(shí)間延長,緩釋性能提高,這是由于微球表面存在滲透壓,離子濃度越大,滲透壓越大,微球溶脹加劇,微球粒徑變大,藥物滲透擴(kuò)散到溶液中需要更多的時(shí)間,緩釋性能提高。由圖4-B可知,溫度越高,藥物釋放越快。由圖4-C可知,pH值為7時(shí),緩釋效果差于酸性,這是由于H離子滲透到復(fù)合微球內(nèi)部,可與殼聚糖中的氨基發(fā)生質(zhì)子化,使得復(fù)合微球內(nèi)部靜電作用增強(qiáng),限制藥物的擴(kuò)散,然而H離子濃度增加,羧酸根離子可結(jié)合質(zhì)子變成羧酸,反而會減弱復(fù)合微球內(nèi)部的靜電作用,使藥物擴(kuò)散溶液,緩釋能力減弱。由圖4-D可知,與空白微球相比,復(fù)合微球緩釋效果更好。

        為深入研究復(fù)合微球的緩釋行為,根據(jù)藥物緩釋的數(shù)據(jù),本研究根據(jù)Korsmeyer-Peppas動力學(xué)模型研究復(fù)合微球的緩釋行為。Peppas經(jīng)驗(yàn)方程如式(2)所示。分別對圖4中的緩釋數(shù)據(jù)用式(2)進(jìn)行擬合,結(jié)果如圖5、表1所示。

        lgRi=lgk+nlgt。

        (2)

        式中:Ri為累積釋放率;t為釋放時(shí)間;k為常數(shù);n為擴(kuò)散指數(shù)。

        由表1可知,擴(kuò)散指數(shù)n基本處于0.5與1.0之間,復(fù)合微球的釋藥機(jī)制是藥物擴(kuò)散與藥物溶出同時(shí)存在的。由于在制備復(fù)合微球的過程中,部分藥物存在于微球外表面,藥物置于溶劑中時(shí),這部分藥物釋放屬于溶解釋放機(jī)制。包埋在載體內(nèi)部的藥物則需要載體溶脹后擴(kuò)散釋放。

        對復(fù)合微球、空白微球的釋放率Ri與時(shí)間用一級動力學(xué)進(jìn)行擬合,如式(3)所示,結(jié)果如表2、圖6所示。復(fù)合微球、空白微球的相關(guān)系數(shù)分別為0.991、0.996,這也進(jìn)一步說明復(fù)合微球的緩釋機(jī)制是藥物擴(kuò)散與藥物溶解同時(shí)進(jìn)行的[15-16]。此外,對比空白微球與復(fù)合微球的釋放半衰期,復(fù)合微球的半衰期要長于空白微球,因此加入改性殼聚糖能改善空白海藻酸鈉復(fù)合微球釋放的不足。

        表1復(fù)合微球的Peppas方程擬合參數(shù)

        ln(1-Ri)=-kt。

        (3)

        表2一級動力學(xué)擬合數(shù)據(jù)表

        3 結(jié)論

        以改性殼聚糖為復(fù)合添加劑,毒死蜱為藥物模型,采用擠壓法制備改性殼聚糖/海藻酸鈉/毒死蜱復(fù)合緩釋微球。復(fù)合微球表面光滑,粒徑分布均勻,其緩釋行為表現(xiàn)出對離子濃度、pH值、溫度的響應(yīng),用Korsmeyer-Peppas動力學(xué)模型研究緩釋機(jī)制并研究緩釋動力學(xué),藥物在微球內(nèi)釋放以擴(kuò)散機(jī)制為主,溶解機(jī)制為輔,釋放行為復(fù)合一級動力學(xué)模型。

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