張韞璐, 王 琦, 王金緣, 王宇楠, 劉凱月, 耿夢(mèng)恬, 郭晴雪, 馬蓮菊
(沈陽師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,遼寧沈陽 110034)
土壤鹽堿化是干旱和半干旱地區(qū)的主要非生物脅迫,極大地限制著作物生長(zhǎng)和產(chǎn)量提高[1]。工廠排出的廢水污染、化學(xué)肥料的亂施亂放和日光溫室的大面積生產(chǎn)等導(dǎo)致土壤鹽漬化愈加嚴(yán)重,鹽漬土已嚴(yán)重危害了人們賴以生存的地球環(huán)境[2],而且土壤含鹽量高,會(huì)使植物生長(zhǎng)發(fā)育受到不良影響,如光合作用減弱、膜傷害增加、呼吸代謝紊亂,甚至導(dǎo)致植物死亡[3-4]。
采用PEG預(yù)處理植物種子或幼苗,可以有效增強(qiáng)其抗逆性,緩解其在逆境脅迫下受到的傷害。如用不同濃度PEG預(yù)處理翅果油樹種子,可以提高翅果油樹種子的活力指數(shù)和發(fā)芽速度[5]。用一定濃度PEG預(yù)處理刺槐種子,可以提高其抗鹽能力[6]。PEG預(yù)處理過的青稞種子的發(fā)芽率和生根率均提高,并且對(duì)青稞幼苗的生長(zhǎng)發(fā)育也起到了促進(jìn)作用[7]。然而,關(guān)于PEG預(yù)處理對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗的影響方面的研究較少,因此本試驗(yàn)采用PEG預(yù)處理水稻幼苗,從抗氧化酶活性及AsA-GSH循環(huán)中關(guān)鍵酶活性和抗氧化劑含量等方面進(jìn)行研究,探討其對(duì)鹽脅迫下水稻幼苗的影響。
試驗(yàn)于2015年在沈陽師范大學(xué)進(jìn)行,供試材料為鹽粳48水稻。選取大小一致、種皮完好且飽滿的種子,用3% H2O2浸泡10 min后,放入28 ℃恒溫箱浸種24 h,用蒸餾水反復(fù)沖洗后催芽24 h,播種于600 mL帶紗網(wǎng)的塑料燒杯上,利用Hoagland營(yíng)養(yǎng)液在光照培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),定期更換營(yíng)養(yǎng)液。培養(yǎng)7 d后進(jìn)行以下處理:(1)對(duì)照,用完全營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng)作為對(duì)照;(2)鹽脅迫,先用完全營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng)6 d,后用100 mmol/L NaCl進(jìn)行鹽脅迫處理3 d;(3)10% PEG預(yù)處理,開始用含10% PEG的營(yíng)養(yǎng)液培養(yǎng)3 d,然后用完全培養(yǎng)液培養(yǎng)3 d,最后用含100 mmol/L NaCl的營(yíng)養(yǎng)液進(jìn)行鹽脅迫3 d。每處理重復(fù)3次。
葉綠素含量測(cè)定參考張志良的方法[9]。超氧化物歧化酶(SOD)活性測(cè)定采用氯化硝基四氮唑(NBT)光氧化還原法[8];過氧化物酶(POD)活性測(cè)定采用愈創(chuàng)木酚法[9];過氧化氫酶(CAT)活性測(cè)定采用紫外分光光度計(jì)法[9];抗壞血酸過氧化物酶(APX)活性測(cè)定參考Nakano等的方法[10];谷胱甘肽還原酶(GR)活性測(cè)定參考Ma等的方法[11];抗壞血酸(AsA)和還原型谷胱甘肽(GSH)含量的測(cè)定參照吳強(qiáng)盛等的方法[12]。
采用SPSS 16.0對(duì)水稻幼苗不同處理下的抗氧化酶活性、AsA-GSH中關(guān)鍵酶活性和抗氧化劑含量進(jìn)行LSD-單因素最小顯著性差異分析(Least-Significant Difference,One-Way ANOVA,P<0.05),比較不同處理之間的差異性,并用Microsoft Excel制作圖表。
葉綠素a分子不僅可以攝取和傳送光能,并且可以將光能轉(zhuǎn)變成其他能供給植物生長(zhǎng)發(fā)育,因此也有光能的“捕捉器”之稱。葉綠素b的功能則是將攝取的光能準(zhǔn)確快速地傳送給反應(yīng)中心色素。從圖1可以看出,在鹽脅迫下,葉綠素a和葉綠素b含量分別比對(duì)照減少18.49%和14.29%,而PEG預(yù)處理水稻幼苗的葉綠素a含量和葉綠素b含量分別比鹽脅迫高52.07%和77.09%。
植物體內(nèi)的抗氧化酶主要包括SOD、POD和CAT,可以有效清除植物體內(nèi)的活性氧,減輕植物在逆境下受到的傷害。從圖2可以看出,鹽脅迫下的SOD、CAT活性與對(duì)照相比顯著降低(P<0.05),POD活性則顯著增高。在PEG預(yù)處理下,SOD、POD、CAT活性均高于鹽脅迫,分別比鹽脅迫高9.93%、6.04%、62.17%。
APX和GR是AsA-GSH循環(huán)中的關(guān)鍵酶,在活性氧的清除過程中起重要作用。從圖3可以看出,鹽脅迫下的APX和GR活性均降低,分別比對(duì)照低22.23%和33.33%,GR活性降幅更為顯著。PEG預(yù)處理APX和GR活性均高于鹽脅迫,其中APX活性比鹽脅迫高85.72%,差異顯著,GR活性比鹽脅迫高16.68%。
AsA和GSH是植物體內(nèi)重要的非酶類抗氧化劑,并且也是植物細(xì)胞中主要的氧化還原緩沖劑,對(duì)AsA活性的保持起著重要作用[13]。從圖4可以看出,鹽脅迫顯著降低了AsA的含量。PEG預(yù)處理下,AsA含量較鹽脅迫提高98.51%,差異顯著,GSH含量比鹽脅迫高14.29%。
利用外源物質(zhì)預(yù)處理可以減緩逆境脅迫對(duì)植物的傷害,如脫落酸預(yù)處理可以提高橡膠樹芽接苗期抗寒性[14],蔗糖預(yù)處理可以有效增加鹽脅迫下水稻幼苗的總氮量并提高氮代謝關(guān)鍵酶的活性[15]。PEG作為模擬干旱的一種高分子滲壓劑,也常作為外源物質(zhì)用于增強(qiáng)植物的抗逆性[5-7]。
鹽脅迫影響植物葉片內(nèi)葉綠素含量的變化主要是因?yàn)槠錅p慢光合速率,使光合作用受抑制,導(dǎo)致葉綠素含量降低,最終使植物生長(zhǎng)發(fā)育受影響。本研究表明,在PEG預(yù)處理下,葉綠素a和葉綠素b含量均高于鹽脅迫處理,說明PEG預(yù)處理緩解了鹽脅迫對(duì)水稻幼苗葉綠素的傷害,從而改善水稻幼苗在鹽脅迫下的生長(zhǎng)狀況。
植物體內(nèi)有清除活性氧的機(jī)制,在逆境條件下,植物體內(nèi)會(huì)產(chǎn)生過多的活性氧,如果超出了植物自我調(diào)節(jié)的程度,就會(huì)因無法清除從而堆積在機(jī)體內(nèi),活性氧的消除工作主要是由抗氧化酶系統(tǒng)來完成,主要包括SOD、POD、CAT、APX和GR。研究表明,在鹽脅迫下水稻幼苗的POD活性有所上升,這與Garg等的研究結(jié)果[16]基本一致,說明在一定脅迫內(nèi),植物能夠通過提高酶活性來抵抗逆境造成的傷害。而SOD和CAT的含量則有所下降,可能是因?yàn)樵撁{迫程度不足以使SOD和CAT迅速啟動(dòng)防御機(jī)制,而活性氧的產(chǎn)生又消耗掉了一部分SOD和CAT[17]。在PEG預(yù)處理下,水稻幼苗的SOD、POD、CAT活性均高于鹽脅迫,說明PEG預(yù)處理可以緩解鹽脅迫對(duì)抗氧化酶活性的影響,使其更有效地清除活性氧(ROS),提高水稻幼苗對(duì)鹽脅迫的抵抗能力。APX作為存在于植物體內(nèi)清除H2O2的關(guān)鍵酶,可將AsA氧化為DHA,同時(shí)又可以將H2O2還原為H2O,從而保護(hù)植物體免受ROS傷害。而GR則可以促使GSH再生,因此植物體內(nèi)的GR活性也是代表其抗氧化能力的重要標(biāo)志之一[18]。本試驗(yàn)結(jié)果表明,PEG預(yù)處理下APX和GR活性較鹽脅迫均有所增高,說明PEG預(yù)處理可以提高鹽脅迫下APX和GR活性,從而更好地保護(hù)植物免受鹽脅迫所帶來的傷害。
AsA和GSH是AsA-GSH循環(huán)中2種重要的非酶類抗氧化劑,其含量能反映出植物體對(duì)鹽脅迫的抵抗程度。研究表明,鹽脅迫下AsA和GSH含量均有所減少,這與顏志明等在甜瓜方面的研究結(jié)果[19]相吻合,原因可能是其參與自由基清除反應(yīng)的同時(shí)部分被氧化的結(jié)果[20],也有可能是因?yàn)槟婢诚翧sA與GSH合成能力下降所導(dǎo)致的[21]。但本試驗(yàn)中PEG預(yù)處理的AsA、GSH含量高于鹽脅迫,說明PEG預(yù)處理可以提高鹽脅迫下AsA和GSH的含量,減輕鹽脅迫對(duì)水稻幼苗的傷害。PEG可能是通過影響水稻幼苗中ROS的積累和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,調(diào)節(jié)相關(guān)蛋白基因的表達(dá),從而增強(qiáng)其對(duì)鹽脅迫的抗性。
參考文獻(xiàn):
[1]Allakhverdiev S I,Sakamoto A,Nishiyama Y,et al. Ionic and osmotic effects of Nacl-induced inactivation of photosystems Ⅰ and Ⅱ inSynechococcussp.[J]. Plant Physiology,2000,123(3):1047-1056.
[2]王春裕. 論鹽漬土之種稻生態(tài)改良[J]. 土壤通報(bào),2002,33(2):94-95.
[3]李海波,陳溫福,李全英. 鹽脅迫下水稻葉片光合參數(shù)對(duì)光強(qiáng)的響應(yīng)[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2006,17(9):1588-1592.
[4]沙漢景. 外源脯氨酸對(duì)鹽脅迫下水稻耐鹽性的影響[D]. 哈爾濱:東北農(nóng)業(yè)大學(xué),2013.
[5]袁麗環(huán),閆桂琴,朱志敏. PEG預(yù)處理和低溫促進(jìn)翅果油種子萌發(fā)的研究[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2009,25(10):112-115.
[6]曹幫華,毛培利,牟洪香. PEG預(yù)處理對(duì)刺槐種子抗鹽性的影響[J]. 種子,2004,23(3):19-21.
[7]姚曉華,吳昆侖. PEG預(yù)處理對(duì)青稞種子萌發(fā)、幼苗生長(zhǎng)和抗旱性的影響[J]. 中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2013,18(6):80-87.
[8]朱廣廉. 植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)[M]. 北京:北京大學(xué)出版社,1988.
[9]張志良. 植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指導(dǎo)[M]. 北京:高等教育出版社,2009.
[10]Nakano Y,Asada K. Hydrogen peroxide is scavenged by ascorbate-specific peroxidase in spinach chloroplasts[J]. Plant and Cell Physiology,1981,22(5):867-880.
[11]Ma F,Cheng L. The sun-exposed peel of apple fruit has higher xanthophyll cycle-dependent thermal dissipation and antioxidants of the ascorbate-glutathione pathway than the shaded peel[J]. Plant Science,2003,165(4):819-827.
[12]吳強(qiáng)盛,鄒英寧,夏仁學(xué). 水分脅迫下叢枝菌根真菌對(duì)紅橘葉片活性氧代謝的影響[J]. 應(yīng)用生態(tài)學(xué)報(bào),2007,18(4):825-830.
[13]Shalata A,Mittova V,Volokita M,et al. Response of the cultivated tomato and its wild salt-tolerant relativeLycopersiconpennelliito salt-dependent oxidative stress:the root antioxidative systetem[J]. Physiologia Plantarum,2001,112(4):487-494.
[14]王紀(jì)坤,張盈盈,王立豐,等. 脫落酸預(yù)處理提高橡膠樹芽接苗期抗寒性的研究[J]. 熱帶農(nóng)業(yè)工程,2016,40(3):16-20.
[15]王志強(qiáng),丁 立,徐晉豫,等. 蔗糖預(yù)處理對(duì)鹽脅迫小麥幼苗氮同化的影響[J]. 河南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2008,42(3):268-272.
[16]Garg N,Chandel S. Role of arbuscular mycorrhiza in arresting reactive oxygen species (ROS) and strengthening antioxidant defense inCajanuscajan(L.) Mill sp. nodules under salinity (NaCl) and cadmium (Cd) stress[J]. Plant Growth Regul,2015,75(2):521-534.
[17]陳 濤,王貴美,沈偉偉,等. 鹽脅迫對(duì)紅麻幼苗生長(zhǎng)及抗氧化酶活性的影響[J]. 植物科學(xué)學(xué)報(bào),2011,29(4):493-501.
[18]陳坤明,宮海軍,王鎖民. 植物抗壞血酸的生物合成、轉(zhuǎn)運(yùn)及其生物學(xué)功能[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2004,24(2):329-336.
[19]顏志明,孫 錦,郭世榮,等. 外源脯氨酸對(duì)鹽脅迫下甜瓜幼苗根系抗壞血酸-谷胱甘肽循環(huán)的影響[J]. 植物科學(xué)學(xué)報(bào),2014,32(5):502-508.
[20]王 娟,李德全. 水分脅迫對(duì)玉米根系A(chǔ)sA-GSH循環(huán)及H2O2含量的影響[J]. 中國(guó)生態(tài)農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2002,10(2):94-96.
[21]Song X S,Hu W H,Mao W H,et al. Response of ascorbate peroxidase isoenzymes and ascorbate regeneration systemto abiotic stresses inCucumissativusL.[J]. Plant Physiology Biochemistry,2005,43(12):1082-1088.