蔣 余 趙鵬飛 陳擁軍 羅 強(qiáng) 李 虹 林仕梅*

(1.西南大學(xué)淡水魚(yú)類資源與生殖發(fā)育教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，西南大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院，重慶 400716；2.重慶市璧山區(qū)農(nóng)業(yè)委員會(huì)，重慶 402670；3.重慶市水產(chǎn)技術(shù)推廣站，重慶 401147)

蛋白質(zhì)源是水產(chǎn)飼料重要的組成部分，嚴(yán)重影響飼料成本。因此，研究魚(yú)類營(yíng)養(yǎng)代謝機(jī)制，尋找魚(yú)粉蛋白質(zhì)替代源，是營(yíng)養(yǎng)學(xué)家長(zhǎng)期致力的方向。近年來(lái)，食品加工副產(chǎn)物引起了飼料加工者的廣泛關(guān)注[1]。豆渣(SR)是豆?jié){或豆腐加工過(guò)程的副產(chǎn)品，在大豆消費(fèi)量高的亞洲國(guó)家每年都有大量產(chǎn)出。目前，中國(guó)豆渣的年產(chǎn)量已超過(guò)280萬(wàn)t[2]，僅重慶市梁平區(qū)禮讓鎮(zhèn)豆渣的年產(chǎn)量就在萬(wàn)噸以上。我國(guó)豆渣資源廣闊，具有良好的開(kāi)發(fā)利用前景。

豆渣富含蛋白質(zhì)、脂肪、纖維、礦物質(zhì)以及單糖和低聚糖，同時(shí)還富含膳食纖維[2]，這些營(yíng)養(yǎng)成分因大豆品種和加工方法不同而有所差異[3]。豆渣是人類優(yōu)質(zhì)食品，具有多種功效，如抗氧化活性[4]、預(yù)防心血管疾病[5]、減少肝臟脂肪沉積、維持機(jī)體健康[6-7]等。已有研究表明，豆渣可以作為反芻動(dòng)物[8]、豬[9]和肉雞[10]飼糧的蛋白質(zhì)源。然而，有關(guān)豆渣在魚(yú)類上應(yīng)用的研究較少[11]，可能是其干燥成本以及含有纖維、植酸和其他抗?fàn)I養(yǎng)因子等因素所致[2]。研究發(fā)現(xiàn)，豆渣通過(guò)乳酸桿菌、芽孢桿菌、黃曲霉菌或酵母菌等發(fā)酵后可以提高其營(yíng)養(yǎng)價(jià)值[12-13]。但迄今為止，未見(jiàn)發(fā)酵豆渣在建鯉(Cyprinuscarpiovar. Jian)上的研究報(bào)道。為此，本試驗(yàn)采用固態(tài)發(fā)酵豆渣，研究其對(duì)建鯉生長(zhǎng)性能、體組成、血漿生化指標(biāo)和抗氧化能力的影響，旨在為豆渣的利用提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 試驗(yàn)飼料

豆渣購(gòu)自重慶市梁平區(qū)，為豆筋加工副產(chǎn)物。豆渣采用枯草芽孢桿菌、乳酸菌和酵母菌混合菌進(jìn)行固態(tài)發(fā)酵(發(fā)酵pH為7.0，溫度為28 ℃，時(shí)間為72 h)，參考Tang等[14]和Li等[15]的方法制成發(fā)酵豆渣。豆渣和發(fā)酵豆渣的常規(guī)成分和氨基酸含量見(jiàn)表1。

以魚(yú)粉、豆粕、菜籽粕和棉籽蛋白為主要蛋白質(zhì)源，以豆油為脂肪源配制基礎(chǔ)飼料。在基礎(chǔ)飼料中分別添加0(對(duì)照組)、6%、12%、18%和24%的發(fā)酵豆渣，通過(guò)調(diào)整豆粕的用量來(lái)平衡粗蛋白質(zhì)含量，配制成5種等氮等脂的試驗(yàn)飼料(分別表示為FSR0、FSR6、FSR12、FSR18、FSR24)，其組成及營(yíng)養(yǎng)水平見(jiàn)表2。各飼料原料粉碎過(guò)80目篩，采取逐級(jí)稀釋法混合均勻，制成粒徑為2.0 mm的顆粒飼料，風(fēng)干后放入4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

表1 豆渣和發(fā)酵豆渣的常規(guī)成分和氨基酸含量(干物質(zhì)基礎(chǔ))

1.2 飼養(yǎng)管理

選用當(dāng)年培育的體質(zhì)健壯、規(guī)格整齊的建鯉(平均體質(zhì)量為8.49 g)450尾，隨機(jī)分成5組，每組設(shè)3個(gè)重復(fù)，每個(gè)重復(fù)放養(yǎng)30尾。在室內(nèi)淡水循環(huán)水族缸(有效體積為250 L)中飼養(yǎng)建鯉9周，日投飼率為體重的3%～5%，每天08:00、12:30、17:00各投喂1次。水源為曝氣自來(lái)水，試驗(yàn)期間水溫為(26.2±0.5)℃，pH為7.3±0.5，溶解氧濃度>6.8 mg/L，氨氮濃度<0.48 mg/L，亞硝酸鹽氮濃度<0.06 mg/L。

1.3 樣品制備與分析

飼養(yǎng)試驗(yàn)結(jié)束后，禁食24 h后稱重，每個(gè)重復(fù)隨機(jī)取3尾魚(yú)作為全魚(yú)樣品，用于體組成的測(cè)定；每個(gè)重復(fù)隨機(jī)取4尾魚(yú)，用MS-222進(jìn)行麻醉，測(cè)體長(zhǎng)、體高，分離出內(nèi)臟、肝胰臟，用于形體指標(biāo)的測(cè)定；每個(gè)重復(fù)隨機(jī)取5尾魚(yú)，用一次性無(wú)菌注射器取魚(yú)體尾靜脈血，用肝素和草酸鉀-氟化鈉[用于測(cè)定血漿葡萄糖(Glu)含量]抗凝，立即在 4 ℃條件下1 000×g離心10 min，收集血漿，-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

表2 試驗(yàn)飼料組成及營(yíng)養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))

預(yù)混料為每千克飼料提供The premix provided the following per kg of diets：VA 16.67 mg，VD33.33 mg，VE 26.67 mg，VC 333.33 mg，VB18 mg，VB64 mg，VB120.03 mg，VK33.33 mg，核黃素 riboflavin 3.33 mg，肌醇 inositol 66.67 mg，泛酸 pantothenic acid 20 mg，煙酸 niacin 23.33 mg，葉酸 folic acid 1.33 mg,生物素 biotin 0.04 mg，乙氧基喹啉 ethoxyquin 100 mg，次粉 wheat middling 9．39 g，KCl 133.33 mg，KI 40 mg，CoCl2·6H2O 4.67 mg，CuSO4·5H2O 9.33 mg，F(xiàn)eSO4·H2O 266.67 mg，ZnSO4·H2O 133.33 mg，MnSO4·H2O 53.33 mg，Na2SeO3·5H2O 43.33 mg，MgSO4·7H2O 2 000 mg，Ca(H2PO4)2·H2O 13.33 g，NaCl 90.67 mg。

飼料原料及全魚(yú)樣品均在105 ℃烘干至恒重，然后采用凱氏定氮法測(cè)定粗蛋白質(zhì)含量，索氏抽提法測(cè)定粗脂肪含量，高溫(550 ℃)灼燒法測(cè)定粗灰分含量。植酸含量的測(cè)定參照Vaintraub等[16]的方法。胰蛋白酶抑制因子含量的測(cè)定參照Smith等[17]的方法。飼料樣品用6 mol/L的鹽酸于110 ℃下水解22 h，采用4.6 mm×60 mm分析柱，在日立8800氨基酸分析儀上測(cè)定各氨基酸含量。

血漿代謝指標(biāo)采用日立7100全自動(dòng)生化分析儀測(cè)定，包括丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)、堿性磷酸酶(ALP)活性以及葡萄糖、總膽固醇(TC)和甘油三酯(TG)含量。血漿總蛋白(TP)和丙二醛(MDA)含量以及超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)和谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GPx)活性采用南京建成生物工程研究所生產(chǎn)的試劑盒進(jìn)行測(cè)定。蛋白質(zhì)含量采用考馬斯亮藍(lán)法測(cè)定。

1.4 計(jì)算公式

特定生長(zhǎng)率(specific growth rate，SGR，%/d)=100×[lnWt-lnW0]/t；蛋白質(zhì)效率(protein efficiency ratio，PER，%)=100×(Wt-W0)/(F×Fp)；飼料系數(shù)(feed conversion ratio，F(xiàn)CR)=F/(Wt-W0)；攝食率(feed intake，F(xiàn)I，%/d)=F/[(Wt+W0)/2]/t；存活率(survival rate，SR，%)=100×Nt/N0；肥滿度(condition factor，CF，g/cm3)=100×Wt/L3；臟體比(viscera somatic index，VSI，%)=100×Wv/Wt；肝體比(heaptopancreas somatic index，HSI，%)=100×Wh/Wt。

式中：Wt(g)和W0(g)分別為終末體重和初始體重；t(d)為養(yǎng)殖試驗(yàn)天數(shù)；F(g)為尾均攝食量；Fp(%)為飼料粗蛋白質(zhì)含量；Nt(尾)和N0(尾)分別為終末尾數(shù)和初始尾數(shù)；L(cm)為體長(zhǎng)；Wv(g)為內(nèi)臟重；Wh(g)為肝胰臟重。

1.5 數(shù)據(jù)處理與分析

采用SPSS 17.0對(duì)所得數(shù)據(jù)進(jìn)行單因素方差分析(one-way ANOVA)，若差異達(dá)到顯著水平，則進(jìn)行Tukey’s多重比較，顯著性水平為P<0.05。試驗(yàn)數(shù)據(jù)均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。

2 結(jié) 果

2.1 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉生長(zhǎng)性能的影響

由表3可知，隨著發(fā)酵豆渣添加水平的增加，建鯉的終末體重、特定生長(zhǎng)率和蛋白質(zhì)效率呈先上升后下降的變化趨勢(shì)，在發(fā)酵豆渣添加水平為12%時(shí)達(dá)到最大，而在添加水平為24%時(shí)達(dá)到最低，二者差異顯著(P<0.05)。以二次曲線擬合發(fā)酵豆渣添加水平(x)與建鯉特定生長(zhǎng)率(y)的關(guān)系(圖1)，得到回歸方程y=-0.001 9x2+0.039 7x+2.764(R2=0.971 2)，由方程求得特定生長(zhǎng)率最高時(shí)發(fā)酵豆渣添加水平為10.2%。相反，攝食率和飼料系數(shù)在發(fā)酵豆渣添加水平為12%時(shí)達(dá)到最低，顯著低于其他各組(P<0.05)。各組建鯉的存活率均為100%。

表3 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉生長(zhǎng)性能的影響

同行數(shù)據(jù)肩標(biāo)不同小寫(xiě)字母表示差異顯著(P<0.05)。下表同。

In the same row, values with different small letter superscripts mean significant different (P<0.05). The same as below.

圖1 飼料中發(fā)酵豆渣添加水平與

2.2 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉形態(tài)指標(biāo)和體組成的影響

由表4可知，與對(duì)照組相比，發(fā)酵豆渣添加水平在12%及以上時(shí)，建鯉的臟體比顯著降低(P<0.05)。隨發(fā)酵豆渣添加水平的增加，肝體比呈先升高后下降趨勢(shì)，在FSR12組有最大值，顯著高于除FSR6組外的其他各組(P<0.05)。各組建鯉的肥滿度以及全魚(yú)水分、粗蛋白質(zhì)、粗脂肪和粗灰分含量均無(wú)顯著差異(P>0.05)。

2.3 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉血漿生化指標(biāo)的影響

由表5可知，各組建鯉血漿丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶、天門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶和堿性磷酸酶活性，以及葡萄糖和甘油三酯含量無(wú)顯著差異(P>0.05)。FSR12組血漿總蛋白含量顯著高于對(duì)照組、FSR6組和FSR24組(P<0.05)，而與FSR18組無(wú)顯著差異(P>0.05)。對(duì)照組血漿總膽固醇含量顯著高于各試驗(yàn)組(P<0.05)。

表4 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉形態(tài)指標(biāo)和體組成的影響

表5 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉血漿生化指標(biāo)的影響

2.4 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉血漿抗氧化指標(biāo)的影響

由表6可知，各試驗(yàn)組血漿超氧化物歧化酶和過(guò)氧化氫酶活性顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。對(duì)照組血漿丙二醛含量顯著于FSR12組、FSR18組和FSR24組(P<0.05)，與FSR6組無(wú)顯著差異(P>0.05)。FSR18組和FSR24組血漿過(guò)氧化氫酶/超氧化物歧化酶值顯著高于對(duì)照組和其他試驗(yàn)組(P<0.05)。各試驗(yàn)組血漿谷胱甘肽過(guò)氧化物酶活性和谷胱甘肽過(guò)氧化物酶/超氧化物歧化酶值無(wú)顯著差異(P>0.05)。

3 討 論

3.1 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉生長(zhǎng)性能的影響

大量研究表明，生物發(fā)酵能有效提高植物性蛋白質(zhì)的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值。據(jù)報(bào)道，通過(guò)發(fā)酵可增加蛋白質(zhì)和小肽含量來(lái)提高飼料營(yíng)養(yǎng)價(jià)值[3,18]。從表1中數(shù)據(jù)可以看出，豆渣發(fā)酵后營(yíng)養(yǎng)價(jià)值得到明顯改善，養(yǎng)分含量得到提高，抗?fàn)I養(yǎng)因子含量降低。豆渣作為家畜的蛋白質(zhì)飼料，已經(jīng)取得良好的生產(chǎn)效果[10,19]。本研究結(jié)果也證實(shí)，建鯉飼料中發(fā)酵豆渣的添加水平為10.2%時(shí)可以有效改善其生長(zhǎng)性能。這說(shuō)明發(fā)酵豆渣作為魚(yú)類飼料蛋白質(zhì)源是可行的。研究顯示，豆粕發(fā)酵后添加于飼糧中也可以顯著改善豬[20]和肉雞[21]的生長(zhǎng)性能，同樣，在大西洋鮭[22]、虹鱒[23]和日本沼蝦[24]上也有類似的報(bào)道。這可能是因?yàn)榘l(fā)酵能夠提高豆渣中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)含量[18]，減少或降低抗?fàn)I養(yǎng)因子含量[25-26]，進(jìn)而促進(jìn)動(dòng)物生長(zhǎng)。此外，研究發(fā)現(xiàn)，豆粕發(fā)酵后添加于飼料中既不導(dǎo)致虹鱒腸道形態(tài)學(xué)發(fā)生變化[23]，也不導(dǎo)致大西洋鮭腸道病變[22]。隨后的研究進(jìn)一步證實(shí)，飼料添加枯草芽孢桿菌發(fā)酵豆粕會(huì)顯著改善石斑魚(yú)肝臟和后腸的組織形態(tài)[27]。這些結(jié)果表明飼料發(fā)酵有利于動(dòng)物消化道健康，該技術(shù)可應(yīng)用于陸生家畜和水生動(dòng)物飼料中。

表6 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉血漿抗氧化指標(biāo)的影響

本試驗(yàn)中，發(fā)酵豆渣添加水平達(dá)到24%時(shí)會(huì)顯著降低建鯉的生長(zhǎng)速度，但攝食率并沒(méi)有降低，這表明發(fā)酵豆渣的適口性不是抑制建鯉生長(zhǎng)的因素。一方面，發(fā)酵可以提高動(dòng)物腸道中消化酶的活性，進(jìn)而提高消化率；另一方面，發(fā)酵物中的枯草芽孢桿菌和乳酸菌也被視作水產(chǎn)養(yǎng)殖的益生菌，可以促進(jìn)魚(yú)類的生長(zhǎng)和健康[28]。但豆渣發(fā)酵后粗纖維和抗?fàn)I養(yǎng)因子(胰蛋白酶抑制因子)含量仍然很高，這是否是影響發(fā)酵豆渣在建鯉飼料中高劑量應(yīng)用的限制因素，值得今后進(jìn)一步研究。

本試驗(yàn)結(jié)果顯示，發(fā)酵豆渣的添加水平會(huì)顯著影響建鯉的肝體比，在添加水平為12%時(shí)肝體比達(dá)到最大。從試驗(yàn)魚(yú)來(lái)看，建鯉的體重小于50 g，處于肝臟的發(fā)育時(shí)期。這表明發(fā)酵豆渣可以促進(jìn)建鯉肝臟的健康發(fā)育，進(jìn)而促進(jìn)其生長(zhǎng)。在小鼠[6]和倉(cāng)鼠[7]上的研究發(fā)現(xiàn)，飼糧中添加豆渣能提高肝臟中甾醇14α-去甲基化酶(CYP51)和過(guò)氧化物酶體增殖劑激活受體α(PPARα)基因的表達(dá)，從而降低肝臟的脂肪沉積。眾所周知，大豆蛋白中富含的異黃酮能減少肝臟脂肪的生成[29]。這些結(jié)果表明，豆渣或發(fā)酵豆渣有利于動(dòng)物肝臟的健康。本試驗(yàn)中還發(fā)現(xiàn)，發(fā)酵豆渣可以降低建鯉的臟體比。從本試驗(yàn)結(jié)果來(lái)看，臟體比降低與肝體比無(wú)關(guān)，這可能是降低了魚(yú)類腸系膜脂肪所致，值得我們關(guān)注和深入研究。

3.2 發(fā)酵豆渣對(duì)建鯉血漿生化指標(biāo)和抗氧化能力的影響

血漿生化指標(biāo)可以反映魚(yú)類的生理和營(yíng)養(yǎng)狀況。研究表明，豆渣可以調(diào)節(jié)糖尿病小鼠的血漿葡萄糖含量[30]；同樣，發(fā)酵桑葉可以改善大口黑鱸的血漿葡萄糖含量[31]。而本試驗(yàn)中發(fā)酵豆渣的添加對(duì)建鯉血漿葡萄糖含量并未產(chǎn)生顯著影響，這可能與試驗(yàn)動(dòng)物種類和試驗(yàn)材料有關(guān)。但發(fā)酵豆渣可以顯著降低建鯉血漿總膽固醇含量，與在真鯛[32]上的研究結(jié)果一致。同樣也發(fā)現(xiàn)，豆渣可以降低老鼠[33]和敘利亞倉(cāng)鼠[7]血漿膽固醇含量。據(jù)報(bào)道，大豆蛋白能改善動(dòng)物的血脂含量[30]。這些結(jié)果表明發(fā)酵豆渣參與調(diào)節(jié)動(dòng)物的血脂代謝。此外，豆渣在預(yù)防高膽固醇血癥[34]和高脂血癥[7]方面也發(fā)揮重要作用，這與豆渣能增強(qiáng)肝臟β-氧化相關(guān)基因的表達(dá)有關(guān)[6]。相反，Lim等[35]發(fā)現(xiàn)羅非魚(yú)的血液生化指標(biāo)不受豆粕發(fā)酵過(guò)程的影響。因此，關(guān)于魚(yú)類營(yíng)養(yǎng)和臨床醫(yī)學(xué)之間的關(guān)系需要進(jìn)一步研究。

研究表明，植物發(fā)酵產(chǎn)品可以增強(qiáng)魚(yú)類的非特異性免疫反應(yīng)，提高魚(yú)類的抗氧化能力[21,36]。已有研究指出，豆渣是抗氧化成分的潛在來(lái)源[2,37-38]。本研究發(fā)現(xiàn)，飼料中添加發(fā)酵豆渣顯著降低建鯉血漿丙二醛含量，升高血漿超氧化物歧化酶和過(guò)氧化氫酶活性。在黑鯛上的研究同樣發(fā)現(xiàn)發(fā)酵豆粕能夠提高魚(yú)體的抗氧化能力[38]，在對(duì)日本沼蝦的研究中也有類似的結(jié)果[25]，這可能與發(fā)酵豆渣或發(fā)酵豆粕含有異黃酮和抗氧化劑有關(guān)。關(guān)于魚(yú)類營(yíng)養(yǎng)與抗氧化能力的研究資料有限[39]，豆渣富含抗氧化物質(zhì)，今后有必要對(duì)其抗氧化能力進(jìn)行深入研究，了解其作用機(jī)制。

4 結(jié) 論

① 發(fā)酵豆渣作為建鯉飼料的蛋白質(zhì)源是可行的。

② 建鯉飼料中發(fā)酵豆渣的適宜添加水平為10.2%，可以改善建鯉的生長(zhǎng)性能，過(guò)高的添加水平(24%)會(huì)抑制建鯉的生長(zhǎng)，但可以提高機(jī)體的抗氧化能力。

參考文獻(xiàn)：

[1] SCIALABBA E H,JAN O,TOSTIVINT C,et al.Food wastage footprint:impacts on natural resources.Summary report[M].[S.l.]:[s.n.]，2013.

[2] LI B,QIAO M Y,LU F.Composition,nutrition,and utilization of okara (soybean residue)[J].Food Reviews International,2012,28(3):231-252.

[3] WENG C V,YANG K L C A U,LIU S Q.Okara (soybean residue) biotransformation by yeastYarrowialipolytica[J].International Journal of Food Microbiology,2016,235:1-9.

[4] ZHU Y P,FAN J F,CHENG Y Q,et al.Improvement of the antioxidant activity of Chinese traditional fermented okara (Meitauza) usingBacillussubtilisB2[J].Food Control,2008,19(7):654-661.

[5] DEVI M K A,GONDI M,SAKTHIVELU G,et al.Functional attributes of soybean seeds and products,with reference to isoflavone content and antioxidant activity[J].Food Chemistry,2009,114(3):771-776.

[6] KIM H S,YU O K,BYUN M S,et al.Okara,a soybean by-product,prevents high fat diet-induced obesity and improves serum lipid profiles in C57BL/6J mice[J].Food Science and Biotechnology,2016,25(2):607-613.

[7] VILLANUEVA M J,YOKOYAMA W H,HONG Y J,et al.Effect of high-fat diets supplemented with okara soybean by-product on lipid profiles of plasma,liver and faeces inSyrianhamsters[J].Food Chemistry,2011,124(1):72-79.

[8] RAHMAN M M,ABDULLAH R B,KHADIJAH W E,et al.Feed intake,digestibility and growth performance of goats offered Napier grass supplemented with molasses protected palm kernel cake and soya waste[J].Asian Journal of Animal and Veterinary Advances,2013,8(8):527-534.

[9] KIM S W,VAN H E,JI F,et al.Fermented soybean meal as a vegetable protein source for nursery pigs:Ⅰ.Effects on growth performance of nursery pigs[J].Journal of Animal Science,2010,88(1):214-224.

[10] SINHA S,SINHA A,MAHTO D,et al.Study on the growth performance of the broiler after feeding of okara meal containing with or without non-starch polysaccharides degrading enzyme[J].Veterinary World,2013,6(6):325-328.

[11] WONG M H,TANG L Y,KWOK F S.The use of enzyme-digested soybean residue for feeding common carp[J].Biomedical and Environmental Sciences,1996,9(4):418-423.

[12] RASHAD M M,MAHMOUD A E,ABDOU H M,et al.Improvement of nutritional quality and antioxidant activities of yeast fermented soybean curd residue[J].African Journal of Biotechnology,2011,10(28):5504-5513.

[13] 余永紅,鄧澤元,李靜,等.面包串珠霉發(fā)酵對(duì)豆渣成分影響研究[J].食品科學(xué),2005(9):129-131.

[14] TANG J W,SUN H,YAO X H,et al.Effects of replacement of soybean meal by fermented cottonseed meal on growth performance,serum biochemical parameters and immune function of yellow-feathered broilers[J].Asian-Australasian Journal of Animal Sciences,2012,25(3):393-400.

[15] LI S,SANG Y,DAN Z,et al.Optimization of fermentation conditions for crude polysaccharides byMorchellaesculenta,using soybean curd residue[J].Industrial Crops & Products,2013,50(10):666-672.

[16] VAINTRAUB I A,LAPTEVA N A.Colorimetric determination of phytate in unpurified extracts of seeds and the products of their processing[J].Analytical Biochemistry,1988,175(1):227-230.

[17] SMITH C,VAN MEGEN W,TWAALFHOVEN L,et al.The determination of trypsin inhibitor levels in foodstuffs[J].Journal of the Science of Food & Agriculture,2010,31(4):341-350.

[18] HONG K J,LEE C H,KIM S W.AspergillusoryzaeGB-107 fermentation improves nutritional quality of food soybeans and feed soybean meals[J].Journal of Medicinal Food,2004,7(4):430-435.

[19] HARTHAN L B,CHERNEY D J R.Okara as a protein supplement affects feed intake and milk composition of ewes and growth performance of lambs[J].Animal Nutrition,2017,3(2):171-174.

[20] KIM S S,PHAM M A,KIM K W,et al.Effects of microbial fermentation of soybean on growth performances,phosphorus availability,and antioxidant activity in diets for juvenile olive flounder (Paralichthysolivaceus)[J].Food Science and Biotechnology,2010,19(6):1605-1610.

[21] FENG J,LIU X,XU Z R,et al.Effects ofAspergillusoryzae3.042 fermented soybean meal on growth performance and plasma biochemical parameters in broilers[J].Animal Feed Science and Technology,2007,134(3/4):235-242.

[22] REFSTIE S,SAHLSTR?M S,BR?THEN E,et al.Lactic acid fermentation eliminates indigestible carbohydrates and antinutritional factors in soybean meal for Atlantic salmon (Salmosalar).[J].Aquaculture,2005,246(1/2/3/4):331-345.

[23] YAMAMOTO T,IWASHITA Y,MATSUNARI H,et al.Influence of fermentation conditions for soybean meal in a non-fish meal diet on the growth performance and physiological condition of rainbow troutOncorhynchusmykiss[J].Aquaculture,2010,309(1/2/3/4):173-180.

[24] DING Z L,ZHANG Y X,YE J Y,et al.An evaluation of replacing fish meal with fermented soybean meal in the diet ofMacrobrachiumnipponense:growth,nonspecific immunity,and resistance toAeromonashydrophila[J].Fish & Shellfish Immunology,2015,44(1):295-301.

[25] WANG Y,LIU X T,WANG H L,et al.Optimization of processing conditions for solid-state fermented soybean meal and its effects on growth performance and nutrient digestibility of weanling pigs[J].Livestock Science,2014,170:91-99.

[26] REDDY N R,PIERSON M D.Reduction in antinutritional and toxic components in plant foods by fermentation[J].Food Research International,1994,27(3):281-290.

[27] SHIU Y L,HSIEH S L,GUEI W C,et al.UsingBacillussubtilisE20-fermented soybean meal as replacement for fish meal in the diet of orange-spotted grouper (Epinepheluscoioides,Hamilton)[J].Aquaculture Research,2015,46(6):1403-1416.

[28] NAYAK S K.Probiotics and immunity:a fish perspective[J].Fish & Shellfish Immunology,2010,29(1):2-14.

[29] TORRES N,TORRE-VILLALVAZO I,TOVAR A R.Regulation of lipid metabolism by soy protein and its implication in diseases mediated by lipid disorders[J].Journal of Nutritional Biochemistry,2006,17(6):365-373.

[30] 徐虹,藺新英,王蕓,等.豆渣粉對(duì)糖尿病小鼠血糖血脂及肝腎組織形態(tài)的影響[J].營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào),2000,22(2):171-174.

[31] 趙鵬飛,彭祥和,陳擁軍,等.高脂或低蛋白日糧中添加發(fā)酵桑葉對(duì)大口黑鱸生長(zhǎng)、代謝與抗氧化能力的影響[J].淡水漁業(yè),2016,46(6):86-91.

[32] AZARM H M,LEE S M.Effects of partial substitution of dietary fish meal by fermented soybean meal on growth performance,amino acid and biochemical parameters of juvenile black sea breamAcanthopagrusschlegeli[J].Aquaculture Research,2014,45(6):994-1003.

[33] MATSUMOTO K,WATANABE Y S,YOKOYAMA S I.Okara,soybean residue,prevents obesity in a diet-induced murine obesity model[J].Bioscience,Biotechnology,and Biochemistry,2007,71(3):720-727.

[34] ROSSI E A,CAVALLINI D C U,CARLOS I Z,et al.Intake of isoflavone-supplemented soy yogurt fermented withEnterococcusfaeciumlowers serum total cholesterol and non-HDL cholesterol of hypercholesterolemic rats[J].European Food Research and Technology,2008,228(2):275-282.

[35] LIM S J,LEE K J.A microbial fermentation of soybean and cottonseed meal increases antioxidant activity and gossypol detoxification in diets for Nile tilapia,Oreochromisniloticus[J].Journal of the World Aquaculture Society,2011,42(4):494-503.

[36] ASHIDA T,TAKEL Y,TAKAGAKI M,et al.The dietary effects of a fermented vegetable product on glutathione peroxidase activity and lipid peroxidation of Japanese flounderParalichthysolivaceus[J].Fisheries Science,2006,72(1):179-184.

[37] AMIN I,MUKHRIZAH O.Antioxidant capacity of methanolic and water extracts prepared from food-processing by-products[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2010,86(5):778-784.

[38] JANKOWIAK L,TRIFUNOVIC O,BOOM R M,et al.The potential of crude okara for isoflavone production[J].Journal of Food Engineering,2014,124:166-172.