袁宇,藍(lán)艷禹,黃臣,李媚,廖安平
(廣西民族大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,廣西多糖材料與改性重點(diǎn)實驗室培育基地,廣西高校化學(xué)與生物轉(zhuǎn)化過程新技術(shù)重點(diǎn)實驗室,廣西南寧530006)
右旋糖酐是一種具有很高的生物相容性和生物水解性的、由簡單的葡萄糖單元聚合而成的中性細(xì)菌胞外多糖[1],右旋糖酐的基本化學(xué)式是 H(C6H10O5)nOH,它是蔗糖在細(xì)菌胞外酶右旋糖酐蔗糖酶的作用下生成的一種α-葡聚糖[2]。右旋糖酐產(chǎn)品是一類親水性很強(qiáng)的高分子化合物,合成的方法主要有微生物法和酶法[3],微生物法合成右旋糖酐的菌主要是嗜中溫或嗜熱細(xì)菌如明串珠菌、葡糖桿菌、鏈球菌、乳酸菌等[4-9]。右旋糖酐是第一個商業(yè)化的細(xì)菌胞外多糖[10],由腸膜明串珠菌合成的水溶性右旋糖酐廣泛應(yīng)用于制藥、食品、農(nóng)業(yè)和精細(xì)化工等領(lǐng)域[11],在低分子量藥物的轉(zhuǎn)化反應(yīng)中,右旋糖酐的應(yīng)用可提高藥物的水溶性[12]。2015年4月,在WHO基本藥物清單中,右旋糖酐T70被列為血漿代用品的基本藥物[1]。右旋糖酐的合成受到一系列物理和化學(xué)因素的影響,如溶解度、黏度、比旋度以及培養(yǎng)液中的氮、磷離子等[13]。為使右旋糖酐的產(chǎn)量最大化,研究人員已經(jīng)對生物合成條件進(jìn)行了優(yōu)化[14]。據(jù)報道,右旋糖酐的分子量大小和產(chǎn)量取決于各種反應(yīng)過程變量如溫度、蔗糖和受體的濃度等[15]。本試驗采用腸膜明串珠菌(CICC-21725),在單因素試驗基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)面法對合成培養(yǎng)的工藝條件進(jìn)行優(yōu)化以提高蔗糖的轉(zhuǎn)化率,為該菌的應(yīng)用提供可靠數(shù)據(jù)。
腸膜明串珠菌CICC-21725:中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心。
無水乙醇、蔗糖、磷酸二氫鉀、磷酸氫二鈉(均為分析純):國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;蛋白胨、瓊脂粉(均為生物試劑):廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;乙腈(色譜純):德國默克公司;水:自制二重蒸餾水。
LDZX-30FBS立式壓力蒸汽滅菌器:上海申安醫(yī)療器械廠;LT-XT搖床:瑞士Kuhner AG;ACB-4A1垂直流超凈工作臺:新加坡藝思高科技有限公司;SZ-97自動三重二次蒸餾水蒸餾器:上海亞榮生化儀器廠;LC20AD RID-10A高效液相色譜儀:日本島津。
種子培養(yǎng)基組份(g/L):蔗糖130,蛋白胨2.0,磷酸氫二鈉1.4,磷酸二氫鉀0.3。
發(fā)酵培養(yǎng)基組份(g/L):蔗糖 80,蛋白胨 7.0,磷酸氫二鈉1.4,磷酸二氫鉀0.3。
色譜柱:Polaris 5 NH2柱,4.6 mm×250 mm,5 μm,安捷倫公司;流動相:乙腈/水=78∶22(體積比);流速:1.0 mL/min;柱溫:35℃;檢測器溫度:40℃;進(jìn)樣量:20L。
將蔗糖干燥至恒重后稱取0.5g(精確至萬分之一),用75%乙腈(體積比)定容至50 mL,蔗糖標(biāo)準(zhǔn)儲備液的濃度為10mg/mL,稀釋配制一系列濃度的蔗糖溶液,用0.22 μm的有機(jī)系針式過濾頭過濾,放置備用。
從種子培養(yǎng)基中取10%(質(zhì)量比)的種子液于發(fā)酵培養(yǎng)基中,以接種時刻為0點(diǎn)取樣,之后每3個小時取樣,用流動相稀釋定容后在液相色譜中對蔗糖濃度進(jìn)行分析,蔗糖質(zhì)量的計算按照式1計算:
式中:m為取樣時轉(zhuǎn)化液中蔗糖的質(zhì)量,g;m1為轉(zhuǎn)化液的質(zhì)量,g;c為從標(biāo)準(zhǔn)工作曲線上得到的被測組分的濃度,mg/mL;V為樣品溶液定容體積,mL;m0為所取得轉(zhuǎn)化液的質(zhì)量,g。
蔗糖轉(zhuǎn)化率按照式2計算:
式中:m初為接種時轉(zhuǎn)化液中蔗糖的質(zhì)量,g;m終為反應(yīng)12 h后轉(zhuǎn)化液中蔗糖的質(zhì)量,g;m′為取出樣品中蔗糖的質(zhì)量,g。
按照1.3.3中的試驗方法,以峰面積/10 000為橫坐標(biāo),蔗糖濃度為縱坐標(biāo),用origin擬合出蔗糖的標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1所示。
由圖1(a)可知:當(dāng)蔗糖濃度在0.04 g/L~2.0 g/L時,線性回歸方程為Y=0.051 02X+0.002 62,其中R2=0.999 94;由圖1(b)可知:當(dāng)蔗糖濃度在 0.8 g/L~10.0 g/L時,線性回歸方程為Y=0.049 08X+0.056 51,其中R2=0.999 94。
圖1 蔗糖標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.1 Standard curve of sucrose
按照1.3.4中方法對腸膜明串珠菌轉(zhuǎn)化液進(jìn)行取樣分析,采用式(1)計算不同時間轉(zhuǎn)化液中的蔗糖質(zhì)量,結(jié)果見圖2。
圖2 不同時間轉(zhuǎn)化液中的蔗糖質(zhì)量Fig.2 The quality of sucrose at different time culture liquid
由圖2可知,在接種前期蔗糖質(zhì)量變化較為平緩,6 h~12 h之間蔗糖質(zhì)量急劇下降且12 h時基本轉(zhuǎn)化完全,12 h后變化平緩且最終為0。這是因為接種前期是腸膜明串珠菌生長的潛伏期,故變化不大,6 h后進(jìn)入生長對數(shù)期,這時菌體快速生長蔗糖消耗極快,12 h后進(jìn)入平穩(wěn)期。因此,后續(xù)試驗以12 h作為反應(yīng)終點(diǎn)對蔗糖轉(zhuǎn)化率進(jìn)行分析。
改變發(fā)酵培養(yǎng)液中蔗糖濃度為 50、60、80、90、100 g/L,蛋白胨、Na2HPO4、KH2PO4分別為 7、1.4、0.3g/L,以接種時為轉(zhuǎn)化起點(diǎn),在28℃、150 r/min搖床反應(yīng)器中轉(zhuǎn)化12 h后取樣分析,考察蔗糖濃度對蔗糖轉(zhuǎn)化率的影響,結(jié)果如圖3所示。
圖3 蔗糖濃度對蔗糖轉(zhuǎn)化率的影響Fig.3 The change of sucrose concentration on the influence of sucrose conversion
由圖3可知,當(dāng)蔗糖濃度不超過80 g/L時,在12 h內(nèi)蔗糖基本能夠轉(zhuǎn)化完全,轉(zhuǎn)化率較高;后隨著蔗糖濃度的增大,蔗糖轉(zhuǎn)化率降低,這是因為發(fā)酵液中過高的蔗糖濃度會影響菌體的生長,所以選擇蔗糖濃度為80 g/L。
按照1.3.1中配制腸膜明串珠菌的發(fā)酵培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)培養(yǎng)液pH值為7.1,反應(yīng)溫度28℃,搖床轉(zhuǎn)速分別為 0、50、100、150、200 r/min,以接種時為轉(zhuǎn)化起點(diǎn)培養(yǎng)12 h后取樣,試驗結(jié)果如圖4。
圖4 搖床轉(zhuǎn)速對蔗糖轉(zhuǎn)化率的影響Fig.4 The change of shaking speed on the influence of sucrose conversion
由圖4可知,搖床轉(zhuǎn)速對蔗糖轉(zhuǎn)化率影響較小,低轉(zhuǎn)速時蔗糖轉(zhuǎn)化率較高,隨著轉(zhuǎn)速的升高,蔗糖轉(zhuǎn)化率略有降低。搖床轉(zhuǎn)速主要通過改變培養(yǎng)液中的溶氧量及傳質(zhì)過程來影響腸膜明串珠菌,氧氣過多時會抑制其生長,增大搖床轉(zhuǎn)速會增大發(fā)酵液中的溶氧量和物質(zhì)之間的剪切力從而影響菌體生長,因此蔗糖轉(zhuǎn)化率有所降低,綜合考慮,轉(zhuǎn)速選擇100 r/min。
按照1.3.1中配制腸膜明串珠菌的發(fā)酵培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)培養(yǎng)液pH值為7.1,搖床轉(zhuǎn)速150 r/min,培養(yǎng)溫度分別為 20、25、30、35、40 ℃,以接種時為轉(zhuǎn)化起點(diǎn)培養(yǎng)12 h后取樣,試驗結(jié)果如圖5。
圖5 溫度對蔗糖轉(zhuǎn)化率的影響Fig.5 The change of temperature on the influence of sucrose conversion
由圖5可知,溫度變化對蔗糖轉(zhuǎn)化率影響較大,隨著溫度的升高蔗糖轉(zhuǎn)化率先增大后減小,在30、35℃時蔗糖轉(zhuǎn)化率較高。溫度主要通過影響右旋糖酐蔗糖酶的活性來影響蔗糖轉(zhuǎn)化率,溫度過低會使得酶催化反應(yīng)速率變慢,過高會使酶變性或失活,因此后續(xù)反應(yīng)溫度選擇30℃。
按照1.3.1中配制腸膜明串珠菌的發(fā)酵培養(yǎng)基,調(diào)節(jié)培養(yǎng)液 pH 值分別為 6.1、6.5、7.1、7.6、8.0,搖床反應(yīng)條件28℃,150 r/min,以接種時為轉(zhuǎn)化起點(diǎn)培養(yǎng)12 h后取樣,試驗結(jié)果如圖6。
圖6 初始pH值對蔗糖轉(zhuǎn)化率的影響Fig.6 The change of initial pH on the influence of sucrose conversion
由圖6可知,蔗糖轉(zhuǎn)化率隨初始pH值的升高先增大后降低且在pH值為7.1的時候有最大值。pH值的變會化引起菌體細(xì)胞膜電荷發(fā)生改變而影響菌體的生長,同時pH值變化會影響右旋糖酐蔗糖酶的活性。后續(xù)反應(yīng)中初始pH值選擇7.1。
在上述單因素試驗的基礎(chǔ)上,采用響應(yīng)面法考察蔗糖濃度、搖床轉(zhuǎn)速、溫度、初始pH值對蔗糖轉(zhuǎn)化率的交互影響,以蔗糖轉(zhuǎn)化率為響應(yīng)值Y,設(shè)計四因素三水平響應(yīng)面試驗,試驗設(shè)計見表1。
表1 響應(yīng)面試驗因素及水平表Table 1 Factors and levels of response surface method
表2 響應(yīng)面設(shè)計及試驗結(jié)果Table 2 The design of experiment and result of response surface
通過Design Expert軟件對表2中試驗結(jié)果進(jìn)行二次多元回歸擬合,得到下列二次多元回歸方程:
對上述二次多元回歸模型進(jìn)行方差分析,結(jié)果見表3。
表3 回歸模型方差分析表Table 3 Variance analysis for the regression model
由表3可知,回歸擬合模型(Pr>F)值<0.000 1,擬合模型極顯著;實驗的失擬項(Pr>F)=0.069 9>0.05,差異不顯著,表示此模型合理且不再引入更高次的項;模型擬合系數(shù)R2為0.999 5,調(diào)整R2為0.999,擬合模型能闡明99.9%的響應(yīng)值的改變。變異系數(shù)為0.54%,較小,說明擬合模型置信度較高。因此擬合模型用于右旋糖酐合成的培養(yǎng)工藝條件分析和預(yù)測是可靠的。由表3中F值大小可知,各因素對右旋糖酐收率影響強(qiáng)度為C>A>B>D。因素A、B、C、D的交互作用與產(chǎn)率的響應(yīng)面及其等高線見圖7。
圖7 各因素交互作用響應(yīng)面曲線圖Fig.7 Response surface of various factors interaction
圖7為各因素之間兩兩交互作用的響應(yīng)面曲線圖,從圖7及表3中可知,CD因素交互作用不顯著,AB、AC、AD、BC、BD因素之間交互作用顯著。從圖7可以看出初始pH值和溫度的交互作用對蔗糖轉(zhuǎn)化率的影響最大,隨著初始pH值和溫度的增大蔗糖轉(zhuǎn)化率也隨之增高。本試驗分析優(yōu)化得到的最佳培養(yǎng)工藝條件為蔗糖濃度69.58g/L、初始pH 6.92、溫度30.95℃、搖床轉(zhuǎn)速153.21 r/min,考慮到實際操作的可行性,調(diào)整后的培養(yǎng)工藝條件為蔗糖濃度70 g/L、初始pH 7.0、溫度30℃、搖床轉(zhuǎn)速150 r/min。
根據(jù)響應(yīng)面試驗結(jié)果,按照蔗糖、蛋白胨、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀濃度分別為70、7.0、1.4、0.3 g/L配制腸膜明串珠菌發(fā)酵培養(yǎng)基,調(diào)整初始pH值為7.0,高溫滅菌后接入10%(質(zhì)量比)種子液,在搖床溫度30℃,轉(zhuǎn)速150 r/min條件下轉(zhuǎn)化培養(yǎng)12 h,采用高效液相色譜法對培養(yǎng)液中的蔗糖進(jìn)行定量。進(jìn)行3次平行試驗,結(jié)果表明蔗糖轉(zhuǎn)化率為99.18%。
通過腸膜明串珠菌(CICC-21725)培養(yǎng)工藝條件的單因素試驗及Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計試驗和分析得到右旋糖酐的培養(yǎng)工藝條件為:蔗糖濃度70 g/L、初始pH 7.0、溫度30℃、搖床轉(zhuǎn)速150 r/min。配置腸膜明串珠菌培養(yǎng)基,在優(yōu)化的培養(yǎng)工藝條件下反應(yīng)12 h,對轉(zhuǎn)化液中的蔗糖含量進(jìn)行分析,得到蔗糖的轉(zhuǎn)化率為99.18%,平行試驗的相對誤差較小,說明該條件可行且具有實際操作意義。
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