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        青貯用拮抗黃曲霉并降解黃曲霉毒素菌株的篩選與鑒定

        2018-04-11 06:59:05張舒月鄭婧萱郭曉軍薛曉華李銘雪朱寶成
        中國飼料 2018年3期
        關(guān)鍵詞:香豆素初篩黃曲霉

        張舒月,鄭婧萱,郭曉軍,薛曉華,李銘雪,朱寶成

        (河北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河北保定 071000)

        青貯飼料中黃曲?霉毒素的污染是一個全球性問題,為青貯飼料中霉菌毒素評定的主要指標(biāo)(孟慶祥等,2016)。 其中黃曲霉毒素 B1(AFB1)被世界衛(wèi)生組織列為毒物之首,定為IA類致癌物質(zhì),給動物生產(chǎn)性能和人類健康帶來巨大的威脅 (喬宏興等,2017)。因此,青貯飼料中黃曲霉毒素的去除是反芻動物養(yǎng)殖者和科研機構(gòu)重點關(guān)注的內(nèi)容。

        黃曲霉毒素常見的脫毒方法包括物理法、化學(xué)法和生物法。但是理化方法會對青貯飼料的質(zhì)量和營養(yǎng)有不同程度的影響,甚至?xí)鹞廴尽O噍^之下生物法應(yīng)是最優(yōu)的選擇,生物脫毒主要有酶解法和微生物發(fā)酵法。酶解法近年來研究較多,但微生物降解酶的機理不明確、分離純化過程復(fù)雜、酶的活性不穩(wěn)定、酶作用條件苛刻等,難以在實際生產(chǎn)中推廣和應(yīng)用(計成等,2010)。目前,微生物法降解黃曲霉毒素已成為研究的熱點,但主要集中在利用微生物發(fā)酵過程中產(chǎn)生的代謝產(chǎn)物進(jìn)行脫毒,而通過生物競爭原理抑制黃曲霉生長從而降低霉菌毒素的產(chǎn)生和積累研究相對較少。由于黃曲霉毒素既可在作物田間生長時產(chǎn)生也可在倉儲期間產(chǎn)生,所以如果篩選到拮抗黃曲霉生長并且降解黃曲霉毒素的雙功能菌株,在青貯飼料中黃曲霉毒素的脫毒方面將具有很好的應(yīng)用前景。

        本試驗擬通過平板擴(kuò)散法和酶聯(lián)免疫法篩選拮抗黃曲霉生長且降解黃曲霉毒素的菌株,并對活性較高的菌株進(jìn)行性質(zhì)研究和種屬鑒定,為新型青貯劑的研制提供更多的毒素降解微生物種質(zhì)資源。

        1 材料與方法

        1.1材料

        1.1.1樣品牛糞、全株玉米青貯、土壤、牛奶、實驗室保存的菌株等。

        1.1.2試驗菌株黃曲霉(Aspergillus flavus),由河北農(nóng)業(yè)大學(xué)真菌毒素與分子病理學(xué)實驗室提供。

        1.1.3培養(yǎng)基發(fā)酵培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L、牛肉膏3 g/L、氯化鈉8.5 g/L、磷酸二氫鉀1 g/L、葡萄糖 1 g/L,pH 6.5

        香 豆 素 培 養(yǎng) 基 :KH2PO40.25 g/L、MgSO40.205 g/L、KNO30.5 g/L、 (NH4)2SO40.5g/L、CaCl20.004 g/L、FeCl30.002 g/L,pH 7.0, 加入 1 g 香豆素,固體培養(yǎng)基加入2%的瓊脂粉。

        1.1.4試劑香豆素,COOLABER科技有限公司;黃曲霉毒素標(biāo)準(zhǔn)品,美國Sigma公司;黃曲霉毒素試劑盒,北京華安麥科生物技術(shù)有限公司;PCR相關(guān)試劑,北京全式金生物技術(shù)有限公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2方法

        1.2.1菌株的分離稱取土壤、牛糞等樣品各10.0 g,分別加到裝有100mL無菌水的三角瓶中,放于37℃,180 r/min搖床中30min。吸取混勻后的溶液1.0mL于裝有9.0mL無菌水的試管中,用漩渦振蕩儀混勻,將混勻液逐級稀釋至10-7濃度。

        分別吸取各種樣品稀釋度為10-5~10-7的溶液100μL均勻涂布在NA培養(yǎng)基平板上,37℃培養(yǎng)24 h后挑選菌落形態(tài)各不相同的單菌落劃線從而進(jìn)一步純化,培養(yǎng)后觀察菌落形態(tài)并編號記錄,挑選單菌落接種至相應(yīng)的斜面,置于4℃冰箱中保存。

        1.2.2菌株初篩挑取保存在斜面上的菌株,分別點接在香豆素培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng),如有菌落長出,則在香豆素培養(yǎng)基上傳代3次,如傳代3次仍生長,則記錄該菌株編號,進(jìn)入后續(xù)試驗。

        1.2.3菌株復(fù)篩制作病原菌平板,待平板凝固后,使用直徑為1 cm的打孔器打孔。將初篩得到的菌株分別接種至NB培養(yǎng)基,37℃搖床培養(yǎng)12 h,以5%接種量轉(zhuǎn)接至發(fā)酵培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)48 h。 取發(fā)酵液1.5mL,10000 r/min離心 10min,取上清液80μL注入病原菌平板的孔中,放在37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),觀察是否有抑菌圈的出現(xiàn),并記錄抑菌圈的直徑。

        選擇抑菌圈直徑較大的菌株接種NB培養(yǎng)基,37℃培養(yǎng)12 h后,轉(zhuǎn)接到含AFB110μg/mL的發(fā)酵培養(yǎng)基中,37℃培養(yǎng)3 d。通過酶聯(lián)免疫試劑盒檢測發(fā)酵液中剩余的AFB1濃度,并計算AFB1降解率。

        1.2.4菌株的鑒定

        1.2.4.1菌株的形態(tài)學(xué)鑒定對菌落大小、菌落顏色、菌落質(zhì)地、菌落邊緣等特征進(jìn)行鑒別。

        1.2.4.2菌株的分子生物學(xué)鑒定利用PCR技術(shù)對菌落16S rDNA進(jìn)行擴(kuò)增,并將純化的PCR產(chǎn)物送測序公司進(jìn)行測序分析。將測序結(jié)果用BLAST軟件與GenBank中已登錄的16S rRNA基因序列進(jìn)行同源性比較,通過CLUSTALX和BIOEDIT等軟件進(jìn)行多重序列比對分析,并以Neighbor-joining法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(王偉等,2014)。

        1.2.4.3菌株的生理生化試驗根據(jù)16S rDNA序列分析的結(jié)果,對供試菌株進(jìn)行生理生化試驗,包括硝酸鹽還原、厭氧生長、淀粉水解、明膠液化、V-P測定、D-甘露醇發(fā)酵和丙酸鹽利用等。

        1.2.5菌株的性質(zhì)研究

        1.2.5.1菌株的pH耐受性制備種子液,按6.0%的接種量接種于 pH 分別為 3.5、4.5、5.5、6.5的發(fā)酵培養(yǎng)基中,37℃、180 r/min搖床培養(yǎng)2 d后,測定菌株的生物量。

        1.2.5.2菌株的溫度耐受性制備種子液,按6.0%的接種量接種于發(fā)酵培養(yǎng)基中,分別在17、27、37、47 ℃,180 r/min搖床培養(yǎng) 2 d后, 測定菌株的生物量。

        2 結(jié)果與分析

        2.1菌株的分離及初篩共分離得到120株菌,其中45株菌可以在以香豆素為唯一碳源的培養(yǎng)基上生長。

        2.2黃曲霉拮抗試驗病原菌平板擴(kuò)散法顯示初篩獲得的45株菌中有20株菌有抑菌圈。將抑菌圈的大小作為抑菌能力強弱的評判標(biāo)準(zhǔn),通過量取透明圈的直徑,共得到拮抗活性較高的菌株11株,如表1所示。

        表1 菌株抑菌圈大小

        2.3黃曲霉毒素降解試驗通過酶聯(lián)免疫試劑盒測定11株菌對AFB1的降解率,結(jié)果見表2。11株拮抗菌株對AFB1的降解率集中在60%~95%,N-1a的降解率最高,為95%。故選擇該菌株作為待測菌株進(jìn)行下一步試驗。

        表2 菌株對AFB1的降解率%

        2.4菌株的種屬鑒定

        2.4.1菌株的形態(tài)學(xué)鑒定菌株N-1a的菌落形態(tài)呈中間微凹狀,四周隆起,乳白色,不透明。菌體呈直桿狀,常以鏈狀排列,革蘭氏染色呈陽性,存在運動性,無莢膜,芽孢呈橢圓形。

        2.4.2菌株的分子生物學(xué)鑒定將菌株N-1a的16S rDNA序列與GenBank中所有已測定的原核生物的16S rDNA序列進(jìn)行比對,使用PHYLIP program package軟件處理所得數(shù)據(jù),得到了該菌株及相應(yīng)標(biāo)準(zhǔn)菌株的進(jìn)化距離并構(gòu)建了系統(tǒng)發(fā)育樹,見圖1。由比對結(jié)果可知,與枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)聚到了一起。

        圖1 基于16S rDNA序列同源性的菌株N-1a的系統(tǒng)發(fā)育樹

        2.4.3菌株的生理生化鑒定由于在系統(tǒng)發(fā)育樹中N-1a與枯草芽孢桿菌聚到了一起,故選擇枯草芽孢桿菌相關(guān)的項目進(jìn)行生理生化試驗,結(jié)果見表3。結(jié)果顯示,菌株N-1a與枯草芽孢桿菌生理生化結(jié)果相一致,結(jié)合細(xì)菌菌落菌體形態(tài)和16S rDNA序列分析結(jié)果最終判定該菌株為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)。

        2.5性質(zhì)研究

        2.5.1pH耐受性菌株N-1a在pH為 6.5、5.5、4.5和3.5時呈現(xiàn)不同的生長情況,如圖2所示,隨著pH的降低菌體濃度略有降低,但在pH為3.5時菌體濃度仍可達(dá)到108cfu/mL,表明該菌株具有較強的耐酸能力。

        表3 生理生化試驗結(jié)果

        圖2 菌株的pH耐受性

        2.5.2溫度耐受性菌株 N-1a在 17、27、37℃和47℃均能生長,這樣就能滿足南北方不同氣溫下的青貯試驗。如圖3所示,菌株N-1a在37℃時生長量達(dá)到最高值,在27℃和47℃時菌體濃度仍能達(dá)到108~109cfu/mL。

        圖3 菌株的溫度耐受性

        3 討論

        Gonzalez等(2008)報道,玉米青貯前的霉菌含量超過了104cfu/mL,其中,污染類型以曲霉屬為主,這與Keller等(2012)研究青貯飼料樣品中霉菌污染情況一致。目前黃曲霉毒素對食品和飼料危害極其嚴(yán)重,然而在去除方法中,物理、化學(xué)脫毒的方法存在營養(yǎng)成分流失,脫毒不徹底的缺點。本研究采用微生物法,不僅避免了這些缺點,而且條件溫和、安全環(huán)保,國內(nèi)外研究表明微生物脫毒法擁有廣闊的開發(fā)和應(yīng)用前景。

        由于黃曲霉毒素毒性較大,若直接用于篩選菌株,可能會威脅到人體的健康,而且黃曲霉毒素價格也相對較貴,所以本試驗采用與其結(jié)構(gòu)相似的香豆素為唯一碳源進(jìn)行菌株的初篩。相比而言,香豆素的毒性較低,價格較低廉。李超波等(2012)利用此法篩選到10株能夠在香豆素平板上正常生長的降解黃曲霉毒素的菌株,戴軍等(2014)利用此法篩選得到27株高效降解毒素的菌株。所以香豆素作為初篩底物來篩選降解黃曲霉毒素的菌株,不僅毒性大大減弱,而且方便準(zhǔn)確。

        近年來已有利用黑曲霉(李冰等,2012)、枯草芽孢桿菌(孫玲玉,2014)、施氏假單胞菌F4(李超波等,2012)降解黃曲霉毒素的報道,但是降解率大多都集中在85%左右。本研究篩選到的菌株N-1a對黃曲霉毒素的降解率達(dá)到95%,優(yōu)于先前其他研究。本試驗菌株N-1a經(jīng)鑒定為枯草芽孢桿菌,為國家飼料添加劑目錄中的安全菌株,并且該菌株還具有對黃曲霉的拮抗活性,應(yīng)用于青貯時可以達(dá)到對黃曲霉毒素防治結(jié)合的效果。

        品質(zhì)好的青貯玉米在青貯過程中pH會降低到4.0以下,北方地區(qū)進(jìn)行玉米青貯時,秋季溫度會低于20℃,故青貯菌株應(yīng)具有耐低pH、耐高低溫的性質(zhì)。本試驗篩選菌株N-1a在pH 3.5及溫度為17℃和47℃時生長情況均良好,是一株潛在的微生物青貯菌劑。

        4 結(jié)論

        本試驗獲得一株具有較高拮抗黃曲霉、降解黃曲霉毒素活性的枯草芽孢桿菌菌株,該菌株在pH 3.5~6.5和溫度17~47℃時生長情況均良好。

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