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        實時定量PCR檢測流感嗜血桿菌感染實驗室診斷方法的建立

        2018-03-29 00:50:55王良玉胡文娟竇海偉辛德莉郭東星
        檢驗醫(yī)學與臨床 2018年6期
        關鍵詞:標準檢測

        蔚 然,王良玉,高 琦,胡文娟,竇海偉,向 莉,辛德莉,郭東星△

        (1.首都醫(yī)科大學附屬北京友誼醫(yī)院/北京熱帶醫(yī)學研究所,北京100050 ;2.首都醫(yī)科大學附屬北京兒童醫(yī)院,北京100050)

        流感嗜血桿菌(Hi)為革蘭陰性菌,是人類呼吸道黏膜的常見定植細菌。流行病學調查顯示北京地區(qū)5歲以下急性呼吸道感染患兒2000-2002年呼吸道Hi攜帶率為26.1%,隨著疫苗的應用Hi攜帶率有所下降,但2010-2012年仍高達16.3%[1]。Hi是兒童時期細菌性腦膜炎、肺炎和菌血癥的重要病原菌之一,還可導致兒童中耳炎、上頜竇炎、急性會厭炎、化膿性關節(jié)炎和眼內炎等[2],給兒童健康造成很大威脅。由于Hi毒力較強,病情變化快,其導致的小兒肺炎屬于較嚴重的一種類型,病死率沒有得到有效控制,各地的診治方法也無標準,常有漏診、誤診情況[3]。Hi的早期、快速、準確檢測,對疾病的早期治療、疾病的轉歸及預后起到非常重要的作用?,F(xiàn)有診斷方法,如分離培養(yǎng)、血清學診斷等不能滿足臨床需要,需不斷探索早期、快速診斷Hi感染的新方法。近年來,分子生物學診斷正逐漸成為研究的熱點。本研究擬建立一種SYBR-Green染料法實時定量聚合酶鏈反應(PCR)檢測Hi感染的方法,以期實現(xiàn)Hi的臨床早期、快速、準確診斷?,F(xiàn)報道如下。

        1 資料與方法

        1.1一般資料 采集2014年9-12月就診于北京兒童醫(yī)院的患兒咽拭子標本226份。本研究通過倫理審查,患兒家屬均知情同意。菌株:肺炎支原體標準株M129菌株(ATCC29342)、人型支原體標準株(ATCC15488)、陰溝腸桿菌標準株(ATCC700323)、金黃色葡萄球菌標準株(ATCC25922)、肺炎克雷伯菌標準株(ATCC1705)和大腸埃希菌標準株(ATCC25922),含有Hi fucK基因質粒的大腸埃希菌凍存于本研究室。

        1.2儀器與試劑 ABI公司Prism@7500型熒光定量PCR儀;高純度質粒小提試劑盒(康為世紀生物科技有限公司,貨號CW0500S,生產批號20121);通用型柱式基因組提取試劑盒(康為世紀生物科技有限公司,貨號CW2298S,生產批號40137);PCR熒光染料為ULtra SYBR Mixture(康為世紀生物科技有限公司,貨號CW2601M,生產批號10209)。

        1.3方法

        1.3.1構建標準品 復蘇凍存于-80 ℃冰箱的含有Hi fucK基因的大腸埃希菌,構建質粒,采用康為世紀高純度質粒小提試劑盒提取質粒,實驗操作參考產品說明書。對提取的質粒進行定量分析,10倍稀釋構建水平為108、107、106、105、104、103、102、10 copy/μL的質粒作為標準品,保存于-80 ℃?zhèn)溆谩?/p>

        1.3.2設計并合成引物 針對Hi的fucK基因設計引物Hi-F/Hi-R,引物序列Hi-F:ATGGCGGGAACATCAATGA;Hi-R:ACGCATAGGAGGGAAATGGTT。引物由美國Invitrogen公司合成,經HPLC方式純化。

        1.3.3繪制標準曲線 以標準品為模板進行染料法熒光定量PCR,繪制標準曲線。熒光定量PCR反應體系:2×Taqman緩沖液10 μL,引物Hi-F/Hi-R各0.3 μL, DNA 模板2.0 μL,ddH2O 8.0 μL,總體積20.0 μL。反應條件:50 ℃ 2 min;95 ℃ 10 min;95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,40 個循環(huán);95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,95 ℃ 15 s。采用ABI公司7500型熒光定量PCR儀的SDS軟件分析實驗結果并繪制標準曲線。

        1.3.4方法學驗證 (1)敏感度:將構建的標準品稀釋為107、106、105、104、103、102、10 copy/μL,采用和繪制標準曲線時相同的反應體系和反應條件,檢測新建的實時熒光定量PCR的敏感度。(2)特異度:以本實驗室保存的肺炎支原體、人型支原體、陰溝腸桿菌、金黃色葡萄球菌、肺炎克雷伯菌和大腸埃希菌的DNA作為檢測模板,驗證新建的實時熒光定量PCR特異度。(3)檢驗臨床標本:采集的226份兒科患兒的咽拭子標本,均采用通用型柱式基因組提取試劑盒提取DNA,實驗操作參考產品說明書。用新建的實時熒光定量PCR檢測Hi的感染情況,反應體系和條件均參照構建標準曲線時采用的體系和條件。根據標本擴增的Ct值≤38、Tm值與標準品相符,且結合擴增曲線、溶解曲線,判定為陰陽性。

        2 結 果

        2.1標準曲線 10倍梯度稀釋用標準株提取的質粒,108、107、106、105、104、103、102、10 copy/μL的質粒標準品,用Hi-F/Hi-R引物分別擴增標準品,以標準品水平為橫坐標,對應的Ct值為縱坐標,采用SDS軟件分析實驗結果并繪制標準曲線。標準曲線方程:Y=-3.335 976X+35.492 149(R2=0.999);模板量與Ct值具有良好的相關性,能夠對模板定量。見圖1。

        圖1 標準曲線

        2.2敏感度 10倍梯度稀釋用標準株提取的質粒,108、107、106、105、104、103、102、10 copy/μL的質粒標準品,用Hi-F/Hi-R引物分別擴增標準品,檢驗新建熒光定量PCR的敏感度。新建實時熒光定量PCR可檢測拷貝數(shù)為10 copy的基因模板。見圖2。

        注:108、107、106、105、104、103、102、10分別代表標準品模板拷貝量

        圖2標準品擴增曲線

        2.3特異度 大腸埃希菌、陰溝腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、肺炎支原體、肺炎克雷伯菌和人型支原體標準株的DNA作為檢測模板,驗證新建實驗室診斷方法的特異度。結果顯示以上幾種病原體DNA均為陰性,新建實驗室診斷方法具有良好的特異度。見圖3。

        注:A為Hi標準品;B為陰溝腸桿菌標準株;C為大腸埃希菌標準株;D為肺炎支原體標準品;E為金黃色葡萄球菌標準品;F為人型支原體標準品;G為肺炎克雷伯菌標準株

        圖3 Hi的標準品與其他菌株標準株的溶解曲線

        2.4臨床標本檢測 用新建實時熒光定量PCR檢測臨床標本提取的DNA,結果顯示,226份咽拭子標本Ct值≤38,Tm值與標準品相符;結合擴增曲線、溶解曲線,判定為陽性,陽性檢出率為40.70%。PCR陽性產物測序(由生工生物工程股份有限公司完成)并與美國國立生物技術信息中心(NCBI)已發(fā)布的Hi菌株的基因序列比對,陽性率為92.3%。見圖4。

        注:A為溶解曲線;B為擴增曲線

        圖4臨床標本、Hi標準品的溶解曲線與擴增曲線

        3 討 論

        有研究報道,綜合192個國家的流行病學調查顯示,肺炎仍是導致兒童死亡的首要病因,其中由Hi引起的死亡占16.0%,我國由Hi感染引起的死亡占21.2%,高于世界平均水平[4-5]??赡苡捎贖i感染的臨床表現(xiàn)及胸部X線征象缺乏特異性,診斷Hi感染往往需要結合實驗室診斷方法[6]。對Hi感染的早期、快速、準確診斷對指導臨床合理規(guī)范用藥至關重要。

        傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)被認為是診斷Hi感染的金標準,但培養(yǎng)所需時間較長(36~72 h),難以實現(xiàn)快速鑒定[7],對臨床早期診斷的意義不大。該方法受培養(yǎng)條件、標本保存與運輸、實驗室培養(yǎng)條件等諸多因素影響。有報道稱,經改良培養(yǎng)基后,Hi分離率有所提高,也僅為59.9%[8-9]。血清學診斷方法主要通過檢測血清中的特異性抗原、抗體滴度的變化等判斷病原體感染,有研究報道其敏感度高于分離培養(yǎng)[10]。但血清抗體產生需4~5 d,不能進行快速檢測,且容易產生假陰性。因此,血清學診斷方法常用于回顧性診斷,不建議作為確診依據[11-12]。

        分子生物學診斷技術自1990年首次用于Hi的鑒定后,因其快速、敏感、特異、簡單等優(yōu)點,受到國內外學者的廣泛關注。目前已報道的分子生物學診斷Hi感染的方法有傳統(tǒng)PCR、巢式PCR、多重PCR、高分辨率溶解曲線等[13]。NAKHJAVANI等[14]將PCR用于Hi的檢測,并與常規(guī)培養(yǎng)法和血清學方法比較,PCR使檢出率明顯提高。理論上認為實時定量PCR較傳統(tǒng)PCR更敏感,并可實時監(jiān)測,實驗過程中即可判斷結果。實時定量PCR較巢式PCR,可以減少核酸污染問題,操作更簡便。實時定量PCR相較于多重PCR,用時更短,實驗條件更易優(yōu)化,敏感度更高。有研究顯示,以實時定量PCR為參考標準,多重PCR的敏感度、特異度分別僅為30.0%、75.0%[15]。

        COUGHLAN等[16]研究證實,fucK基因是目前發(fā)現(xiàn)的Hi特異度、敏感度最高,應用最廣的基因。本研究針對Hi的fucK基因設計引物,保障引物設計的合理性、可行性。相對于探針法,染料法不需要設計特異性探針,成本更低,更簡單。熒光定量PCR相對于常規(guī)分離培養(yǎng)和血清學診斷更加快速、簡易。本方法可檢測Hi基因拷貝數(shù)為10 copy的樣品,相較于商品試劑盒[17],其具有較高的敏感度,且成本較低。采用幾種不同常見細菌DNA標本,驗證其特異度,本實驗中幾種病原不存在交叉反應,具有良好的特異度。但所選用的特異性實驗菌種較為有限,在后續(xù)研究中,還應選擇更多的菌種進行實驗,對其特異度進一步的驗證。完善和優(yōu)化實驗條件后,226份臨床標本檢出Hi陽性92份,陽性率為40.70%。其PCR陽性產物測序與NCBI已發(fā)布的HI菌株的基因序列比對,準確率為92.3%。

        綜上所述,本研究中建立的實時定量PCR檢測Hi的實驗室診斷方法具有早期、快速、簡便、靈敏的優(yōu)勢,是Hi感染臨床診斷、流行病學調查、混合感染判定的可行手段,具有較高的推廣應用價值。

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