孫小龍 ,陳 耀 ,付永前 ,
(1.臺州學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院,浙江 臺州 318000;2.浙江金晟環(huán)保股份有限公司,浙江 臺州 317300)
L-乳酸作為生產(chǎn)綠色環(huán)保原料乳酸乙酯以及生物降解塑料-聚乳酸的單體,而越來越引起人們的重視[1]。合成L-乳酸的方法有很多,主要有化學(xué)合成法、酶法生產(chǎn)以及發(fā)酵法生產(chǎn)[2-4]。其中根霉菌,尤其是米根霉,因其在發(fā)酵生產(chǎn)L-乳酸過程中具有自身獨(dú)特的優(yōu)勢:高效、安全、環(huán)保等,而越來越多的應(yīng)用于L-乳酸的合成研究中[5,6]。目前米根霉合成L-乳酸由于較低的生產(chǎn)效率而難以應(yīng)用于工業(yè)化生產(chǎn)[7,8],為了提高米根霉合成L-乳酸的生產(chǎn)效率,大量工作致力于高產(chǎn)菌株的篩選、菌體形態(tài)控制、利用低價(jià)的原料以及新型生物反應(yīng)器等的研究[4,9-11]。然而,在絕大多數(shù)利用米根霉發(fā)酵合成L-乳酸的研究中,乳酸的產(chǎn)量和生產(chǎn)效率多數(shù)在60-120.0 g/L和0.7-2.5 g/L/h之間,遠(yuǎn)低于乳酸菌的生產(chǎn)效率[8,12,13]。部分研究嘗試通過菌絲球或固定化細(xì)胞方法達(dá)到令人滿意的生產(chǎn)水平[14,15],如,Efremenko等[14]提出,利用PVA凝膠固定化細(xì)胞可最大化的提高米根霉發(fā)酵產(chǎn)乳酸的生產(chǎn)效率,但是,這種搖瓶培養(yǎng)技術(shù)并不適用大規(guī)模的 L-乳酸生產(chǎn)[8,12]。
為了提高米根霉合成乳酸的生產(chǎn)效率,本課題組創(chuàng)新性的提出了米根霉一步發(fā)酵高通量合成L-乳酸的策略[7],在該策略條件下,米根霉發(fā)酵階段L-乳酸的產(chǎn)量和生產(chǎn)效率分別達(dá)到了158.0 g/L和5.54 g/(L·h)。同時(shí)研究發(fā)現(xiàn),分批補(bǔ)料策略有利于米根霉一步發(fā)酵合成L-乳酸。目前,基本沒有文獻(xiàn)系統(tǒng)研究分批補(bǔ)料調(diào)控對米根霉一步發(fā)酵合成L-乳酸的影響。因此,本研究,將系統(tǒng)的研究米根霉一步發(fā)酵積累L-乳酸的體系下的分批補(bǔ)料調(diào)控策略,為米根霉高效積累L-乳酸的工業(yè)化生產(chǎn)提供理論指導(dǎo)。
米根霉(Rhizopus oryzae)LA-UN-1(NRRL 395誘變菌株),臺州學(xué)院生物質(zhì)資源研究所保藏[8]。
葡萄糖(分析純),磷酸二氫鉀,氯化鉀,氯化鈣,碳酸鈣,均采購于廣東汕頭市西隴化工廠,瓊脂,蛋白胨,尿素,硫酸銨,酵母膏,磷酸均由國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司提供。
恒溫振蕩器(太倉市實(shí)驗(yàn)設(shè)備廠),SBA-40C生物傳感儀(山東微生物研究院),7.5L發(fā)酵罐(New Brunswick Scientific co.,bioflo 110系列),電子天平(賽多利斯),HPLC(戴安系列 Summit P 680)。
一步發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖20.0-220.0(根據(jù)不同分批補(bǔ)料策略進(jìn)行初糖濃度控制);蛋白胨3.0;KH2PO40.2;MgSO4·7H2O 0.2;CaCO3過量。
1.5.1 米根霉孢子懸浮液的制備
取米根霉菌絲體接種于PDA斜面培養(yǎng)基,隨后置于恒溫培養(yǎng)箱中30℃培養(yǎng)6-7 d,孢子成熟后用無菌水洗下孢子,用醫(yī)用無菌棉過濾得到孢子懸浮液。采用血球板計(jì)數(shù)法調(diào)整孢子濃度為107個(gè)/mL,保藏于4℃的冰箱待用。
1.5.2 一步乳酸發(fā)酵培養(yǎng)[7]
在優(yōu)化的7.5 L發(fā)酵罐內(nèi)進(jìn)行,工作體積為5.0 L,取濃度為107個(gè)孢子/mL的孢子液100 mL接入到發(fā)酵罐中進(jìn)行發(fā)酵。一步發(fā)酵24 h進(jìn)入產(chǎn)酸階段,通過減少發(fā)酵罐中發(fā)酵液體積(減少到原體積的50%)來增加單位菌體生物量[7],從而進(jìn)入快速產(chǎn)酸階段。整個(gè)過程中通氣量、攪拌速度,培養(yǎng)溫度分別控制在0.5 vvm、300 rpm和30℃,碳酸鈣作為中和劑。以單批次,初始濃度為220 g/L的葡萄糖作為對照。在整個(gè)發(fā)酵過程中,不再添加葡萄糖,除了過量的CaCO3作為中和劑調(diào)節(jié)pH值在6.0左右。
所有的分批補(bǔ)料發(fā)酵(初始葡萄糖濃度分別為150.0,100.0,50.0和20.0 g/L)都是以單批次培養(yǎng)開始,在發(fā)酵過程中,當(dāng)殘?zhí)墙档?.0 g/L以下時(shí),用濃度為400 g/L的葡萄糖母液進(jìn)行調(diào)節(jié)。過量的CaCO3作為中和劑調(diào)節(jié)pH值在6.0左右。
在樣品5.0 mL中加入5.0 mL的1 mol/L的鹽酸溶液,將混合液置于80℃的恒溫水浴鍋中至反應(yīng)10 min,5000 rpm離心5 min后,取清液稀釋定容至所需體積,用0.45 μm微濾膜抽濾清液,待用。
糖濃度的測定:SBA-40C生物傳感分析儀測定。
細(xì)胞干重的測定:將培養(yǎng)物抽濾,并用蒸餾水洗滌3次,抽濾后,60℃烘干至恒重(含水量在4%以下),稱重。
乳酸的測定:按文獻(xiàn)[8]方法進(jìn)行。HDLC檢測方法:進(jìn)樣量20 uL;流動(dòng)相0.005 M H2SO4,流速0.8 mL/min;溫度 60℃。
L-乳酸比生成速率(qp,h-1)通過方程式(1)來估計(jì)或擬合細(xì)胞生長(x,g/L)和 L-乳酸生產(chǎn)量(p,g/L)的數(shù)據(jù)擬合數(shù)據(jù)將用Origin繪圖軟件對分批發(fā)酵過程中的數(shù)據(jù)進(jìn)行插值計(jì)算(時(shí)間間隔為0.1 h)得到。
按文獻(xiàn)[9]方法進(jìn)行。每分鐘催化1μmol/L NADH的酶量為一個(gè)酶活單位。蛋白濃度使用Bradford方法檢測。
在之前的研究中[7],當(dāng)總葡萄糖濃度達(dá)到220.0 g/L時(shí),L-乳酸積累被強(qiáng)烈的抑制。因此,在這里,初始葡萄糖濃度為220.0 g/L的單批次發(fā)酵和不同初始葡萄糖濃度(150.0,100.0,50.0和20.0 g/L)但總糖濃度控制在220.0 g/L左右的分批補(bǔ)料發(fā)酵對米根霉一步發(fā)酵合成L-乳酸的影響進(jìn)行了考察,其結(jié)果如圖1所示。從圖1A-E和表1所示,L-乳酸的合成不管是在單批次發(fā)酵還是分批補(bǔ)料發(fā)酵,都存在兩個(gè)比較明顯的階段(這與之前研究[7]基本一致)。與單批次乳酸發(fā)酵相比,分批補(bǔ)料發(fā)酵不管是最后L-乳酸的產(chǎn)量,生產(chǎn)效率還是菌體生物量,都明顯高于單批次發(fā)酵(單批次發(fā)酵在發(fā)酵階段的乳酸產(chǎn)量、生產(chǎn)效率和菌體量僅僅只有101.0 g/L,2.52 g/(L·h)和6.85 g/L)。這也進(jìn)一步驗(yàn)證了單批次發(fā)酵中細(xì)胞周邊較高的滲透壓不利于乳酸的合成[10]。
在分批補(bǔ)料發(fā)酵過程中,L-乳酸的產(chǎn)量,生產(chǎn)效率和糖酸轉(zhuǎn)化率隨著初始葡萄糖濃度的降低而增加(表1)。當(dāng)初始葡萄糖濃度達(dá)到50.0 g/L時(shí),產(chǎn)酸階段的L-乳酸產(chǎn)量,生產(chǎn)效率以及糖酸轉(zhuǎn)化率都達(dá)到最大,分別為160.0 g/L,6.15 g/(L·h)和0.82 g/g。與單批次發(fā)酵相比,L-乳酸產(chǎn)量,生產(chǎn)效率以及糖酸轉(zhuǎn)化率分別提高了1.57,2.44和1.68倍。與此同時(shí),該生產(chǎn)效率也要高于課題組之前的報(bào)道[7](5.45 g/(L·h))。隨著初始葡萄糖濃度的進(jìn)一步降低,較低的初始葡萄糖濃度(20.0 g/L)并不有利于L-乳酸的積累,進(jìn)一步對發(fā)酵過程進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),在發(fā)酵初始階段,乳酸的產(chǎn)量和生產(chǎn)效率相對較高,但隨著發(fā)酵的進(jìn)行(達(dá)到37 h后),其葡萄糖消耗速率和乳酸生成速率開始下降,并逐漸低于其它分批補(bǔ)料調(diào)控方式。
為了更加深入的研究不同一步發(fā)酵策略對L-乳酸合成的影響,我們對L-乳酸比生成速率(qp)進(jìn)行分析。這些參數(shù)將基于圖1A-E中的數(shù)據(jù),利用插值法進(jìn)行計(jì)算,最終結(jié)果可見圖1F。如圖所示,發(fā)酵培養(yǎng)24 h后,分批補(bǔ)料發(fā)酵的qp都要高于單批次發(fā)酵,qp隨著初始葡萄糖濃度的降低而增加,發(fā)酵培養(yǎng)37 h后,初始糖濃度為20.0 g/L的qp達(dá)到最高值隨后開始下降,與此同時(shí),其他發(fā)酵模式下的qp繼續(xù)上升,并在培養(yǎng)43 h后達(dá)到最大。而此時(shí)始葡萄糖濃度為50.0 g/L時(shí)的qp最大。
圖1 米根霉單批次和分批補(bǔ)料一步發(fā)酵曲線(A)單批次發(fā)酵,初始葡萄糖為220.0g/L;(B)分批補(bǔ)料發(fā)酵:初始葡萄糖濃度150.0g/l,發(fā)酵進(jìn)行到47小時(shí)補(bǔ)糖70.0g/L,總糖為219.0g/L;(C)分批補(bǔ)料發(fā)酵:初始葡萄糖濃度100.0g/L,發(fā)酵進(jìn)行到37,34和47小時(shí),分別補(bǔ)糖45.0g/L,總糖為224.0g/L;(D)分批補(bǔ)料發(fā)酵:初始葡萄糖濃度50.0g/L,發(fā)酵進(jìn)行到29,39和45小時(shí),分別補(bǔ)糖60,60和55.0g/L,總糖為217.0g/L;(E)分批補(bǔ)料發(fā)酵:初始葡萄糖濃度20g/L,發(fā)酵進(jìn)行到24,32,39和47小時(shí),分別補(bǔ)糖50.0g/L,總糖為218.0g/L;(F)乳酸比合成速率(qp)。(□)殘余葡萄糖濃度;(△)生物量;(○)L-乳酸。Fig.1 Time-course of L-LA production by R.oryzae one-step fermentation using batch and fed-batch culture strategies.(A)Batch culture with 220g/L initial glucose;(B)Fed-batch culture:Initial glucose concentration of 150g/L,with 70g/L of supplemental glucose fed in to the fermenter after 47h of fermentation,resulting in a total glucose concentration of 219 g/L;(C)Fed-batch culture( Initial glucose concentration of 100g/L,with solutions of 45g/L glucose fed in to the fermenter at 37,43,and 47h,resulting in a total glucose concentration of 224g/L;(D)Fed-batch culture:Initial glucose concentration of 50 g/L,with two solutions of 60 g/L glucose added into the fermenter at 29 and 39h,and a solution of 55 g/L glucose added at 45h,resulting in a total glucose concentration of 217g/L;(E)Fed-batch culture:Initial glucose concentration 20/L,with 50g/L glucose added to the fermenter at 24,32,39 and 47h,resulting in a total glucose concentration of 218g/L;(F)Comparison of specific L-LA formation rate(qp).(□)Residual glucose concentration;(△)Biomass;(○)L-LA production.
表1 不同一步發(fā)酵策略產(chǎn)乳酸參數(shù)對比Table.1 Comparisons of the parameters of L-LA one-step fermentation by R.oryzae using different culture strategies
在之前的研究中發(fā)現(xiàn)[8],米根霉培養(yǎng)過程中的菌體生物量和菌球特性能影響L-乳酸的合成效率。在單批次發(fā)酵過程中(初始葡萄糖濃度為220.0 g/L),菌體培養(yǎng)24 h后,生物量較低(6.85 g/L),并且菌球光滑致密,該菌體形態(tài)不利于傳氧傳質(zhì),并最終影響L-乳酸的合成[15,16];在分批補(bǔ)料發(fā)酵過程中,隨著初始葡萄糖濃度的降低,菌體培養(yǎng)24 h后,生物量越來越大(分別為8.24,8.94和9.01 g/L),與此同時(shí),形成的菌球越來越松散,松散的菌球有利于L-乳酸的合成;當(dāng)初始葡萄糖濃度為20.0 g/L時(shí),菌體形態(tài)呈現(xiàn)于菌球與絮狀混合狀態(tài),該形態(tài)在發(fā)酵培養(yǎng)前37 h,有利于傳氧傳質(zhì),然而,隨著發(fā)酵的進(jìn)行,該形態(tài)將進(jìn)一步增加發(fā)酵過程中溶液的黏稠度,從而進(jìn)一步增加了傳氧傳質(zhì)的阻力,并進(jìn)一步降低L-乳酸的合成[17-19]。
在此基礎(chǔ)上,對不同培養(yǎng)條件下,不同培養(yǎng)時(shí)間(24,36,43,50 h)的乳酸脫氫酶(LDH)酶活進(jìn)行了分析比對(表2)。研究發(fā)現(xiàn),在培養(yǎng)24 h后,分批補(bǔ)料發(fā)酵的LDH都明顯高于單批次培養(yǎng),與此同時(shí),初始葡萄糖濃度為20.0 g/L的LDH最高,隨著初始葡萄糖濃度的增加而遞減,該結(jié)果進(jìn)一步驗(yàn)證了較高的初始葡萄糖濃度會降低LDH活力和L-乳酸的積累[10,11]。初始濃度為20.0 g/L的LDH的酶活在發(fā)酵36 h后達(dá)到頂峰,而其他的初始葡萄糖濃度的LDH都是在43 h達(dá)到頂峰。與此同時(shí),在此階段,L-乳酸的生產(chǎn)效率也達(dá)到最大,隨后,LDH酶活開始下降。研究發(fā)現(xiàn),在發(fā)酵的所有階段,低初始葡萄糖濃度的LDH酶活要高于高初始葡萄糖濃度,LDH酶活的變化規(guī)律基本相同(除了20.0 g/L),20.0 g/L初始葡萄糖LDH酶活在發(fā)酵36小時(shí)后迅速下降。以上結(jié)果也進(jìn)一步驗(yàn)證了20 g/L初始葡萄糖濃度發(fā)酵前期有利于乳酸的積累,但后期由于環(huán)境的變化而影響L-乳酸的合成。
表2 不同一步發(fā)酵策略LDH酶活變化Table.2 LDH-specific activity for L-LA production by R.oryzae one-step fermentation using different culture strategies
分批補(bǔ)料一步發(fā)酵過程中,控制初始葡萄糖濃度為50.0 g/L,考察不同殘余葡萄糖濃度(0~60,0~30.0和30~60.0 g/L)控制方式對L-乳酸合成的影響,其結(jié)果見表1。如表1所示,當(dāng)初始葡萄糖濃度恒定時(shí),不同殘余葡萄糖濃度的變化對L-乳酸的合成并未有明顯的變化,由于可知,采用分批補(bǔ)料一步發(fā)酵高通量積累L-乳酸,后期殘余葡萄糖濃度的變化,并不會對L-乳酸合成產(chǎn)生本質(zhì)的影響。
考察了不同分批補(bǔ)料發(fā)酵策略(不同初始葡萄糖濃度以及殘余葡萄糖控制方式)對米根霉一步發(fā)酵合成L-乳酸的影響,并得到以下結(jié)論:
(1)分批補(bǔ)料發(fā)酵過程中,控制初始葡萄糖濃度在50.0 g/L時(shí),得到了較高的L-乳酸產(chǎn)量(162.0 g/L)和生產(chǎn)效率(6.23 g/(L·h)),與前期工作相比,雖然L-乳酸產(chǎn)量和轉(zhuǎn)化率并未有較大變化,但生產(chǎn)效率提高了14.3%;
(2)不同初始葡萄糖濃度會影響菌體生物量和菌體形態(tài),并最終影響L-乳酸的合成,初始葡萄糖濃度為50.0 g/L時(shí),培養(yǎng)得到的菌體最有利于L-乳酸的合成。當(dāng)初始葡萄糖濃度過低時(shí)(20.0 g/L),雖然培養(yǎng)得到的菌體有利于前期L-乳酸的合成,但隨著發(fā)酵的進(jìn)行,發(fā)酵液越來越黏稠,而不利于傳氧傳質(zhì),并最終影響后期的L-乳酸的合成;
(3)初始葡萄糖濃度對L-乳酸的合成影響較大,殘余葡萄糖濃度的調(diào)控,對米根霉分批補(bǔ)料發(fā)酵合成L-乳酸,并未有明顯的變化。
總體來講,分批補(bǔ)料策略,能提高米根霉一步發(fā)酵法合成L-乳酸的生產(chǎn)效率,是一種利用米根霉發(fā)酵生產(chǎn)L-乳酸的方便、經(jīng)濟(jì)的方法,該工藝的研究,將為傳統(tǒng)的絲狀真菌合成有機(jī)酸提供良好的思路。