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        蜈蚣敗毒飲對(duì)銀屑病轉(zhuǎn)基因模型小鼠外周血中Th17細(xì)胞表達(dá)影響的研究

        2018-01-26 02:41:26楊素清安月鵬
        關(guān)鍵詞:破膜蜈蚣甲氨蝶呤

        楊素清,安月鵬

        (黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第一醫(yī)院,哈爾濱 150040)

        銀屑病是臨床上的常見(jiàn)病、疑難病,是一種由多基因遺傳背景決定、T淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的免疫性皮膚病。對(duì)于銀屑病以往的發(fā)病機(jī)制研究主要局限于CD4+T細(xì)胞中的2大亞群Th1/Th2的細(xì)胞失衡理論。但隨著近年來(lái)研究的不斷深入,越來(lái)越多的證據(jù)表明[1],銀屑病的發(fā)生、發(fā)展與新型的CD4+T細(xì)胞亞群Th17細(xì)胞有著密切的關(guān)系,Th17細(xì)胞與其轉(zhuǎn)導(dǎo)通路IL-23/IL-17對(duì)傳統(tǒng)Th1/Th2細(xì)胞失衡理論起到了良好的補(bǔ)充作用,進(jìn)一步的完善了銀屑病的機(jī)制學(xué)研究。本研究以中藥復(fù)方制劑蜈蚣敗毒飲為觀察藥物,對(duì)其作用于銀屑病轉(zhuǎn)基因模型小鼠外周血中Th17細(xì)胞的表達(dá)情況進(jìn)行隨機(jī)對(duì)照研究,從新的角度揭示蜈蚣敗毒飲的作用機(jī)制,為從中醫(yī)“毒”、“瘀”理論辨治銀屑病提供研究依據(jù)。

        1 資料與方法

        1.1 儀器與材料

        1.1.1 儀器 流式細(xì)胞儀FACSCanto(美國(guó)BD公司)、CO2培養(yǎng)箱(德國(guó)Binder公司),手動(dòng)移液器(美國(guó)Labnet Biopette公司)、電動(dòng)移液器(美國(guó)Drummond公司)、生物安全柜(美國(guó)Labconco公司)。

        1.1.2 試劑 無(wú)菌蒸餾水,戊巴比妥鈉,肝素鈉,固定破膜緩沖液,4%多聚甲醛,2%FBS PBS,Leukocyte ActivationCocktail,withBDGolgiPlugTM(BD200 μL),F(xiàn)ixation/Permeabilization Solution Kit(BD 250Test),CD4-FITC(BD 100 μg),IL-17A-PE(BD 100 μg)。

        1.1.3 動(dòng)物 轉(zhuǎn)基因表達(dá)K5.Stat3C的銀屑病模型小鼠[2],共 25 只,體質(zhì)量 180~220 g,均為雄性,轉(zhuǎn)基因小鼠由南京大學(xué)—南京生物醫(yī)藥研究院制備。

        1.2 方法

        1.2.1 藥液制備 中藥制劑蜈蚣敗毒飲由蜈蚣3 g、烏梢蛇 20 g、鬼箭羽 30 g、土茯苓 30 g、紫草 30 g、甘草10 g組成,草藥來(lái)自于黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第一醫(yī)院草藥局,上述草藥經(jīng)常規(guī)煎煮2次,第1次煎煮前先加入8倍的水量浸泡4 h,再進(jìn)行煎煮1 h;第2次煎煮時(shí)加入6倍的水量后直接進(jìn)行煎煮,時(shí)間為1 h。最后將2次煎煮的藥液進(jìn)行混合均勻,分別濃縮成1.48、2.97、5.94 g/mL的蜈蚣敗毒飲低、中、高劑量組,分別相當(dāng)于成人常規(guī)用量的5倍、10倍、20倍。西藥甲氨蝶呤片(國(guó)藥準(zhǔn)字H31020644,上海信誼藥廠有限公司,規(guī)格2.5 mg/片),以15 mg的甲氨蝶呤溶于134.41 mL蒸餾水中,配制成濃度為0.11 g/L的甲氨蝶呤混懸液,相當(dāng)于成人常規(guī)用量的10倍。

        1.2.2 含藥PBMC制備 采用隨機(jī)的方法將K5.Stat3C轉(zhuǎn)基因銀屑病模型小鼠分為5組,每組5只,分別為蜈蚣敗毒飲低劑量組、蜈蚣敗毒飲中劑量組、蜈蚣敗毒飲高劑量組、甲氨蝶呤西藥對(duì)照組、生理鹽水空白對(duì)照組。5組轉(zhuǎn)基因小鼠的灌胃劑量均為2 mL/100(g·d),每日分早晚2次進(jìn)行。蜈蚣敗毒飲各劑量組、生理鹽水空白對(duì)照組連續(xù)灌胃8 d;甲氨蝶呤西藥對(duì)照組前4 d連續(xù)灌胃,后4 d以生理鹽水進(jìn)行灌胃,灌胃劑量及頻次同前,如此符合甲氨蝶呤臨床患者的藥物服用方法。末次給藥后1 h,各組轉(zhuǎn)基因小鼠經(jīng)戊巴比妥鈉(35 mg/kg)腹腔注射麻醉,將小鼠固定在手術(shù)臺(tái)上,在無(wú)菌的條件下經(jīng)腹主動(dòng)脈取血4 mL。抽取的血液于肝素鈉真空采血管中,混勻,常溫保存,并于2 h內(nèi)提取PBMC供流式細(xì)胞學(xué)檢測(cè)。

        1.2.3 Ficoll密度梯度離心法分離PBMC 肝素鈉抗凝全血1.5~2mL(同組小鼠血樣合并)于1500轉(zhuǎn)/min的室溫離心6 min,血漿吸出分裝于2 mL凍存管中,-80℃保存進(jìn)行細(xì)胞因子檢測(cè)。血細(xì)胞加入2倍體積的PBS后混勻。加入3 mL淋巴細(xì)胞分離液置離心管中,將稀釋后的抗凝血貼壁加入離心管;淋巴細(xì)胞分離液與稀釋后的血細(xì)胞體積比為1∶1。然后經(jīng)2 000轉(zhuǎn)/min室溫不剎車(chē)離心20 min,吸取白膜層,為所需的PBMC細(xì)胞。白膜層用等量的PBS洗滌2次,以1 500轉(zhuǎn)/(min·4℃)離心8 min,棄去上清。用1 mL RPMI1640重懸細(xì)胞沉淀,取10 μL用細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)細(xì)胞數(shù)。

        1.2.4 PBMC刺激培養(yǎng) 用10%FBS RPMI-1640稀釋至PBMC終濃度0.5~1×106細(xì)胞/mL;于24孔板中加入1 mL細(xì)胞懸液,并加入2 μL PMA及離子霉素刺激劑(含Golgiplug),37℃孵育5 h。

        1.2.5 細(xì)胞染色 各組細(xì)胞1 000轉(zhuǎn)/min離心10 min,棄上清。加入500 μL 2%FBS PBS洗滌1次,1 000轉(zhuǎn)/min離心10 min,棄上清。表面標(biāo)記染色:加入10 μL 2%FBS PBS重懸細(xì)胞沉淀,將細(xì)胞分成2份,分別加入CD4-FITC抗體及IgG-FITC同型對(duì)照,4℃避光孵育30 min后,用500 μL 2%FBS PBS洗滌2次,棄上清。

        1.2.6 破膜固定 加入250 μL固定破膜緩沖液,4℃孵育20 min,加入1 mL固定破膜洗滌液,洗滌2次。破膜固定后加入100 μL 4%多聚甲醛,4℃固定15 min,加入 500 μL 2%FBS PBS洗滌 2次后,加入500 μL 2%FBS PBS重懸細(xì)胞沉淀,4℃保存,72 h內(nèi)進(jìn)行胞內(nèi)染色及檢測(cè)。

        1.2.7 胞內(nèi)染色 加入50 μL固定破膜洗滌液重懸細(xì)胞沉淀,分別加入IL-17-PE抗體IgG-PE同型對(duì)照,4℃避光孵育30 min后,用1 mL固定破膜洗滌液洗滌2次,棄上清。加入500 μL 2%FBS PBS或4%多聚甲醛重懸細(xì)胞沉淀,流式上機(jī)檢測(cè)。

        1.2.8 流式細(xì)胞儀檢測(cè) 將對(duì)照組流式樣本先上機(jī),調(diào)節(jié)電壓及FITC和PE管設(shè)置補(bǔ)償條件。將各實(shí)驗(yàn)組樣本按上述條件于流式細(xì)胞儀上對(duì)PE+FITC管進(jìn)行檢測(cè),其中每管共計(jì)數(shù)為20 000個(gè)細(xì)胞,從而測(cè)定 PE(+)、FITC(+)細(xì)胞的分布、PE 平均的熒光強(qiáng)度。

        1.2.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 數(shù)據(jù)的處理采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件,其中計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)的形式來(lái)表示,2組間的計(jì)量資料比較采用t檢驗(yàn),多組間比較采用方差分析。組間比較檢驗(yàn)前先進(jìn)行正態(tài)性檢驗(yàn)和方差齊性分析,若數(shù)據(jù)符合正態(tài)分布或方差齊性,則采用上述檢驗(yàn)方法進(jìn)行,反之則采用非參數(shù)檢驗(yàn)進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。檢驗(yàn)中α取雙尾0.05,以P<0.05認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        蜈蚣敗毒飲對(duì)轉(zhuǎn)基因?qū)嶒?yàn)小鼠外周血PBMC中Th17細(xì)胞表達(dá)率情況見(jiàn)表1及圖1~5(對(duì)應(yīng)流式細(xì)胞圖中的Q4)。

        表1 蜈蚣敗毒飲對(duì)轉(zhuǎn)基因小鼠外周血PBMC中Th17細(xì)胞表達(dá)率的影響

        圖1 空白對(duì)照組外周血Th17細(xì)胞表達(dá)

        圖2 甲氨蝶呤西藥對(duì)照組外周血Th17細(xì)胞表達(dá)

        圖3 蜈蚣敗毒飲低劑量組外周血Th17細(xì)胞表達(dá)

        圖4 蜈蚣敗毒飲中劑量組外周血Th17細(xì)胞表達(dá)

        圖5 蜈蚣敗毒飲高劑量組外周血Th17細(xì)胞表達(dá)

        3 討論

        免疫學(xué)異常是銀屑病發(fā)病機(jī)制的中心環(huán)節(jié),銀屑病的發(fā)生是由多細(xì)胞、多因子所介導(dǎo)的免疫異常性皮膚疾病,既往的研究主要集中于人體內(nèi)Th細(xì)胞的Th0、Th1和Th2亞群,Th1/Th2漂移理論在銀屑病的發(fā)病機(jī)制中占據(jù)主導(dǎo)地位,尤其是IL-2、IFN-γ、TNF-α等為代表的Th1細(xì)胞因子在銀屑病的發(fā)病中最為重要,這些都說(shuō)明了銀屑病是發(fā)生了Th1/Th2漂移且以Th1反應(yīng)模式為主,即偏向Th1漂移的免疫性疾病。Th17新型T細(xì)胞亞群的出現(xiàn)彌補(bǔ)了Th1/Th2效應(yīng)機(jī)制的不足,同時(shí)將銀屑病等諸多疾病的研究帶入了新的世界[2-3]。研究發(fā)現(xiàn),初始的T細(xì)胞可以在IL-6和TGF-β的協(xié)同誘導(dǎo)下,激活信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)子和轉(zhuǎn)錄激活子,從而促進(jìn)初始的CD4+T細(xì)胞向Th17細(xì)胞的分化,同時(shí)TGF-β亦可誘導(dǎo)T細(xì)胞IL-23受體的表達(dá),使得Th17細(xì)胞對(duì)IL-23產(chǎn)生反應(yīng),而后使Th17細(xì)胞高表達(dá)IL-17,發(fā)生IL-23-Th-17-IL-17轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的鏈?zhǔn)椒磻?yīng),從而在銀屑病患者皮損處可發(fā)現(xiàn)IL-17的表達(dá)[4]。越來(lái)越多的研究結(jié)果表明,Th17的這種細(xì)胞通路參與了銀屑病疾病的發(fā)生和發(fā)展當(dāng)中[5]。

        蜈蚣敗毒飲的理論依據(jù)于中醫(yī)學(xué)的“毒”、“瘀”辨治體系[6-7],在組方中融合了中醫(yī)學(xué)祛風(fēng)毒、清熱毒、除濕毒、化瘀毒等的解毒化瘀之品,圍繞疾病“病由毒生”和“久病必瘀”兩大理論,針對(duì)疾病的發(fā)生和轉(zhuǎn)歸,創(chuàng)新性的提出了銀屑病的“毒蘊(yùn)瘀結(jié)”發(fā)病機(jī)制,在治療上貫以“解毒消源,祛瘀截末,輔以防變”的辨治思想。既往研究主要圍繞Th1/Th2漂移理論先后對(duì) IL-2、IL-8、TNF-α、ET-1 等細(xì)胞因子進(jìn)行了研究[8],以及對(duì)HaCaT、HUVEC細(xì)胞的增殖和凋亡及其相關(guān)基因表達(dá)等方面進(jìn)行了探索[9],較為系統(tǒng)的對(duì)蜈蚣敗毒飲的作用機(jī)制進(jìn)行了分析,本研究再次針對(duì)于Th17細(xì)胞體系進(jìn)行了初步血清學(xué)檢測(cè),對(duì)于Th1/Th2/Th17三大T細(xì)胞亞群的整體作用機(jī)制進(jìn)行了良好的鋪墊,為不斷發(fā)現(xiàn)蜈蚣敗毒飲等中醫(yī)中藥治療機(jī)制方面的多靶點(diǎn)優(yōu)勢(shì)奠定了基礎(chǔ)。

        本研究采用了流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)了銀屑病轉(zhuǎn)基因模型小鼠外周血PBMC的Th17細(xì)胞的表達(dá)情況。研究結(jié)果顯示,甲氨蝶呤及蜈蚣敗毒飲各劑量組均有降低外周血PBMC的Th17細(xì)胞表達(dá)的作用,其中尤以甲氨蝶呤西藥對(duì)照組和蜈蚣敗毒飲高劑量組的作用最為顯著(P<0.01),蜈蚣敗毒飲各劑量組隨著濃度的增高呈現(xiàn)出一定的量效依賴(lài)關(guān)系。研究結(jié)果初步揭示了蜈蚣敗毒飲可以針對(duì)外周血PBMC中Th17細(xì)胞,影響Th17細(xì)胞的表達(dá),從而推測(cè)對(duì)于銀屑病的皮損具有相應(yīng)的作用效應(yīng)。本研究為后期研究提供了相應(yīng)的保障,為今后蜈蚣敗毒飲針對(duì)于Th17細(xì)胞體系中的某個(gè)具體環(huán)節(jié)或特異性因子的檢測(cè)和分析提供了理論支持,同時(shí),針對(duì)于Th17細(xì)胞機(jī)制和銀屑病模型皮損嚴(yán)重程度的相關(guān)性研究亦是今后課題探索的思路和新的方向。

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