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        楊樹耐鹽轉(zhuǎn)基因研究最新進展

        2018-01-09 13:45:27梁斌
        農(nóng)業(yè)與技術(shù) 2017年23期
        關(guān)鍵詞:耐鹽楊樹轉(zhuǎn)基因

        摘 要:隨著土壤鹽漬化加重,鹽脅迫成為限制植物生長和生產(chǎn)的重要環(huán)境因素之一。利用基因工程技術(shù)提高楊樹耐鹽性具有重要意義。本文在前人的基礎(chǔ)上,補充綜述了近年來楊樹耐鹽轉(zhuǎn)基因研究采用的耐鹽基因,進而整理并繪制了楊樹耐鹽基因參與的信號與代謝途徑圖譜,為篩選和培育耐鹽楊樹新品種提供了重要參考。

        關(guān)鍵詞:楊樹;耐鹽;轉(zhuǎn)基因

        中圖分類號:S72 文獻標(biāo)識碼:A DOI:10.11974/nyyjs.20171232028

        進入21世紀(jì)以來,隨著全球人口的不斷增長、淡水資源急劇減少、工農(nóng)業(yè)污染日趨加劇,土壤鹽漬化日益嚴重。據(jù)估計,大約7%的世界陸地、20%的世界耕地都受到高鹽脅迫的影響。土壤鹽漬化已嚴重制約了我國農(nóng)林業(yè)生產(chǎn)的可持續(xù)發(fā)展。因此,開展耐鹽樹木新品種選育工作十分重要,而利用基因工程技術(shù)提高林木耐鹽性具有非常廣闊的前景。

        楊樹無性繁殖容易、生長速度快、適應(yīng)性廣,是工業(yè)用材及防護林建設(shè)的重要造林樹種。2006年,毛果楊(Populus trichocarpa)全基因組測序完成。且楊樹具有基因組小,易導(dǎo)入外源基因等獨特優(yōu)勢。因此,楊樹成為林木基因工程研究的模式物種,耐鹽轉(zhuǎn)基因楊樹也成為林木抗逆研究的熱點。近年來,已有前人對楊樹耐鹽機制及轉(zhuǎn)基因研究進展進行了綜述[1,2]。但是,這些綜述所概括的耐鹽基因類型并不全面,僅綜述了部分在楊樹中遺傳轉(zhuǎn)化的耐鹽基因[2]。因此,本文在前人的基礎(chǔ)上,補充綜述了最近幾年來楊樹耐鹽轉(zhuǎn)基因研究采用的耐鹽基因,進而整理并繪制了楊樹耐鹽基因參與的信號與代謝途徑圖譜(圖1),這為深入了解楊樹耐鹽機制的網(wǎng)絡(luò)調(diào)控分子機制提供了重要信息,也為篩選和培育耐鹽楊樹新品種提供了重要參考。

        1 離子通道相關(guān)基因

        在鹽脅迫條件下,植物細胞可將細胞質(zhì)中的大部分Na+轉(zhuǎn)運并儲藏于液泡中,從而避免細胞質(zhì)中大量積累過量的Na+而對代謝造成傷害,也可使植物細胞因為滲透勢降低而吸收水分。之前已綜述,將Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運蛋白基因(OsNHX1,SsNHX1,AtNHX1,GmNHX1,HbNHX1)轉(zhuǎn)入楊樹后,對于維持細胞質(zhì)中離子的動態(tài)平衡,緩解高濃度Na+的毒害作用發(fā)揮了重要作用。此外,在鹽脅迫條件下,不僅Na+會對細胞組分造成損傷,Cl-也會對細胞造成傷害。Sun等[3]發(fā)現(xiàn),在雜交楊(美洲黑楊×速生歐美黑楊)中過量表達大豆GmCLC1,可大大改善楊樹耐鹽性,且減少膜結(jié)構(gòu)的損害和增強鹽脅迫過程中的滲透調(diào)節(jié)和抗氧化酶調(diào)節(jié)功能。GmCLC1編碼定位于液泡膜上Cl-轉(zhuǎn)運蛋白,其可將細胞質(zhì)中的Cl-離子區(qū)隔化進入液泡,從而降低鹽脅迫的毒性作用。Yang等[4]報道,在150mM NaCl的脅迫條件下,過量表達毛果楊液泡膜焦磷酸酶PtVP1.1基因的白楊與野生型相比,轉(zhuǎn)基因植物具有更高的生長量。且轉(zhuǎn)基因植物根系中Na+外排和H +流入量也明顯高于野生型植物。液泡膜焦磷酸酶和液泡膜H+-ATP酶組成液泡膜質(zhì)子泵,與跨液泡膜的物質(zhì)轉(zhuǎn)運有密切關(guān)系??傊@些離子通道相關(guān)蛋白基因可以進行遺傳工程改造樹木耐鹽性。

        2 轉(zhuǎn)錄因子相關(guān)基因

        在轉(zhuǎn)錄水平上調(diào)控脅迫響應(yīng)基因的表達是植物應(yīng)答鹽脅迫的重要策略之一,而轉(zhuǎn)錄因子在此過程中起到非常重要的作用。因此,將某些鹽脅迫相關(guān)的轉(zhuǎn)錄因子基因轉(zhuǎn)入楊樹后,在一定程度上提高了楊樹的耐鹽性。將轉(zhuǎn)錄因子TabZIP基因和DREB基因(AhDREB1,DREB1C,AtDREB1A)轉(zhuǎn)入楊樹后,在一定程度上提高了楊樹的耐鹽性[2]。此外,Li等[5]將番茄中編碼乙酰應(yīng)答因子的茉莉酮乙烯應(yīng)答因子基因(JERFs)轉(zhuǎn)入雜交楊(銀白楊×中東楊)中,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因植物與野生型對照相比,在抵御鹽脅迫方面有更強的能力。Yu等[6]的研究結(jié)果表明,將克隆自擬南芥的AtHDG11基因轉(zhuǎn)入毛白楊,與野生型相比,轉(zhuǎn)基因植物表現(xiàn)出了顯著增強的鹽脅迫耐受性,脯氨酸含量,可溶性糖含量和活性氧清除酶的活性顯著增加,且具有發(fā)育良好的根系。NAC蛋白是植物中最大的轉(zhuǎn)錄因子家族之一,廣泛存在于陸生植物中。Movahedi等[7]將鷹嘴豆中的CarNAC3基因?qū)朊乐藓跅睢了偕鷼W美黑楊‘Nanlin895后,轉(zhuǎn)基因植株耐鹽試驗證明轉(zhuǎn)基因株系耐鹽能力優(yōu)于野生型對照。

        3 信號轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因

        植物通過調(diào)控復(fù)雜的信號網(wǎng)絡(luò)來應(yīng)對鹽脅迫。鹽超敏感蛋白SOS2基因編碼一個絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶,該酶可激活K+和Na+轉(zhuǎn)運蛋白的活性。Jie等[8]和Yang等[9]將PtSOS2基因分別導(dǎo)入到了雜交楊(歐洲山楊×美洲山楊T89)和山新楊(山楊×新疆楊)中,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因植株的耐鹽性均顯著提高。類鈣調(diào)神經(jīng)磷酸酶是一種鈣結(jié)合蛋白,被認為在植物信號傳導(dǎo)中發(fā)揮重要功能。Li等[10]將胡楊中的類鈣調(diào)磷酸酶B亞基基因PeCBL6/PeCBL10轉(zhuǎn)入3倍體毛白楊,在高鹽、干旱和冷脅迫條件下,轉(zhuǎn)基因苗木的抗性都優(yōu)于對照。Shaggy類蛋白激酶廣泛存在于植物細胞中,一般作為信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的負調(diào)節(jié)因子。Han等[11]將源自擬南芥的AtGSK1導(dǎo)入雜交楊(銀白楊×歐洲山楊),轉(zhuǎn)基因植株表現(xiàn)出了優(yōu)良的抗旱性和耐鹽性。

        4 其它基因

        除了以上所述的耐鹽基因外,活性氧清除酶基因(TaMnSOD,chlAPX)、甜菜堿合成相關(guān)基因(BADH,CMO,SeCMO,Bet-A)、糖醇合成基因(mtl-D,gut-D)和胚胎發(fā)育晚期豐富蛋白基因(TaLEA)也被研究者們轉(zhuǎn)入楊樹中(圖1),并發(fā)現(xiàn)這些轉(zhuǎn)基因植株與野生型對照相比,具有更強的耐鹽性。

        5 結(jié)論與展望

        土壤鹽漬化已經(jīng)成為全球性的生態(tài)問題,因此耐鹽轉(zhuǎn)基因楊樹的研究具有重要意義。到目前為止,研究者們已成功培育出幾十種具有一定耐鹽性的轉(zhuǎn)基因楊樹(圖1)。我國擁有豐富的鹽生植物資源,發(fā)掘利用這些抗鹽植物資源,加強抗鹽機理研究,對加速我國農(nóng)林經(jīng)濟的可持續(xù)發(fā)展,以及加強鹽漬土壤的治理和綜合開發(fā)具有重大意義。隨著植物耐鹽分子機制研究的不斷深入和轉(zhuǎn)基因技術(shù)的不斷發(fā)展,利用基因工程手段提高楊樹耐鹽性,必將取得可喜的進展。

        參考文獻

        [1]陳述.轉(zhuǎn)基因楊樹耐鹽性研究進展[J].安徽農(nóng)學(xué)通報(下半月刊),2010(6):30-32.

        [2]羅子敬,孫宇涵,盧楠,李云.楊樹耐鹽機制及轉(zhuǎn)基因研究進展[J].核農(nóng)學(xué)報,2017(3):482-492.

        [3] Sun W B,Deng D X,Yang L H,et al.Overexpression of the chloride channel gene(GmCLC1)from soybean increases salt tolerance in transgenic Populus deltoides × P.euramericana‘Nanlin895[J].Plant Omics,2013, 6(5):347-354.

        [4] Yang Y,Tang R J,Li B,et al.Overexpression of a Populus trichocarpa H+-pyrophosphatase gene PtVP1.1 confers salt tolerance on transgenic poplar[J].Tree Physiology,2015,35(6):663-677.

        [5] Li Y L,Su X H,Zhang B Y,et al.Expression of jasmonic ethylene responsive factor gene in transgenic poplar tree leads to increased salt tolerance[J].Tree Physiology,2009,29(2):273-279.

        [6] Yu L H,Wu S J,Peng Y S et al.Arabidopsis EDT1/HDG11 improves drought and salt tolerance in cotton and poplar and increases cotton yield in the field[J]. Plant Biotechnology Journal,2015,14(1):72-84.

        [7] Movahedi A,Zhang J,Gao P,et al.Expression of the chickpea CarNAC3 gene enhances salinity and drought tolerance in transgenic poplars[J].Plant Cell Tissue & Organ Culture,2015,120(1):141-154.

        [8]VJie Z,Wang J,Bi Y,et al.Overexpression of PtSOS2 enhances salt tolerance in transgenic poplars[J].Plant Molecular Biology Reporter,2014,32(1):185-197.

        [9] Yang Y,Tang R J,Jiang C M et al.Overexpression of the PtSOS2 gene improves tolerance to salt stress in transgenic poplar plants[J].Plant Biotechnology Journal, 2015,13(7):962-973.

        [10] Li D,Song S,Xia X,et al.Two CBL genes from Populus euphratica confer multiple stress tolerance in transgenic triploid white poplar[J].Plant Cell Tissue & Organ Culture,2012,109(3):477-489.

        [11] Han M S,Noh E W,Han S H.Enhanced drought and salt tolerance by expression of AtGSK1 gene in poplar[J].Plant Biotechnology Reports,2013,7(1):39-47.

        作者簡介:梁斌,河南省新鄉(xiāng)市人,本科,助理工程師,研究方向為森林培育。

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