封巖 王昊澤 王秀利

摘要：為加強刺參（ Apostichopus japonicus）育苗和稚參階段的管理，提高這兩個階段的養(yǎng)殖效果，對2016～2018三個年度在大連海洋大學農(nóng)業(yè)農(nóng)村部北方海水增養(yǎng)殖重點實驗室春季育苗及稚參階段的家系構(gòu)建及養(yǎng)殖的生產(chǎn)實際情況進行了歸納和總結(jié)。結(jié)果表明：選擇的種參體重應在300 g以上，年齡3.0齡以上；采用陰干、流水、注射催產(chǎn)劑等多種刺激共同作用種參；孵化時水溫應控制在20.5～21.5 ℃之間，并定時攪動；餌料選擇單胞藻，經(jīng)鏡檢決定投餌量；每天早晚換水，換水量約達總水量的1/3，當水質(zhì)不佳時可增加換水量至1/2；鹽度范圍為27‰～36‰，31.5‰為最適鹽度；投放抗菌多肽，對刺參細菌病防治有一定作用。

關(guān)鍵詞：刺參育苗；稚參；養(yǎng)殖；管理

刺參（ Apostichopus japonicus）的營養(yǎng)價值豐富，自古以來被國人用作醫(yī)療保健的珍品?，F(xiàn)在通過實驗研究與臨床檢驗，證明刺參有提高人體免疫力，刺激人體再生和防治衰老等功效[1]。

刺參的人工育苗最早在20世紀50年代開始，在70年代取得較大的進展[2]。隨著時間推移到今天，刺參的人工育苗技術(shù)的發(fā)展日趨成熟，養(yǎng)殖技術(shù)日新月異。例如常亞青等（2002）[3]利用細胞松弛素B（CB）抑制第一極體 （PB1）放出 ，用 6-二甲基氨基嘌呤 （6-DMAP）處理抑制受精卵PB1 、第二極體（PB2）放出的方法誘刺參多倍體。孫景春等（2012）[4]利用底棲硅藻誘導刺參幼體附著變態(tài)，通過將篩選出的特定活性藻株Nitzschia sp.運用于苗種生產(chǎn)中的附著基構(gòu)建，有效地提高仿刺參幼體的附著變態(tài)效率。王圣等（2015）[5]在刺參幼參基礎(chǔ)飼料中添加微生態(tài)制劑作為免疫增強劑，明顯去除刺參養(yǎng)殖水體氨氮和亞硝態(tài)氮；提高刺參免疫酶（堿性磷酸酶、超氧化物歧化酶）和消化酶（淀粉酶、蛋白酶）的量，增強刺參幼參消化和免疫活力。本文結(jié)合理論與實踐從技術(shù)、管理和原理分析三個方面詳細介紹了的刺參的人工育苗及其后期日常管理技術(shù)。

1刺參催產(chǎn)

1.1親參選擇

親參應選取發(fā)育、生理狀態(tài)良好的種參。其形態(tài)特征表現(xiàn)為：種參內(nèi)部飽滿充實；用手輕壓其背部有彈性；對外界刺激、收縮反應比較敏感。種參規(guī)格并非越大越好，鮮活體重應在300 g以上，3齡以上的個體。種參個體體長在20 cm以上，這樣才能保證其有較大的產(chǎn)卵量[6]。

本次催產(chǎn)選用山東煙臺刺參群體，和俄羅斯刺參群體。催產(chǎn)前親參狀態(tài)良好，圖1所示為催產(chǎn)所用狀態(tài)良好的親參。

1.2促熟催產(chǎn)

1.2.1催產(chǎn)前準備催產(chǎn)前為避免刺參自然排卵應保持低溫飼養(yǎng)，水溫應在15～17 ℃。催產(chǎn)前應逐步升溫飼養(yǎng)，避免種參受水溫驟變導致不適反應，導致提前排精產(chǎn)卵。催產(chǎn)前種參應做陰干流水刺激處理，時間約為半小時。刺參催產(chǎn)一般選擇多種刺激共同作用。

暫養(yǎng)期間注意吸底檢查是否有卵，以決定什么時間催產(chǎn)。若發(fā)現(xiàn)有卵或排精情況應及時收集。

1.2.2催產(chǎn)陰干處理后的種參，注射催產(chǎn)劑即可放入單獨催產(chǎn)池內(nèi)待產(chǎn)。催產(chǎn)劑選用宋堅等（2013）[7]的體內(nèi)誘導刺參產(chǎn)卵的方法，用NGLWY酰胺溶于超純水中配置成1 μmol/L的母液，然后將母液溶于0.5 mol/L的KCl海水溶液中，制成1 nmol/L的催產(chǎn)劑。催產(chǎn)劑注射量約為30～3.5 mL左右，注射位置在親參頭部1/3體長刺參性腺處，注射時針頭刺破肌肉層。

催產(chǎn)池水溫約為20～22 ℃，親參待產(chǎn)時應保持弱光線，避免陽光直照，光照強度低于300 lx。刺參卵呈橘黃色，精子為白色。產(chǎn)卵、排精的刺參會不斷擺動頭部，可根據(jù)此行為預測催產(chǎn)成功的數(shù)量。親參個體不同受催產(chǎn)劑的刺激也不同，其排卵時間亦不相同，一般注射催產(chǎn)劑30 min后，可逐漸發(fā)現(xiàn)有刺參產(chǎn)卵。約4 h后，大批刺參產(chǎn)完或不產(chǎn)，若所產(chǎn)精、卵數(shù)量未達要求可先不將親參移回飼養(yǎng)池，繼續(xù)放在催產(chǎn)池等候，經(jīng)驗表明，刺參在注射催產(chǎn)劑后12 h內(nèi)均有可能排卵、排精。親參排卵后應妥善處理，因刺參為多批次產(chǎn)卵動物，可以用于二次催產(chǎn)。整個催產(chǎn)促熟環(huán)節(jié)應避免溫度驟變和水質(zhì)變壞等問題影響，每日換水量應達50%。

2孵化與幼體飼喂管理

2.1孵化

孵化池使用前應徹底清洗、消毒，可用高濃度次氯酸鈉處理殺滅原生動物和細菌。清洗孵化池后應使用大量過濾水沖洗。孵化用水水溫應控制在20.5～21.5 ℃之間，采用雙層500目篩絹過濾。每隔兩小時，使用攪盤輕輕上下攪動，使在孵化池中的受精卵受水流刺激，同時保證氧氣充足保證受精卵健康發(fā)育。孵化至出苗時應有專人守候，鏡檢觀察受精卵發(fā)育情況。

2.2分池選苗

孵化約24 h后出苗結(jié)束，取水體上層優(yōu)質(zhì)、活力旺盛的幼苗移入育苗池飼養(yǎng)。

用虹吸的方法，出水口處加好濾網(wǎng)，移苗時避免機械損傷。移苗速度要快，用過濾海水多次沖洗濾網(wǎng)，保證濾網(wǎng)上無苗殘留。底層水的苗，為活力差，狀態(tài)不好或為未孵化的受精卵，應丟棄，不可混入育苗池。保證水溫在20～21 ℃之間。用于育苗池的水應用500目篩絹過濾掉雜質(zhì)及原生動物。育苗池應及時充氣，充氣不宜過大。保持室內(nèi)無較大空氣流動，無閑雜人等，清潔衛(wèi)生。

2.3幼苗飼喂與管理

2.3.1餌料與投喂幼參餌料選擇單胞藻，用400目篩絹濾除餌料中的雜質(zhì)及原生動物。投喂量為小耳幼體∶中耳幼體∶大耳幼體=1∶1.5∶2。單位為8 000～10 000個/mL。投喂量根據(jù)育苗池密度的大小和鏡檢參苗吃食情況而定，投餌前應鏡檢幼苗與餌料，檢查餌料質(zhì)量可減少病害發(fā)生。圖2所示為鏡檢中耳幼體，可看到胃中餌料消化狀態(tài)。記錄幼苗發(fā)育狀態(tài)和幼苗腹中餌料含量可調(diào)整投喂量。投喂應在換水之后，既可排除雜物死苗，又可刺激幼苗攝食。

2.3.2換水與管理幼苗期每天早晚換水，換水量約達總水量的1/3，當水質(zhì)不佳時可增加換水量至1/2。換水方法：先停氣一小時，使幼苗因底層缺氧上浮，原生動物和廢物則沉入水底達到分離效果。放水前確定上浮情況，防止苗流失。開啟底閥緩速排水，水流要小不能形成強水流吸走幼苗。換入新水需要500目雙層濾網(wǎng)過濾，換水水溫與原水溫在20～21 ℃保持一致。本次為加溫促熟，提前進行繁育工作。后期刺參變態(tài)后可逐步降溫至16 ℃。當自然海水水溫達到最適溫度時，刺參可以快速生長并相對獲得較長生長時間。根據(jù)陳勇等（2007）[8]的研究發(fā)現(xiàn)水溫為15 ℃時，刺參代謝旺盛，體重增長最快。董云偉等（2005）[9]認為刺參幼參（1齡刺參）最適生長溫度為15.15 ℃，溫度低于10 ℃或高于25 ℃都會抑制刺參生長。

鹽度對刺參的生長影響也比較大，袁秀堂等（2006）[10]研究表明在最適溫度的條件下鹽度范圍為36‰～27‰。接近刺參體液等滲點的315‰為最適鹽度。

崔慎坤等（2013）[11]的研究表明，光照是影響刺參幼參生長的重要條件之一。刺參一般在夜間活動，按照自然光周期活動的刺參，能量消耗低，有利于快速生長。完全黑暗時刺參會一直處于活動狀態(tài)，不利于刺參的生長。

巡池時檢查通氧情況、漏水情況和水質(zhì)情況。所有使用的器材使用前均需要次氯酸鈉消毒，保證幼苗在無外界干擾條件下生長。投喂量與苗量有關(guān)，在一定范圍內(nèi)與生長速度呈正相關(guān)。換水量與成長速度在一定范圍內(nèi)也呈正相關(guān)。

3變態(tài)附著

鏡檢發(fā)現(xiàn)出現(xiàn)30%左右的樽形幼體時，開始投放附著基，附著基可選用透明聚乙烯波紋板或聚乙烯網(wǎng)片。鏡檢結(jié)果如圖3所示，通過鏡撿發(fā)現(xiàn)大部分刺參已從大耳幼體變態(tài)為樽型幼體時可以逐步投放波紋板，數(shù)量逐步增加，同時投喂餌料加入紅酵母可改善水質(zhì)，增強對常見疾病如爛胃病、爛邊病等的抵抗力，提高變態(tài)率。波紋板使用前徹底清洗，并用次氯酸消毒。波紋板插入筐后保證固定穩(wěn)定不晃動，反轉(zhuǎn)不掉落。初次投板時波紋板放平最大化苗的附著。投板后換水量增大到1/2總水量，可促進苗附著程度。劉超等（2012）[12]研究發(fā)現(xiàn)利用Alteromonas sp.1 同 250～330 μm 蠣殼粉優(yōu)化的聚乙烯波紋板附著基結(jié)合使用，能使幼體的附著變態(tài)率提高到對照組的7倍。為生產(chǎn)中決定刺參幼體附著變態(tài)率偏低的問題提供了有效的技術(shù)途徑。

附著期間加大投喂量，逐漸更換餌料以合成幼參料與海泥1∶7混合。朱偉等（2005）[13]發(fā)現(xiàn)，實驗刺參的最佳蛋白質(zhì)和脂肪需要量分別為1821%～24.18%和5%。Sun 等（2004）[14]報道飼料中蛋白含量在 21.49%時刺參生長較好。

附著初期可只投喂幼參餌料，有條件可加投鼠尾藻破碎溶液保證幼參營養(yǎng)，鼠尾藻資源日益匱乏，可使用穗花狐尾藻代替。根據(jù)何舟等（2015）[15]的研究表明穗花狐尾藻能夠促進刺參生長，穗花狐尾藻的適口性較好，其蛋白質(zhì)易吸收。王吉橋等（2007）[16]發(fā)現(xiàn)蛋白酶和淀粉酶是刺參腸道的主要消化酶，蛋白利用率的提高對刺參生長極為重要。穗花狐尾藻能刺激消化酶的產(chǎn)生，同時促進對各種營養(yǎng)物質(zhì)的消化和吸收，使蛋白質(zhì)的排空速度也較為適宜，提高了蛋白質(zhì)的沉積率。

在附著期間增加投喂誘食破壁作用的酵母粉、抗菌多肽、純天然螺旋藻及馬尾藻破碎溶液，投喂量以每噸水各1 g為宜。薛德林等（2009）[17]的實驗證明海洋膠紅酵母和光合細菌菌體作為營養(yǎng)型生物餌料可直接為刺參幼體提供營養(yǎng)物質(zhì)，從而提高幼體變態(tài)率、成活率，提高成參產(chǎn)量143%～16.4%。

待全部附著后減少單胞藻的投喂，可以開始流水養(yǎng)殖。流水養(yǎng)殖也要保證水質(zhì)，水溫與前期相同。投板三天后進行翻板將波紋板上下顛倒，再過三天之后進行立板，此過程可增加刺參攝食。

4投飼管理

刺參幼苗附著后漸漸發(fā)育為稚參，稚參顏色微白，其形態(tài)結(jié)構(gòu)與成參類似，圖4為鏡檢狀態(tài)下初步變態(tài)為稚參的幼苗（A）和完全變態(tài)的稚參（B）。投飼管理過程中要注意以下幾個方面：餌料采用稚參餌料加海泥的混合物，比例為1∶8～1∶13，具體根據(jù)刺參的攝食量和餌料落板程度調(diào)節(jié)，如果餌料落板則增加餌料量，若餌料浮在水中則加大海泥量。刺參餌料沉積在底部過多易滋生細菌和原生動物，每隔數(shù)天應及時清底排除殘餌。清底可選虹吸以及放水沖底的方法，虹吸法時應在底部添加150目網(wǎng)布防止漏苗。投喂餌料前應用300目網(wǎng)布過濾，濾除粗質(zhì)沉淀，細化餌料有助于刺參攝食。投喂過程應集中投喂在波紋板上，全池潑灑會造成稚參吃餌困難。投餌前應該停氣有助于餌料下沉。應注意氣石放置位置，避免氣流沖餌下板。稚參附著的波紋板要每15天更換一次。更換波紋板減少細菌原生動物滋生，保證稚參的生長。

飼喂過程中應注意苗量，苗量大的波紋板應分池飼養(yǎng)，每板保證30～50頭為宜。Dong 等（2010）[18]的研究表明刺參幼參在約 0. 2 ind·L-1（ 1. 0 ～ 1. 2 kg·m-3） 時有最大特定生長率。

分池、倒池、換板時應注意，新池應全面徹底消毒，使用新的波紋板也應全面消毒，倒池時注意水溫避免驟變，避免長時間將刺參暴露在空氣中，換板時不可以用手或硬物將刺參剝下，應使用軟質(zhì)毛刷輕輕刷下；刷出來的舊板和筐不能丟棄，應放入暫養(yǎng)池，不通氣靜置隔24 h，若發(fā)現(xiàn)落下的稚參苗趴在池壁上，取下放回原池。沖出的底泥中包有大量幼苗，初期沖底時應使用300目網(wǎng)布接底，后隨刺參逐漸長大更換網(wǎng)布。初期沖底由于網(wǎng)布目數(shù)太高容易發(fā)生底泥溢出，所以應及時過濾或換網(wǎng)布防止溢苗流失。過濾底泥時以流水不斷沖洗，至大部分雜質(zhì)濾除，將底泥放入水桶中不斷浸洗，至主要物質(zhì)為稚參后均勻潑灑在波紋板上放回原池。分池、倒池、換板后應加大投餌量，以促進攝食。飼喂期間應加強巡池，由于季節(jié)進入夏季，氣溫水溫較高易暴發(fā)原生動物、細菌、霉變等現(xiàn)象。及時發(fā)現(xiàn)及時處理保證幼苗生長。

5催產(chǎn)育苗過程中的常見問題與解決方法

病害問題一直是影響育苗成功率的重要因素，病害問題發(fā)生在幼體時期可對幼體刺參造成毀滅性打擊，致使全池苗死亡的現(xiàn)象屢有發(fā)生。

5.1弧菌、霉菌等致病菌暴發(fā)

發(fā)生在刺參幼體時期可導致刺參幼體畸形發(fā)育，不能游動攝食最后大面積死亡。發(fā)生在稚參時期可產(chǎn)生稚參潰爛病，導致發(fā)病死亡。應對策略選擇投放抗菌多肽，對防治刺參潰爛病有較大作用。

馬悅欣等（2006）[19]的研究表明弧菌為條件致病菌，是海水中的正常菌群，其致病性取決于刺參的生理狀態(tài)及養(yǎng)殖環(huán)境的理化條件。在較低溫度條件下，幼參易患潰爛病。呋喃妥因?qū)χ虏【休^強的抑菌作用，但該藥有一定的毒性。

5.2敵害生物

在刺參幼體時期，橈足類等原生動物會與刺參爭食餌料，而且還會攝食刺參幼體，初期若提前育苗可避開橈足類等原生動物暴發(fā)生長時期。適當投藥也可抑制其暴發(fā)。稚參受橈足類等原生動物影響主要在影響攝食方面，刺參攝食緩慢，橈足類易將餌料剝落波紋板影響稚參攝食，可投1 g/m3敵百蟲靜置12 h后更換全池水來抑制橈足類。

剛毛藻嚴重時可引起刺參死亡，使底質(zhì)黑化和產(chǎn)生有毒物質(zhì)，容易造成池底缺氧和環(huán)境惡化，影響刺參正常生長。根據(jù)孟繁林等（2013）[20]的研究可以使用清塘和消毒調(diào)控水質(zhì)。藥物防治除藻劑等藥物只有在人工撈除大部分剛毛藻后方可使用，使用這類藥物會使藻體在短時間內(nèi)迅速衰敗腐爛，使水質(zhì)變壞。

海鞘的暴發(fā)在稚參培育后期和室外潮間帶養(yǎng)殖池內(nèi)多有發(fā)生。海鞘會與刺參生存產(chǎn)生競爭機制抑制刺參的生長。發(fā)現(xiàn)養(yǎng)殖系統(tǒng)中有海鞘附著，數(shù)量少時通過人工清除。當大面積暴發(fā)時可選用經(jīng)周書珩等（2009）[21]研究證實的滅鞘靈（MQL）濃度5 mg/L和大蒜素復方藥物滅鞘散（MQS）15 mg/L進行殺除，稚參在這兩種藥物濃度為20和10 mg/L時，浸泡96 h仍活動正常，對生存沒有任何影響。分別采用15和5 mg/L的濃度，藥浴24 h換水即可完成。

5.3藥品選擇

李強等（2005）[22]發(fā)現(xiàn)抗菌藥物對幼參的毒性依次為土霉素>氟哌酸>新諾明，常用消毒劑對幼參的毒性依次為二氧化氯>高錳酸鉀>福爾馬林>次氯酸鈉>敵百蟲。

對于抗菌作用的土霉素雖然毒性大，但在養(yǎng)殖生產(chǎn)中一般的用藥濃度為2 mg/L左右，而土霉素對刺參的安全濃度為16.56 mg/L，土霉素可作為較理想的抗菌藥物。對刺參毒性最小的新諾明藥液能使幼參褪色，在刺參養(yǎng)殖中應慎重使用。

高錳酸鉀、福爾馬林與二氧化氯一樣均能使幼參化皮，在刺參養(yǎng)殖中應避免使用。次氯酸鈉有效氯對幼參的脅迫濃度遠大于安全濃度，故次氯酸鈉可作為刺參養(yǎng)殖過程中的消毒劑。

5.4飼養(yǎng)密度

在飼養(yǎng)過程中，飼養(yǎng)密度在一定程度上決定了其生長率。適當提高培育密度，可以大幅度提高單位水體的產(chǎn)量，降低生產(chǎn)成本。但當培育密度過高時，水中的代謝廢物會增多，溶氧值降低，氨氮與亞硝酸鹽值升高，易造成水質(zhì)惡化，幼體遭受到慢性的環(huán)境脅迫，產(chǎn)生一系列不良的生理反應，導致死亡率升高[23-24]。

6展望

從刺參育苗開始到結(jié)束，過程較復雜。傳統(tǒng)的方法，作用時間短，耗費人力物力較大。如何提高生產(chǎn)效益，仍需不斷借鑒新技術(shù)。美國阿戈奈德（桑福德，F(xiàn)L，美國）公司開發(fā)的納米級過濾技術(shù)[25]是采用直徑為2 nm的氧化鋁納米纖維（NanoCeram）研發(fā)的一個凈水器。該凈水器可以清除水中的病毒、細菌和原生動物的包囊。防治刺參的病害不能單一依靠投藥的方法，那樣則成本高、污染嚴重?？梢岳糜幸婢紦?jù)養(yǎng)殖水環(huán)境中微生物的種群優(yōu)勢，既可提高刺參自身免疫力，同時又能降低致病菌感染的風險[26]。制作的納米級飼料可促進魚類對微量元素的吸收與利用[27]。隨著科學技術(shù)的不斷進步，新方法、新產(chǎn)品將對刺參的育苗、稚參和成參的養(yǎng)殖帶來廣闊的應用前景，產(chǎn)生巨大的經(jīng)濟效益和社會效益。

參考文獻：

[1] 杜磊. 海參和海星腦苷脂抗腫瘤及改善癌癥惡病質(zhì)作用的研究[D]. 中國海洋大學， 2012.

[2] 隋錫林. 刺參Apostichopus japonicus Selenka人工育苗及增養(yǎng)殖現(xiàn)狀與展望[J].現(xiàn)代漁業(yè)信息，1996（06）：1-40.

[3] 常亞青，相建海.仿刺參（Apostichopus japonicus）多倍體誘導的初步研究[J].大連水產(chǎn)學院學報.2002，17（01）：1-7.

[4] 孫景春. 底棲硅藻誘導仿刺參（Apostichopus japonicus）幼體附著變態(tài)的初步研究[D]. 中國海洋大學， 2012.

[5] 王圣，王忠全，李斌，劉相全，相智巍，宋向軍. 微生態(tài)制劑對仿刺參幼參養(yǎng)殖水質(zhì)指標和生長、相關(guān)酶活性的影響[J].海洋湖沼通報，2015（03）：71-77.

[6] 孫建富，于鳳靜. 刺參人工育苗的幾個關(guān)鍵環(huán)節(jié)[J].河北漁業(yè)，2008（09）：37.

[7] 宋堅， 龐振國， 常亞青，等. 體內(nèi)誘導仿刺參產(chǎn)卵的方法： CN， CN 101595847 B[P]. 2013.

[8] 陳勇，高峰，劉國山，等.溫度、鹽度和光照周期對仿刺參生長及行為的影響[J].水產(chǎn)學報，2007，31（05）：687-691.

[9] 董云偉，董雙林，田相利，等.不同水溫對仿刺參幼參生長、呼吸及體組成的影響[J].中國水產(chǎn)科學，2005，12（1）：33-37.

[10] 袁秀堂，楊紅生，周毅，等.鹽度對仿刺參（Apostichopus japonicus）呼吸和排泄的影響[J].海洋與湖沼，2006，37（4）：348-354.

[11] 崔慎坤，常亞青，宋堅，等.環(huán)境和基因型對仿刺參幼參表型變異和生長的影響[J].生態(tài)學雜志，2013，32（07）：1819-1824.

[12] 劉超. 優(yōu)化附著基對仿刺參（Apostichopus japonicus）幼體附著變態(tài)的影響[D]. 中國海洋大學， 2012.

[13] 朱偉，麥康森，張百剛，等.仿刺參稚參對蛋白質(zhì)和脂肪需求量的初步研究[J]. 海洋科學， 2005， 29（3）： 54–58

[14] Sun HL， Liang MQ， Yan JP， et al. Nutrient requirements and growth of the sea cucumber，Apostichopus japonicus. In：Advances in Sea Cucumber Aquaculture and Management. FAO， Rome， 2004， 327–331

[15] 何舟，宋堅，常亞青，等. 穗花狐尾藻（Myriophyllum spicatum L.）飼喂對仿刺參（Apostichopus japonicus）幼參生長、體成分及消化酶的影響 [J].漁業(yè)科學進展，2015（04）：122-127.

[16] 王吉橋，唐黎，許重，等. 仿刺參消化道的組織學及其 4 種消化酶活力的周年變化[J]. 水產(chǎn)科學， 2007， 26（9）： 481–484

[17] 薛德林，胡江春，王國安，等. 海洋膠紅酵母、光合細菌、生化黃腐酸在仿刺參育苗和養(yǎng)成中的應用效果[J]. 腐植酸，2009（04）：19-24.

[18] Dong S，Liang M，Gao Q，et al. 2010. Intra-specific effects of sea cucumber （Apostichopus japonicus） with reference to stocking density and body size[J]. Aquaculture Research，41：1170-1178.

[19] 馬悅欣，徐高蓉，常亞青，等. 大連地區(qū)仿刺參幼參潰爛病細菌性病原的初步研究[J].大連水產(chǎn)學院學報.2006（01）：13-18.

[20] 孟繁林，榮小軍，李彬，等.剌參養(yǎng)殖池塘中一種常見剛毛藻的調(diào)查及防控策略[J].水產(chǎn)科技情報，2013（04）：179-182.

[21] 周書珩，王印庚，李勝忠，等. 仿刺參育苗系統(tǒng)中的敵害生物玻璃海鞘的藥物殺除試驗[J].漁業(yè)科學進展.2009（02）：12-19.

[22] 李強，羅永成，李華，等.常用抗菌藥物和消毒劑對仿刺參幼體的急性毒性試驗[J].大連水產(chǎn)學院學報，2005（02）：105-110.

[23] B A MacDonald. Physiological energetics of Japanese scallop Patinopecten yessoensis， larvae [J]. Journal of Experimental Marine Biology & Ecology， 1988， 120（2）：155-170.

[24] Liu B， Dong B， Tang B， et al. Effect of stocking density on growth， settlement and survival of clam larvae， Meretrix meretrix[J]. Aquaculture， 2006， 258（1–4）：344-349.

[25] Christina Carl， Rocky de Nys， Rebecca J Lawton， et al. Paul Methods for the Induction of Reproduction in a Tropical Species of Filamentous Ulva[J].PLoS One， 2014； 9（5）： e97396.

[26] 于向陽，宋剛王，祝良. EM菌在遼西仿刺參育苗中的應用[J].農(nóng)業(yè)技術(shù)與裝備，2011（12）：23-24.

[27] ETC Group （Action Group on Erosion， Technology and Concentration） [webpage on the Internet] Down on the farm： the impact of nanoscale technologies on food and agriculture. Ottawa， ON： ETC Group； 2003. [Accessed April 19， 2014].

（收稿日期：2018-08-08；修回日期：2018-09-13）