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        基于活性氧/硫氧還蛋白結合蛋白通路探討紫草素對布魯氏菌感染小鼠的保護作用Δ

        2021-09-08 06:18:22賈永利楊新明張培楠孟憲勇胡長波
        關鍵詞:素組紫草布魯氏菌

        賈永利,楊新明,張培楠,孟憲勇,胡長波

        (河北北方學院附屬第一醫(yī)院骨外科,河北 張家口 075000)

        布魯氏菌病是一種常見的人畜共患病,因布魯氏菌感染引起。布魯氏菌為革蘭陰性胞內寄生菌,主要有消化道、呼吸道及皮膚接觸等多種感染途徑,可導致動物不育、流產,嚴重降低畜牧業(yè)經濟效益,并可造成患者心、肝、腦及泌尿等全身器官和或(系統)病變,導致盜汗、渾身無力和發(fā)熱,極大威脅人們的生命健康[1-3]。布魯氏菌能引發(fā)人類機體嚴重的免疫炎癥反應,細胞免疫及體液免疫均參與其中,布魯氏菌感染機體后,可激活免疫細胞,促使其合成分泌炎癥因子,引發(fā)炎癥;還可誘導機體免疫系統生成免疫球蛋白G(IgG)、免疫球蛋白M(IgM),形成免疫復合物,進一步激發(fā)免疫效應,促使炎癥進展[4-6]。免疫炎癥反應是機體受到外界刺激時發(fā)生的復雜病理過程,活性氧(ROS)/硫氧還蛋白結合蛋白(TXNIP)通路是參與介導該過程的主要信號,減少ROS的產生,可下調TXNIP表達,抑制炎癥反應,預防細菌感染引起的急性肺損傷,因此,抑制ROS/TXNIP通路可作為布魯氏菌病的潛在治療手段[7]。紫草素是提取自紫草的天然活性成分,具有良好的抗菌、消炎作用,能顯著抑制金黃色葡萄球菌、大腸埃希菌及白色念珠菌等多種常見菌的生長,并可減少炎癥因子釋放,減輕炎癥損傷,緩解脂多糖誘導的小鼠肺損傷[8-9]。因此,推測紫草素對布魯氏菌病也可能有較好的治療作用。本研究基于ROS/TXNIP通路對紫草素保護布魯氏菌感染小鼠的作用進行探討,現報告如下。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 儀器:Multiskan FC型酶標儀購自上海騰名生物科技有限公司;Mini-PROTEAN Tetra型蛋白電泳儀、Trans-Blot Turb型蛋白快速轉膜儀購自美國Bio-Rad公司;TD-4M型低溫高速離心機購自濟南來寶醫(yī)療器械有限公司;GenoSens 2000 Touch型系列凝膠成像系統購自上海勤翔科學儀器有限公司。

        1.1.2 實驗細菌:布魯氏菌購自美國菌種保藏中心,批號25840。

        1.1.3 藥品與試劑:紫草素(原料藥,純度≥98%)購自上海喬羽生物科技有限公司,批號為QY-0022;布魯氏菌液體培養(yǎng)基、選擇性培養(yǎng)基購自青島海博生物技術有限公司,批號為HB7027、HB0315-1;ROS抑制劑N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)(批號為ab143032)、小鼠IgG酶聯免疫吸附試劑盒(批號為ab151276)、小鼠IgM酶聯免疫吸附試劑盒(批號為ab215085)、小鼠γ干擾素(IFN-γ)酶聯免疫吸附試劑盒(批號為ab100689)、小鼠腫瘤壞死因子α(TNF-α)酶聯免疫吸附試劑盒(批號為ab100713)、小鼠白細胞介素6(IL-6)酶聯免疫吸附試劑盒(批號為ab222274)、兔源GAPDH一抗(批號為ab9485)、兔源TXNIP一抗(批號為ab263899)及羊抗鼠二抗(批號為ab188865)購自美國Abcam公司;ROS測定試劑盒購自上海雅吉生物科技有限公司,批號為E004;全血總蛋白提取試劑盒購自上海貝博生物試劑公司,批號為BB-31967-1;BCA試劑盒、化學發(fā)光試劑購自上海經科化學科技有限公司,批號為JK-201、JK-305;RIPA裂解液購自上海碧云天公司,批號為P0013K。

        1.1.4 實驗動物:SPF級BALB/C小鼠購于河北省實驗動物中心,雌雄不限,10周齡,體重22~26 g,動物生產許可證號為SCXK(冀)2019-0001,動物使用許可證號為SYXK(冀)2019-0009,動物質量合格證號為LD501134。在河北北方學院附屬第一醫(yī)院動物實驗室中飼養(yǎng),室內溫度約25 ℃、相對濕度約50%,保持安靜,良好通風。

        1.2 方法

        1.2.1 小鼠模型的建立及分組處理:將BALB/C小鼠隨機分為對照組、模型組、紫草素組(50 mg/kg)、NAC組(ROS抑制劑NAC 20 mg/kg)、紫草素+NAC組(紫草素50 mg/kg+ROS抑制劑NAC 20 mg/kg),每組16只。除對照組外,其余組構建布魯氏菌感染小鼠模型。參照文獻[10]操作,將布魯氏菌菌種涂布接種在布魯氏菌選擇培養(yǎng)基上培養(yǎng),72 h后挑取單個、光滑的菌落,接種在液體培養(yǎng)基中,繼續(xù)培養(yǎng)72 h,吸取菌液1 ml,以12 000 r/min離心后以PBS緩沖液漂洗布魯氏菌沉淀,以PBS緩沖液重懸,采用麥氏比濁法計數,并稀釋菌液為5.0×106CFU/ml,每只小鼠腹腔注射該菌液200 μl建立感染小鼠模型,對照組16只小鼠腹腔注射PBS緩沖液200 μl。以0.9%氯化鈉溶液溶解紫草素和NAC,分別制備成5 mg/ml的紫草素溶液[11]、2 mg/ml的NAC溶液[12]、紫草素和NAC的混合溶液(紫草素、NAC質量濃度分別為5、2 mg/ml),紫草素組、NAC組和紫草素+NAC組小鼠每日以10 ml/kg劑量的相應溶液灌胃,模型組和對照組小鼠每日以相同劑量的0.9%氯化鈉溶液灌胃,均每日灌胃1次,共進行14 d。

        1.2.2 標本采集及小鼠肝脾指數測定:末次灌胃給藥24 h后,稱量五組小鼠體重后,脫頸處死,從腹主動脈取血5 ml,其中每組8只小鼠的血液于4 ℃下,以3 000 r/min離心15 min,吸取上清液置于Ep管中;剩余8只小鼠的血液,取2 ml進行ROS水平檢測;剩余3 ml以全血總蛋白提取試劑盒提取總蛋白后,采用BCA試劑盒測量其濃度(步驟按照各自試劑盒說明書進行),血清與血中總蛋白均放置于-80 ℃儲存,以備后續(xù)實驗使用。取血后,每組隨機選擇8只小鼠取出肝臟和脾臟,稱其重量,計算肝脾指數,臟器指數=臟器濕重/體重×100%;剩余8只小鼠吸取腹腔積液1 ml,稱重后,然后取脾臟組織1 g,加入RIPA裂解液2 ml,勻漿后,以3 000 r/min離心,取上清液,和腹腔積液一起置于4 ℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.3 小鼠腹腔積液、脾臟載菌量測定:取“1.2.2”項下腹腔積液和脾臟組織樣品液各10 μl涂布接種在布魯氏菌選擇培養(yǎng)基上培養(yǎng),72 h后觀察菌落形成情況,進行細菌計數,載菌量以CFU/g表示。

        1.2.4 血清IFN-γ、IL-6、TNF-α、IgG及IgM水平測定:取“1.2.2”項下血清,4 ℃下解凍,以酶聯免疫吸附法按照試劑盒的操作步驟測定血清IFN-γ、IL-6、TNF-α、IgG及IgM水平。

        1.2.5 血液中ROS水平、TXNIP蛋白水平檢測:使用ROS測定試劑盒測量“1.2.2”項下全血ROS水平,具體步驟按照試劑盒說明書進行。取出血液蛋白樣品液,各樣本分別取20 μl,110 V恒定電壓下電泳,然后以同樣電壓濕轉,將分離蛋白轉印至聚偏二氟乙烯膜上,采用5%濃度的脫脂奶粉室溫孵育2 h,行封閉處理,以稀釋比為1∶2 000的兔源TXNIP、GAPDH一抗溶液于4 ℃下孵育過夜,以TBST緩沖液漂洗3次,加入稀釋比為1∶5 000的羊抗鼠二抗溶液室溫孵育2 h,以TBST緩沖液漂洗3次,使用化學發(fā)光試劑使蛋白條帶顯色,使用凝膠成像儀拍照,最終以Quantity One軟件分析圖像,得出TXNIP蛋白的相對表達量。

        1.3 統計學方法

        2 結果

        2.1 五組小鼠肝脾指數比較

        與對照組比較,模型組小鼠的肝臟和脾臟指數明顯升高;與模型組比較,紫草素組、NAC組及紫草素+NAC組小鼠的肝臟和脾臟指數明顯降低;與紫草素組及NAC組分別比較,紫草素+NAC組小鼠的肝臟和脾臟指數均明顯降低,上述差異均有統計學意義(P<0.05),見表1。

        表1 五組小鼠肝脾指數比較Tab 1 Comparison of liver and spleen indicators of

        2.2 五組小鼠腹腔積液載菌量比較

        與對照組比較,模型組小鼠腹腔積液載菌量明顯升高;與模型組比較,紫草素組、NAC組及紫草素+NAC組小鼠腹腔積液載菌量明顯降低;與紫草素組及NAC組分別比較,紫草素+NAC組小鼠腹腔積液載菌量均明顯降低,上述差異均有統計學意義(P<0.05)。見表2。

        表2 五組小鼠腹腔積液載菌量比較Tab 2 Comparison of bacterial load in peritoneal effusion of mice among 5 group

        2.3 五組小鼠脾臟載菌量比較

        與對照組比較,模型組小鼠脾臟載菌量明顯升高;與模型組比較,紫草素組、NAC組及紫草素+NAC組小鼠脾臟載菌量明顯降低;與紫草素組及NAC組分別比較,紫草素+NAC組小鼠脾臟載菌量均明顯降低,上述差異均有統計學意義(P<0.05),見表3。

        表3 五組小鼠脾臟載菌量比較Tab 3 Comparison of bacterial load in spleen of mice

        2.4 五組小鼠血清IFN-γ、IL-6及TNF-α水平比較

        與對照組比較,模型組小鼠血清IFN-γ、IL-6、TNF-α水平明顯升高;與模型組比較,紫草素組、NAC組及紫草素+NAC組小鼠血清IFN-γ、IL-6及TNF-α水平明顯降低;與紫草素組及NAC組分別比較,紫草素+NAC組小鼠血清IFN-γ、IL-6、TNF-α水平均明顯降低,上述差異均有統計學意義(P<0.05),見表4。

        表4 五組小鼠血清IFN-γ、IL-6及TNF-α水平比較Tab 4 Comparison of serum IFN-γ, IL-6 and TNF-α levels of mice among 5 group

        2.5 五組小鼠血清IgG、IgM水平比較

        與對照組比較,模型組小鼠血清IgG、IgM水平明顯升高;與模型組比較,紫草素組、NAC組及紫草素+NAC組小鼠血清IgG、IgM水平明顯降低;與紫草素組及NAC組分別比較,紫草素+NAC組小鼠血清IgG、IgM水平均明顯降低,差異均有統計學意義(P<0.05)。見表5。

        表5 五組小鼠血清IgG、IgM水平比較Tab 5 Comparison of serum IgG and IgM levels of mice

        2.6 五組小鼠血液中ROS水平和TXNIP蛋白表達水平比較

        與對照組比較,模型組小鼠血液中ROS水平和TXNIP蛋白表達水平明顯升高;與模型組比較,紫草素組、NAC組及紫草素+NAC組小鼠血液中ROS水平和TXNIP蛋白表達水平明顯降低;與紫草素組及NAC組分別比較,紫草素+NAC組小鼠血液中ROS水平和TXNIP蛋白表達水平均明顯降低,上述差異均有統計學意義(P<0.05),見圖1、表6。

        A.對照組;B.模型組;C.紫草素組;D.NAC組;E.紫草素+NAC組A. control group; B. model group; C. Shikonin group; D. NAC group; E. Shikonin+NAC group圖1 蛋白免疫印跡檢測五組小鼠血液中TXNIP蛋白表達Fig 1 Expression of TXNIP protein in blood of mice in 5 groups detected by protein immunoblotting

        表6 五組小鼠血液中ROS水平和TXNIP蛋白表達水平比較Tab 6 Comparison of ROS level and expression level of TXNIP protein in blood of mice among 5 group

        3 討論

        本研究通過腹腔注射布魯氏菌菌液制備布魯氏菌感染小鼠模型,結果顯示,感染小鼠的肝臟指數、脾臟指數、腹腔積液載菌量及脾臟載菌量顯著升高,血清IFN-γ、IL-6、TNF-α、IgG和IgM水平顯著升高,表明布魯氏菌在小鼠體內生長,并引發(fā)免疫炎癥反應,造成肝脾腫大受損,說明模型建立成功。

        紫草素為天然藥物紫草的主要活性成分,具有抑菌、抗炎、抗腫瘤和抗病毒等多種藥理作用,可破壞細菌細胞膜完整性,抑制白色念珠菌、大腸埃希菌和蠟狀芽孢桿菌等多種菌株生長,并可阻止心肌缺血再灌注引發(fā)的炎癥發(fā)生,降低機體氧化應激水平,減輕心肌梗死小鼠的心肌損傷[11,13-14]。由此推測,紫草素也可能抑制布魯氏菌生長,并通過減輕炎癥改善布魯氏菌病的臨床癥狀。本研究以紫草素灌胃布魯氏菌感染模型小鼠,結果顯示,紫草素可降低布魯氏菌感染小鼠的肝臟指數、脾臟指數、腹腔積液載菌量和脾臟載菌量,降低布魯氏菌感染小鼠血清IFN-γ、IL-6、TNF-α、IgG和IgM水平,表明紫草素可抑制布魯氏菌在小鼠體內生長繁殖,降低炎癥因子及抗體水平,減輕細胞和體液免疫應答,抑制炎癥發(fā)生及進展,緩解肝脾器官損傷。

        ROS/TXNIP通路是機體中調控炎癥反應的重要信號通路,機體受到細菌感染、缺血及缺氧等外界刺激時,ROS大量產生,促進TXNIP表達,誘導下游NOD樣受體蛋白3炎癥信號激活,導致炎癥發(fā)生;NAC是ROS清除劑,可降低ROS水平,下調TXNIP蛋白表達,進而抑制炎癥反應發(fā)生及進展[15-17]。因此,ROS/TXNIP可作為布魯氏菌病的潛在治療靶點。本研究結果顯示,小鼠感染布魯氏菌后,體內ROS/TXNIP處于激活狀態(tài),而紫草素可下調ROS水平和TXNIP蛋白表達水平,表明ROS/TXNIP通路參與調控布魯氏菌感染的病理過程,下調該通路蛋白表達,可減輕感染小鼠的臨床癥狀;NAC與紫草素作用相似,均可抑制ROS/TXNIP激活,減輕炎癥,降低小鼠肝脾損傷;進一步研究結果顯示,紫草素及NAC聯合應用,可進一步降低布魯氏菌感染小鼠的肝臟指數、脾臟指數、腹腔積液載菌量和脾臟載菌量,降低血清IFN-γ、IL-6、TNF-α、IgG和IgM水平,降低血液中ROS水平、TXNIP蛋白表達水平,相比紫草素、NAC單獨處理,作用更強,表明兩者聯合應用具有協同作用,可更有效地抑制小鼠體內布魯氏菌繁殖生長,減少炎癥因子及抗體合成分泌,抑制細胞和體液免疫應答,減輕炎癥,改善小鼠癥狀。

        綜上所述,紫草素具有明顯的抗布魯氏菌作用,可抑制布魯氏菌在動物體內生長,減輕機體免疫應答,抑制炎癥反應,緩解肝脾器官損傷,改善細菌感染癥狀,為布魯氏菌病的臨床治療提供了新的思路,抑制ROS/TXNIP通路激活可能是其藥理機制之一。但本研究還未使用該通路激動劑進行對照驗證,需后續(xù)深入研究,改善其不足。

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