劉寬亮 趙志?!「邜?ài)平
摘要:肉桂酸-4-羥基化酶(C4H)是植物苯丙烷合成途徑的關(guān)鍵酶之一,其蛋白質(zhì)活性和轉(zhuǎn)錄豐度直接影響植物中黃酮類化合物和芳香族化合物的生物合成量。根據(jù)已經(jīng)報(bào)道的C4H基因的序列設(shè)計(jì)兼并引物,采用3′RACE、5′RACE方法,克隆得到芒果果實(shí)C4H基因的全長(zhǎng)cDNA序列為1 680 bp。該基因開(kāi)放閱讀框?yàn)? 518 bp,編碼505個(gè)氨基酸,分子量為58.08 ku。蛋白等電點(diǎn)為9.52,分析發(fā)現(xiàn)該基因主要定位在線粒體中。通過(guò)軟件預(yù)測(cè)得到3種三級(jí)蛋白結(jié)構(gòu)圖;通過(guò)系統(tǒng)發(fā)育分析發(fā)現(xiàn),該基因編碼的蛋白與橄欖、可可等植物具有較近的親緣關(guān)系。對(duì)不同著色的芒果品種的C4H基因表達(dá)進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),紅色的貴妃品種中表達(dá)量最高,而綠色的桂七品種中表達(dá)量最低。
關(guān)鍵詞:芒果; C4H基因;克隆;蛋白質(zhì);生物信息
中圖分類號(hào): S667.701文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2017)14-0008-04
肉桂酸-4-羥化酶(cinnamate-4-hydroxylase,簡(jiǎn)稱C4H),別稱反式肉桂酸-4-單氧化酶,是細(xì)胞色素單加氧酶P450超家族的成員之一[1],該酶由Russell等首次從豌豆芽中發(fā)現(xiàn)[2],它是苯丙素類化合物生物合成途徑里繼苯丙氨酸脫氨酶(phenylalanineammonia-iyase,簡(jiǎn)稱PAL)之后的第2個(gè)關(guān)鍵調(diào)節(jié)酶,其作用是將苯丙氨酸途徑的合成酶復(fù)合物固定在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上[3];同時(shí),在氧和磷酸煙酰胺腺嘌呤二核苷酸(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,簡(jiǎn)稱NADP)存在下,將反式肉桂酸苯環(huán)的4位羥基化生成對(duì)-香豆酸[4]。C4H分布在微粒體中,能夠原位利用PAL催化產(chǎn)生的苯乙烯酸。普遍認(rèn)為,肉桂酸-4-羥化酶是苯丙素類物質(zhì)代謝中一個(gè)調(diào)節(jié)點(diǎn)[2]。由于肉桂酸-4-羥化酶基因在植物次生代謝中有這些重要的作用,因此被廣泛關(guān)注。自上世紀(jì)80年代以來(lái),肉桂酸-4-羥化酶的基因克隆逐漸成為一個(gè)研究熱點(diǎn)。迄今,已有擬南芥、大豆、花生、杜仲等50多種植物的C4H基因被分離出來(lái)[5-10]。與苯丙氨酸脫氨酶基因類似,肉桂酸-4-羥化酶基因的拷貝數(shù)在不同植物之間存在差異。如:苜蓿C4H基因有2個(gè)拷貝,豌豆的C4H基因只有1個(gè)拷貝,綠豆和長(zhǎng)春花的C4H基因家族都有多個(gè)成員。這些不同植物種的C4H基因所編碼的氨基酸序列相似性極高,同源性普遍在85%左右。但玉米和法國(guó)菜豆中的2個(gè)C4H酶蛋白氨基酸序列例外,同源性只有60%[11]。C4H基因在植物各組織中均具有很高的活性[11-14],研究表明,C4H的蛋白質(zhì)活性和轉(zhuǎn)錄豐度直接影響植物中黃酮類化合物、木質(zhì)素、芳香族類化合物的合成等多條代謝途徑[15-16]。芒果是重要的熱帶、亞熱帶果樹(shù),果實(shí)色彩多樣,有綠色、黃色、淺黃色、紅色、橙紅色等。芒果果實(shí)富含類胡蘿卜素、花色素苷等物質(zhì),其中花色素苷合成途徑是紅色芒果果實(shí)著色的一個(gè)主要的代謝途徑。芒果果實(shí)C4H基因的研究工作未見(jiàn)報(bào)道,本研究采用cDNA末端快速擴(kuò)增技術(shù)(rapid amplification of cDNA ends,簡(jiǎn)稱RACE)從芒果的果實(shí)中克隆得到1個(gè)C4H基因,深入探討該基因在芒果果實(shí)花色素苷合成的作用機(jī)制及其對(duì)果實(shí)著色的影響,借以深入揭示該基因在芒果果實(shí)花色素苷生物合成的分子機(jī)制,以期為芒果果實(shí)著色研究提供一定理論依據(jù)。
1材料與方法
1.1材料
試驗(yàn)所用芒果(品種有紅色貴妃、黃色金煌、綠色桂七)果實(shí)取自中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院熱帶作物品種資源研究所的農(nóng)業(yè)部芒果種質(zhì)資源圃。引物委托上海英俊生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成,其他藥品如:異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(isopropyl β-D-thiogalactoside,簡(jiǎn)稱為IPTG)、酵母抽提物(yeast extract,簡(jiǎn)稱YE)、氨芐青霉素(ampicillin,簡(jiǎn)稱為Amp)、5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-吡喃半乳糖苷(簡(jiǎn)稱為X-GaL)、pMD-19T載體及各種酶均購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司。
1.2試驗(yàn)方法
1.2.1芒果總RNA提取采用天根生化科技(北京)有限公司生產(chǎn)的總RNA提取試劑盒用RNase-free無(wú)菌水溶解,并用寶生物工程(大連)有限公司的DNase試劑盒進(jìn)行DNA去除,用1.0%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)RNA的完整性和DNA是否去除干凈。
1.2.2PCR反應(yīng)程序94 ℃預(yù)變性4 min;95 ℃變性50 s,50 ℃復(fù)性50 s,72 ℃延伸2 min,30個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸 7 min; 反應(yīng)體系為25 μL,其中含10×PCR buffer(含Mg2+)2.5 μL、25 ng DNA模板、20 μmol引物、1.0 U Taq DNA聚合酶、5.0 mmol dNTPs;[JP3]擴(kuò)增反應(yīng)結(jié)束后取10 μL進(jìn)行擴(kuò)增產(chǎn)物的電泳,采用gelred染色后在紫外凝膠成像儀上觀察、拍照分析。
1.3C4H基因全長(zhǎng)cDNA序列的獲得
以貴妃芒果的果實(shí)總RNA作為模板,采用SMARTerTM RACE cDNA Amplification Kit (Clontech)反轉(zhuǎn)錄合成第一鏈cDNA,并參照該試劑盒的說(shuō)明書(shū)進(jìn)行cDNA 3′端、5′末端 cDNA 的擴(kuò)增。根據(jù)cDNA片段的測(cè)序結(jié)果,分別設(shè)計(jì)2條上游引物,以接頭為錨定引物進(jìn)行半巢式PCR反應(yīng)。根據(jù)測(cè)得的片段和得到的cDNA 3′端、5′末端的序列結(jié)果拼接該基因的全長(zhǎng) cDNA。以cDNA為模板,設(shè)計(jì)特異引物,進(jìn)行全長(zhǎng)cDNA序列擴(kuò)增反應(yīng)。
1.4C4H基因氨基酸序列的結(jié)構(gòu)特征和分子進(jìn)化的分析
將測(cè)得的全長(zhǎng)cDNA序列進(jìn)行NCBI序列比對(duì),確定該全長(zhǎng)序列是否為C4H基因,并進(jìn)行其他物種C4H基因的比對(duì),采用DNAMAN軟件分析基因核苷酸、氨基酸的結(jié)構(gòu)特征和同源性;分析該基因所推定氨基酸序列進(jìn)行多序列比較并構(gòu)建系統(tǒng)樹(shù)。endprint
1.5表達(dá)分析
分別提取不同芒果品種的RNA,反轉(zhuǎn)為cDNA,并采用Primer 5.0設(shè)計(jì)引物進(jìn)行RT-PCR的擴(kuò)增。RT-PCR分析采用的內(nèi)參引物序列為:actin-F 5′-AATGGAACTGGAATG GTCAAGGC-3′,actin-R5′-TGCCAGATCTTCTCCATGTCA TCCCA-3′;目的基因擴(kuò)增采用的引物為:C4H-F,5′-CAGCATAGCCTAGCACATACTC-3′,C4H-R 5′-CAATG GAGCATATACGAAACTAT-3′,PCR產(chǎn)物在1.0%的瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳,并采用Quantity One軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)算相對(duì)表達(dá)量。
2結(jié)果與分析
2.1C4H基因的獲得
根據(jù)RACE擴(kuò)增結(jié)果進(jìn)行拼接最后得到C4H基因的全長(zhǎng)cDNA序列,電泳收測(cè)序后全長(zhǎng)序列為1 680 bp,分析發(fā)現(xiàn),開(kāi)放閱讀框?yàn)? 518 bp,編碼505個(gè)氨基酸序列(圖1)。通過(guò)NCBI上已經(jīng)登錄的水稻、大豆、橄欖、可可的C4H蛋白序列進(jìn)行比對(duì)(圖2)發(fā)現(xiàn),克隆的基因?yàn)镃4H基因。
利用NCBI的Blast進(jìn)行保守區(qū)查找,獲得序列的保守Domain(CD)。結(jié)果表明,C4H有PLN02394(trans-cinnamate 4-monooxygenase)、p450(cytochrome P450)、CypX(secondary metabolites biosynthesis,transport and catabolism)P450_cycloAA_1(cyclodipeptide synthase-associated)、PLN02738(carotene beta-ring hydroxylase)等結(jié)合域。對(duì)其蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn),芒果C4H蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)主要以蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)元件以α-螺旋結(jié)構(gòu)和無(wú)規(guī)則卷曲為主,也具有少量的β-折疊結(jié)構(gòu)(圖4)。采用Bioedit軟件的Kyte和Doolittle算法對(duì)C4H蛋白的親水/疏水性(正值表示疏水性,負(fù)值表示親水性)進(jìn)行分析,C4H蛋白所含氨基酸的值主要介于-2.2~31之間(圖5),采用WoLFPSORT(http://www.genscript.com/wolf-psort.html)軟件對(duì)C4H蛋白進(jìn)行定位預(yù)測(cè)發(fā)現(xiàn),該基因定位在線粒體中,采用Swissmodel(http://swissmodel.expasy.org/)在線軟件對(duì)蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),推導(dǎo)出該蛋白有3種結(jié)構(gòu)構(gòu)型(圖6)。采用DNAMAN軟件分析發(fā)現(xiàn),芒果C4H蛋白與橄欖、可可等植物具有較近的親緣關(guān)系(圖7)。
2.3C4H基因的RT-PCR分析
對(duì)不同著色品種的芒果果皮進(jìn)行RT-PCR分析結(jié)果發(fā)現(xiàn),該基因在紅色果皮貴妃的果實(shí)中表達(dá)較多,黃色果皮金煌的果實(shí)中次之,而綠色果皮桂七的果實(shí)中相對(duì)表達(dá)較少(圖8),初步推斷C4H基因可能與紅色果實(shí)的花色素苷合成有密切的關(guān)系。
3討論
本研究成功地從芒果果實(shí)中分離得到1個(gè)全長(zhǎng)C4H基因,該基因cDNA的開(kāi)放閱讀框?yàn)? 518 bp,編碼505個(gè)氨基酸。通過(guò)在線軟件對(duì)cDNA和蛋白序列分析證實(shí)該序列是植物C4H基因的一員。芒果C4H基因與所選其他物種C4H基因序列相比較發(fā)現(xiàn),無(wú)論在全長(zhǎng)cDNA序列上還是在其編碼氨基酸序列上都具有較高保守的結(jié)構(gòu)域細(xì)胞色素P450。同時(shí),通過(guò)與其他部分物種的氨基酸序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)生樹(shù)發(fā)現(xiàn),芒果C4H基因編碼的蛋白與橄欖、可可、棉花等植物聚為一類。植物黃酮類物質(zhì)的生物合成相關(guān)的蛋白一般定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)外膜上,由一系列特定的黃酮合成相關(guān)酶組成的多酶復(fù)合體連續(xù)合成并轉(zhuǎn)運(yùn)到特定的亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)中[17]。C4H蛋白的N-末端的膜錨定信號(hào)基(signal-anchor sequence),使其定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)外膜上,參與苯丙烷類代謝途徑中多酶復(fù)合體的亞細(xì)胞定位和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上電子鏈的化學(xué)傳遞[18],進(jìn)而進(jìn)行黃酮類物質(zhì)的生物合成。Baek等在黑莓中發(fā)現(xiàn),黃酮積累量與C4H表達(dá)量在果實(shí)發(fā)育的不同時(shí)期表現(xiàn)了同步增加或減少的變化趨勢(shì)[19]。本研究對(duì)芒果不同果實(shí)著色分析發(fā)現(xiàn),紅色的貴妃品種中表達(dá)量最高,而綠色的桂七品種中表達(dá)量最低,這與花色素苷的含量有一定的相關(guān)性。在大蒜中C4H的轉(zhuǎn)錄在根中最高,而在苯丙素類物質(zhì)富集的莖中卻很低。推測(cè)大蒜中苯丙素類物質(zhì)可能在根部合成后轉(zhuǎn)運(yùn)到莖中[20]。在逆境脅迫下,植物可通過(guò)調(diào)節(jié)一系列合成相關(guān)酶基因的轉(zhuǎn)錄水平從而影響其黃酮類和芳香族類的合成和積累[8],其中就包括C4H。Ryan等在矮牽?;ㄖ械难芯堪l(fā)現(xiàn),在UV-B脅迫處理下,C4H等基因表達(dá)量的增加使得植物組織中總黃酮含量增加[21]。Liu等發(fā)現(xiàn)K離子缺乏誘導(dǎo)的菊花中C4H等基因的表達(dá)量減少,造成了該部位黃酮含量的降低[22]。芒果C4H基因是芒果花色素苷合成代謝途徑中的一個(gè)關(guān)鍵的基因,對(duì)芒果果皮紅色的形成具有重要的作用。芒果果實(shí)的著色也受得了光照、溫度等條件的影響,這些因素是否影響了C4H基因的表達(dá),同時(shí),對(duì)該基因功能的深入研究須要進(jìn)一步進(jìn)行轉(zhuǎn)基因植物表達(dá)驗(yàn)證。
參考文獻(xiàn):
[1]Barber M S,Mitchell H J. Regulation of phenylpropanoid metabolism in relation to lignin biosynthesis in plants[J]. International Review of Cytology,1997,172(8):243-293.
[2]Russell D W,Conn E E. The cinnamic acid 4-hydroxylase of pea seedlings[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics,1967,122(1):256-258.endprint
[3]李波,梁穎,柴友榮. 植物肉桂酰輔酶A還原酶(CCR)基因的研究進(jìn)展[J]. 分子植物育種,2006,4(增刊1):55-65.
[4]Mizutani M,Ward E,Dimaio J,et al. Molecular cloning and sequencing of a cDNA encoding mung bean cytochrome P450(P450C4H) possessing cinnamate 4-hydroxylase activity[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,1993,190(3):875-880.
[5]王安娜,王嬋嬋,吳蕾,等. 大豆C4H基因克隆及生物信息學(xué)分析[J]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2010,41(4):12-16.
[6]杜紅巖. 杜仲活性成分與藥理研究的新進(jìn)展[J]. 經(jīng)濟(jì)林研究,2003,21(2):58-61.
[7]陳安和,李加納,柴友榮,等. 羽衣甘藍(lán)中一個(gè)突變型肉桂酸-4-羥化酶基因的克隆及分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2007,34(4):915-922.
[8]陳鴻翰,袁夢(mèng)求,李雙江,等. 苦蕎肉桂酸羥化酶基因(FtC4H)的克隆及其UV-B脅迫下的組織表達(dá)[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào),2013,21(2):137-147.
[9]李莉,趙越,馬君蘭. 苯丙氨酸代謝途徑關(guān)鍵酶:PAL、C4H、4CL研究新進(jìn)展[J]. 生物信息學(xué),2007,5(4):187-189.
[10]羅小嬌,劉新春,楊曉云,等. 青稞C4H基因的克隆及組織表達(dá)分析[J]. 植物遺傳資源學(xué)報(bào),2014,15(3):589-596.
[11]Fahrendorf T,Dixon R A. Stress responses in alfalfa (Medicago sativa L.). Ⅹ[KG-0.5mm]Ⅴ[KG-0.5mm]Ⅲ:molecular cloning and expression of the elicitor-inducible cinnamic acid 4-hydroxylase cytochrome P450[J]. Archives of Biochemistry and Biophysics,1993,305(2):509-515.
[12]Mizutani M,Ward E,Dimaio J,et al. Molecular cloning and sequencing of a cDNA encoding mung bean cytochrome P450 (P450C4H) possessing cinnamate 4-hydroxylase activity[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,1993,190(3):875-880.
[13]Teutsch H G,Hasenfratz M P,Lesot A,et al. Isolation and sequence of a cDNA encoding the Jerusalem artichoke cinnamate 4-hydroxylase,a major plant cytochrome P450 involved in the general phenylpropanoid pathway[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences,1993,90(9):4102-4106.
[14]Millar D J,Long M,Donovan G,et al. Introduction of sense constructs of cinnamate 4-hydroxylase (CYP73A24) in transgenic tomato plants shows opposite effects on flux into stem lignin and fruit flavonoids[J]. Phytochemistry,2007,68(11):1497-1509.
[15]Ryan K G,Swinny E E,Markham K R,et al. Flavonoid gene expression and UV photoprotection in transgenic and mutant Petunia leaves[J]. Phytochemistry,2002,59(1):23-32.
[16]Sewalt V J H,Ni W,Blount J W,et al. Reduced lignin content and altered lignin composition in transgenic tobacco down-regulated in expression of L-phenylalanine ammonialyase or cinnamate 4-hydroxylase[J]. Plant Physiology,1997,115(1):41-50.
[17]Saslowsky D E,Warek U,Winkel B S. Nuclear localization of flavonoid enzymes in Arabidopsis[J]. Journal of Biological Chemistry,2005,280(25):23735-23740.
[18]Williams P A,Cosme J,Sridhar V,et al. Mammalian microsomal cytochrome P450 monooxygenase:structural adaptations for membrane binding and functional diversity[J]. Molecular Cell,2000,5(1):121-131.
[19]Baek M H,Chung B Y,Kim J H,et al. cDNA cloning and expression pattern of cinnamate-4-hydroxylase in the Korean black raspberry[J]. BMB Reports,2008,41(7):529-536.
[20]Tuan P A,Park N I,Li X,et al. Molecular cloning and characterization of phenylalanine ammonia-lyase and cinnamate 4-hydroxylase in the phenylpropanoid biosynthesis pathway in garlic (Allium sativum)[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry,2010,58(20):10911-10917.
[21]Ryan K G,Swinny E E,Markham K R,et al. Flavonoid gene expression and UV photoprotection in transgenic and mutant Petunia leaves[J]. Phytochemistry,2002,59(1):23-32.
[22]Liu W,Zhu D,Liu D,et al. Comparative metabolic activity related to flavonoid synthesis in leaves and flowers of Chrysanthemum morifolium in response to K deficiency[J]. Plant and Soil,2010,335(1/2):325-337.endprint