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        植物乳桿菌發(fā)酵對豆粕蛋白結(jié)構(gòu)的影響

        2017-07-20 10:21:51張莉麗張功圣劉容旭韓建春
        食品科學(xué) 2017年14期
        關(guān)鍵詞:巰基豆粕可溶性

        張莉麗,崔 憲,張功圣,姜 帆,劉容旭,韓建春,3,*

        (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150030;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)工學(xué)院,北京 100083;3.國家大豆工程技術(shù)研究中心,黑龍江 哈爾濱 150030)

        植物乳桿菌發(fā)酵對豆粕蛋白結(jié)構(gòu)的影響

        張莉麗1,崔 憲2,張功圣1,姜 帆1,劉容旭1,韓建春1,3,*

        (1.東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,黑龍江 哈爾濱 150030;2.中國農(nóng)業(yè)大學(xué)工學(xué)院,北京 100083;3.國家大豆工程技術(shù)研究中心,黑龍江 哈爾濱 150030)

        利用植物乳桿菌發(fā)酵降解低溫豆粕乳,研究其中大豆蛋白結(jié)構(gòu)的變化。隨發(fā)酵時間的延長,樣品水解度和體外消化率均呈升高趨勢,可溶性蛋白粒徑分布向低粒徑方向移動,說明脫脂豆粕中大豆蛋白經(jīng)發(fā)酵后有一定程度的降解。同時,發(fā)酵處理后提取的大豆蛋白與原始大豆蛋白和發(fā)酵0 h時提取的大豆蛋白相比,蛋白分子進一步展開,β-折疊含量升高,α-螺旋含量降低,熒光光譜中最大吸收波長發(fā)生紅移,暴露巰基含量升高。另外,掃描電子顯微鏡觀察結(jié)果表明大豆蛋白經(jīng)發(fā)酵后表面不再光滑,出現(xiàn)腐蝕性孔洞。

        植物乳桿菌;豆粕;蛋白結(jié)構(gòu);發(fā)酵

        大豆是我國四大油料作物之一,低溫脫脂豆粕是油脂加工中的副產(chǎn)物,富含大量蛋白質(zhì),其必需氨基酸含量十分接近聯(lián)合國糧農(nóng)組織/世界衛(wèi)生組織推薦的比例,是十分優(yōu)良的植物性蛋白質(zhì)之一,同時不含膽固醇,易于消化,這一點優(yōu)于動物性蛋白,因此被廣泛應(yīng)用于食品產(chǎn)業(yè)中。但在提取油脂和制備脫脂豆粕后,通過傳統(tǒng)工藝提取大豆蛋白會造成大豆蛋白的部分變性,導(dǎo)致功能性質(zhì)的降低[1]。要想得到具有良好功能特性的大豆蛋白,需對其改性。

        大部分改性方法是將大豆蛋白提取制備后,通過物理法、化學(xué)法和酶法對蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)進行改性或修飾,以達到改善其功能性質(zhì)的目的[2-4],但這些方法目前或多或少存在一些問題,例如化學(xué)試劑殘留、安全性降低、生產(chǎn)成本高、改性效果不明顯、產(chǎn)生不良風(fēng)味、原料利用率低等問題[5]。

        前期研究發(fā)現(xiàn),植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum)具有良好的發(fā)酵大豆乳的能力[6],并且通過其發(fā)酵可以改善豆粕蛋白的功能特性[7]。對于某些人來說,大豆球蛋白是重要的過敏源[8]。乳桿菌發(fā)酵可以分解大豆球蛋白從而降低其過敏性[9-10]。因此利用乳桿菌發(fā)酵大豆蛋白將是未來的一個研究熱點。目前,雖然有一些關(guān)于發(fā)酵提高大豆蛋白營養(yǎng)價值的研究[11],但是鮮有關(guān)于乳酸菌發(fā)酵對其結(jié)構(gòu)影響的相關(guān)報道。

        本研究以脫脂豆粕為原料,通過L. plantarum液態(tài)發(fā)酵一定時間后,利用傳統(tǒng)的堿溶酸沉法提取大豆蛋白后,測定其結(jié)構(gòu)變化,研究L. plantarum發(fā)酵過程中大豆蛋白結(jié)構(gòu)改變情況,為改善大豆蛋白功能性質(zhì)提供新方法和一定的理論基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 菌種與培養(yǎng)基

        L. plantarum KLD1.0391,東北農(nóng)業(yè)大學(xué)乳品科學(xué)教育部重點實驗室保存。

        液體MRS培養(yǎng)基用于菌種活化。

        大豆乳培養(yǎng)基(豆與蒸餾水比例為1∶10(g/mL),磨成豆?jié){):用于菌種活化和發(fā)酵劑制備[12]。

        1.2 儀器與設(shè)備

        PB-10型精密酸度計 德國賽多利斯公司;Ultrospec 1100 pro型紫外-可見分光光度計 美國通用電氣公司;電泳儀 美國Bio-Rad公司;TU-1901雙光束紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;Kjeltec 8400型全自動凱氏定氮儀 丹麥Foss公司;F-4500熒光分光光度計、J-815CD Spectrometer圓二色光譜儀 日本Jasco公司;S-3400N掃描式電子顯微鏡 日本Hitachi公司;Zetasizer Nano粒度儀 英國馬爾文儀器有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 大豆蛋白工藝流程

        脫脂豆粕→粉碎研磨→過篩(100 目標準篩)→豆粕乳(按1∶12的固液比與水混合)→殺菌(95 ℃,10 min)→冷卻→接入種子發(fā)酵劑→發(fā)酵至0、3、6、9、12 h→堿溶酸沉提取蛋白→透析除鹽→冷凍干燥→大豆蛋白樣品

        1.3.2 水解度測定

        采用王波等[13]的三氯乙酸(trichloroacetic acid,TCA)法,略有改動。將一定量經(jīng)發(fā)酵前后提取的大豆蛋白樣品,添加15% TCA溶液定容至10 mL,混合振蕩,靜置10 min后,4 000×g離心15 min,取上清液,樣品總氮和上清液中可溶性氮含量采用凱氏定氮法[14]測定。水解度根據(jù)公式(1)計算。

        式中:N1為原始大豆蛋白溶液(添加15%TCA)中可溶性氮含量/(g/100 mL);N2為原始大豆蛋白中總氮含量/(g/100 mL);N3為經(jīng)發(fā)酵后提取的大豆蛋白溶液(添加15% TCA)中可溶性氮含量/(g/100 mL)。

        1.3.3 體外消化率測定

        稱量200 mg大豆蛋白樣品,置于錐形瓶中,添加15 mL 0.1 mol/L HCl溶液(含1.5 mg胃蛋白酶)。將錐形瓶在37 ℃條件下水浴3 h后,添加3.3 mL 0.5 mol/L NaOH溶液和7.5 mL 0.2 mol/L磷酸緩沖溶液(pH 8.0,含4 mg胰酶),將混合液在37 ℃條件下水浴24 h后,添加10 mL 10% TCA終止反應(yīng),在室溫下5 000×g離心20 min,得到上清液,通過凱氏定氮法測定上清液和樣品中的含氮量。蛋白質(zhì)體外消化率按公式(2)計算。

        1.3.4 粒徑分布測定

        將大豆蛋白樣品溶于0.01 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.0),室溫下攪拌2 h,離心去除沉淀,上清液在4 ℃存放過夜以確保蛋白完全溶解,Lowry法[15]測定蛋白質(zhì)量濃度,稀釋成1 mg/mL蛋白質(zhì)溶液,采用Zetasizer Nano粒度分布儀在25 ℃測定蛋白質(zhì)樣品中可溶性蛋白的粒徑分布[16]。

        1.3.5 暴露巰基含量的測定

        參照Beveridge等[17]的方法測定。

        1.3.6 圓二色譜測定

        本研究利用圓二色譜譜在遠紫外區(qū)(260~180 nm)測定蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)[18]??瞻诪槿ルx子水,所得數(shù)據(jù)用摩爾橢圓率表示。數(shù)據(jù)由Jasco公司提供的Yang’s程序來分析大豆蛋白的二級結(jié)構(gòu)中α-螺旋、β-折疊、β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)則卷曲所占的比率。

        1.3.7 熒光光譜的測定

        參考Bonomi[19]的測定方法。

        1.3.8 掃描電子顯微鏡的測定

        樣品處理參照Ghosh等[20]的方法,樣品的微觀結(jié)構(gòu)使用掃描電子顯微鏡進行觀測,加速電壓為5 kV。樣品在觀察前用離子噴射器在大豆分離蛋白粉表面噴15 nm的金箔[21]。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 發(fā)酵對豆粕蛋白的水解度和體外消化率的影響

        在前期研究中發(fā)現(xiàn)發(fā)酵12 h后L. plantarum生長逐步進入生長平穩(wěn)期,pH值下降緩慢,所產(chǎn)蛋白酶活力下降,所以在發(fā)酵0、3、6、9、12 h提取的大豆蛋白作為實驗樣品,以原始大豆蛋白為對照組,比較蛋白水解度、體外消化率的變化。研究在L. plantarum發(fā)酵過程中大豆蛋白降解的變化情況。

        圖 1L. plantarum發(fā)酵對大豆蛋白水解度和體外消化率的影響Fig. 1 Effect of L. plantarum fermentation on in vitro digestibility and DH of soybean proteins

        由圖1可知,隨著發(fā)酵時間的延長,大豆蛋白水解程度呈現(xiàn)發(fā)酵前期增加快速后期緩慢的趨勢,這可能是隨著發(fā)酵時間延長,發(fā)酵底物不斷被消耗,質(zhì)量濃度降低,所產(chǎn)蛋白酶也逐漸失活,乳酸菌產(chǎn)生的代謝物與酶以復(fù)合體形式存在,抑制蛋白酶的活力,所以發(fā)酵后期大豆蛋白水解程度緩慢增加,發(fā)酵12 h時提取的大豆蛋白水解度達到6.25%。這些結(jié)果表明L. plantarum所產(chǎn)蛋白酶、肽酶對大豆蛋白有一定降解作用,這與Aguirre等[22]的研究結(jié)果一致。隨著發(fā)酵時間的延長,經(jīng)發(fā)酵后提取的大豆蛋白體外消化率逐漸升高,主要是因為發(fā)酵后,蛋白質(zhì)多降解為多肽、小肽及游離氨基酸等,這與劉海燕[23]研究結(jié)果一致。另外,王乃富[24]在研究中也得到類似結(jié)果,其利用乳酸菌發(fā)酵大豆粉時發(fā)現(xiàn)大分子蛋白質(zhì)發(fā)生降解。

        2.2 發(fā)酵對可溶性大豆蛋白粒徑分布的影響

        本研究通過測定發(fā)酵前后可溶性大豆蛋白的粒徑分布變化,以原始可溶性大豆蛋白作為對照組,研究L. plantarum對大豆蛋白降解作用的影響,結(jié)果如圖2和表1所示。

        由圖2可知,所有樣品的粒徑分布均呈雙峰分布,與原始可溶性大豆蛋白相比較,發(fā)酵0 h時提取的可溶性大豆蛋白的粒徑主要分布區(qū)域向高粒徑方向移動,是由于滅菌熱處理導(dǎo)致大豆蛋白發(fā)生部分聚集,產(chǎn)生一些可溶性聚集體[25],但是平均粒子直徑并無明顯改變。原始可溶性大豆蛋白的雙峰主要分布在10~100 nm和100~1 000 nm處,經(jīng)過發(fā)酵后提取的可溶性大豆蛋白的雙峰主要分布在1~10 nm和10~100 nm處,表明經(jīng)過發(fā)酵后提取的大豆蛋白的粒徑主要分布區(qū)域逐漸向低粒徑方向移動。

        圖2 發(fā)酵前后可溶性大豆蛋白的粒徑分布Fig. 2 Particle size distribution of soybean proteins with different fermentation times

        表1 發(fā)酵前后可溶性豆粕蛋白的平均粒徑和多分散系數(shù)Table 1 Average particle size and polydispersity index of soluble soybean proteins with different fermentation times

        由表1可知,與原始可溶性大豆蛋白相比,經(jīng)過發(fā)酵處理的可溶性大豆蛋白平均粒子直徑,隨著發(fā)酵時間延長逐漸降低。這可能是由于乳酸菌發(fā)酵可以有效的降解大豆蛋白[22],導(dǎo)致可溶性大豆蛋白的平均粒徑的降低。

        2.3 發(fā)酵對豆粕蛋白二級結(jié)構(gòu)的影響

        圖3 原始和發(fā)酵后大豆蛋白樣品的圓二光譜圖Fig. 3 Circular dichroism spectra of soybean proteins with different fermentation times

        如圖3所示,所測樣品均在193 nm附近出現(xiàn)正峰;在219 nm附近出現(xiàn)負肩峰;在207 nm及222 nm處出現(xiàn)負臥槽;192 nm處出現(xiàn)的正峰及219 nm附近出現(xiàn)的負肩峰表示大豆蛋白結(jié)構(gòu)中存在β-折疊結(jié)構(gòu),α-螺旋結(jié)構(gòu)所引起的負科頓效應(yīng)會使大豆蛋白在207 nm以及222 nm處形成負凹槽;220~230 nm之間出現(xiàn)的較弱小正峰表示大豆蛋白中有無規(guī)則卷曲的存在;β-轉(zhuǎn)角在205 nm附近有一微小正峰。由此可以看出大豆蛋白處理前后二級結(jié)構(gòu)中都包括α-螺旋、β-折疊、β-轉(zhuǎn)角、無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)的。這與通過CD-PRO軟件分析的結(jié)果(表2)一致。

        由表2可知,發(fā)酵0 h時提取的大豆蛋白二級結(jié)構(gòu)中β-折疊比原始大豆蛋白顯著升高(P<0.05),這與大豆蛋白加熱處理有關(guān)。研究表明大豆蛋白加熱溫度超過80 ℃時,亞基解離,分子結(jié)構(gòu)展開,導(dǎo)致β-折疊含量增多,同時α-螺旋結(jié)構(gòu)減少[26]。發(fā)酵至3、6、9、12 h時提取的大豆蛋白與原始大豆蛋白比較二級結(jié)構(gòu)中β-折疊含量均顯著升高(P<0.05);無規(guī)則卷曲含量均顯著降低(P<0.05);α-螺旋結(jié)構(gòu)含量呈現(xiàn)隨發(fā)酵時間的延長先降低后升高。β-折疊是通過肽鏈間或肽段間的氫鍵維系,它的增多表示肽鏈間有更多的氫鍵形成,而β-折疊含量的增加有利于功能特性的改善[27]。所以,推斷發(fā)酵后提取的大豆蛋白較未發(fā)酵的蛋白具有更好的功能性質(zhì),這與前期研究結(jié)果——發(fā)酵有助于改善大豆蛋白功能性質(zhì)一致[7]。這些結(jié)果說明L. plantarum發(fā)酵使大豆蛋白分子內(nèi)部氫鍵排列產(chǎn)生了改變,同時有更多氫鍵形成,導(dǎo)致大豆分離蛋白構(gòu)象發(fā)生改變。

        圖4 大豆蛋白樣品的熒光圖譜Fig. 4 Fluorescence emission spectra for soybean protein samples

        表3 大豆蛋白樣品熒光圖譜結(jié)果Table 3 Maximum fluorescence emission wavelengths of soybean protein samples fermented for different periods of time and corresponding fluorescence intensities

        2.4 發(fā)酵對豆粕蛋白分子構(gòu)象的影響本研究采用熒光光譜法測定蛋白質(zhì)分子構(gòu)象的變化,所得圖譜主要是色氨酸作為發(fā)色基團的熒光光譜,用以表征色氨酸微環(huán)境的變化。由圖4可知,發(fā)酵處理對大豆蛋白的熒光光譜形狀無顯著影響,但其最大吸收波長和熒光強度都發(fā)生改變。由表3可知,本實驗所有樣品的λmax都大于330 nm,表明色氨酸殘基都位于蛋白質(zhì)分子外部的極性環(huán)境中。與原始大豆蛋白相比,發(fā)酵至0 h時提取的大豆蛋白的λmax發(fā)生紅移,目前已有研究證明,熱處理后的大豆蛋白分子內(nèi)部的疏水基團會暴露出來,導(dǎo)致構(gòu)象改變[28-29]。發(fā)酵至3、6、9、12 h時提取的大豆蛋白樣品的λmax較原始大豆蛋白的λmax紅移更為明顯,表明發(fā)酵處理可以促進色氨酸側(cè)鏈轉(zhuǎn)移到蛋白分子表面,導(dǎo)致蛋白質(zhì)微環(huán)境極性的增加。同時發(fā)酵后大豆蛋白熒光強度降低,可能是由于發(fā)酵破壞了蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu),造成蛋白質(zhì)折疊,使發(fā)色基團暴露到溶劑中,產(chǎn)生了溶劑猝滅作用,造成熒光強度的降低。這與圓二色譜分析中,經(jīng)發(fā)酵后提取的大豆蛋白β-折疊含量增多的結(jié)果一致。

        2.5 發(fā)酵對豆粕蛋白暴露巰基的影響

        圖5 發(fā)酵前后對大豆蛋白暴露巰基含量的影響Fig. 5 Contents of free sulfhydryl groups of soybean protein with different fermentation times

        巰基基團是大豆蛋白中重要的功能基團,巰基基團的含量與蛋白質(zhì)變性有關(guān),其他功能特性也相應(yīng)發(fā)生變化,游離巰基可以分為埋藏于分子內(nèi)部的巰基和暴露在蛋白質(zhì)表面的巰基。由圖5可以看出,各樣品的暴露巰基含量的變化。與原始大豆蛋白相比,發(fā)酵0 h時(即經(jīng)過熱處理)提取的大豆蛋白巰基含量有所降低(P<0.05),結(jié)果與阮奇珺[30]的研究結(jié)果一致;而經(jīng)過發(fā)酵處理后提取的大豆蛋白游離巰基含量顯著升高(P<0.05),并隨著發(fā)酵時間的延長,呈現(xiàn)持續(xù)上升趨勢。L. plantarum在發(fā)酵過程中所產(chǎn)蛋白酶對大豆蛋白具有一定的降解作用,目前很多研究表明酶法改性可以提高游離巰基含量[31]。有研究表明,大豆蛋白水解物可以有效抑制巰基形成二硫鍵,具有較強的抗氧化性,阻止了游離巰基形成二硫鍵,所以游離巰基含量呈持續(xù)升高趨勢,蛋白質(zhì)變性程度加強[32]。這些結(jié)果表明,發(fā)酵處理可以破壞大豆蛋白分子的內(nèi)部結(jié)構(gòu),造成部分結(jié)構(gòu)展開,進而將隱藏于蛋白分子內(nèi)部的巰基暴露到分子表面。

        2.6 發(fā)酵對豆粕蛋白微觀結(jié)構(gòu)的影響

        圖6 大豆蛋白樣品掃描電子顯微鏡圖(×1 000)Fig. 6 SEM images of soybean protein samples (× 1 000)

        本研究利用掃描電子顯微鏡觀察大豆蛋白微觀結(jié)構(gòu)的變化,電子顯微鏡掃描結(jié)果見圖6,原始大豆蛋白(圖6A)呈現(xiàn)較大的片狀結(jié)構(gòu),且表面十分完整,光滑。而發(fā)酵0 h表面不再光滑,而有褶皺出現(xiàn);隨著發(fā)酵時間的延長,蛋白表面褶皺更為明顯,且已經(jīng)形成蜂窩狀的孔洞,隨后變成較大的凹坑,并出現(xiàn)一些蛋白殘片,這與蛋白向粒徑減小方向移動的規(guī)律一致。發(fā)酵12 h后,大豆蛋白表面結(jié)構(gòu)已經(jīng)破壞殆盡,幾乎都是被腐蝕的孔洞(圖6F)。這些結(jié)果表明,在液態(tài)發(fā)酵的過程中,微生物所產(chǎn)的蛋白酶對大豆蛋白的酶解作用明顯。發(fā)酵前期乳酸積累量較小時,乳酸菌合成的大量蛋白酶可以降解蛋白質(zhì),形成小分子的蛋白,分子結(jié)構(gòu)變得更加簡單、伸展,更易暴露。后期蛋白酶活力降低,乳酸積累量較大時,相對而言蛋白分子發(fā)生部分聚集。

        3 結(jié) 論

        乳酸菌具有良好降解大豆蛋白的能力。隨著L. plantarum發(fā)酵低溫脫脂豆粕乳的時間延長,樣品水解度和體外消化率均呈升高趨勢,可溶性蛋白粒徑分布向低粒徑方向移動,說明豆粕中大豆蛋白經(jīng)發(fā)酵后有一定程度的降解。其次,通過發(fā)酵處理后蛋白分子結(jié)構(gòu)發(fā)生了變化。發(fā)酵至3、6、9、12 h時提取的大豆蛋白與原始大豆蛋白相比,蛋白質(zhì)分子進一步展開,β-折疊含量升高,同時暴露巰基含量升高。最后,掃描電子顯微鏡觀察結(jié)果表明大豆蛋白經(jīng)發(fā)酵后表面不再光滑,出現(xiàn)腐蝕性孔洞,并且隨著發(fā)酵時間延長,孔洞更加均勻、致密。這些結(jié)果表明,經(jīng)L. plantarum發(fā)酵后,豆粕蛋白的結(jié)構(gòu)發(fā)生了改變,因而其功能特性得以提高。

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        Effects of Lactobacillus plantarum Fermentation on the Structure of Soybean Meal Proteins

        ZHANG Lili1, CUI Xian2, ZHANG Gongsheng1, JIANG Fan1, LIU Rongxu1, HAN Jianchun1,3,*
        (1. College of Food Science, Northeast Agricultural University, Harbin 150030, China; 2. College of Engineering, China Agricultural University, Beijing 100083, China; 3. The National Research Center of Soybean Engineering and Technology, Harbin 150030, China)

        In the present study, the structural changes of soybean proteins in aqueous suspension of skimmed soybean meal after being fermented by Lactobacillus plantarum were studied. With the extension of fermentation time, the degree of hydrolysis and in vitro digestibility of fermented samples were increased, and the particle sizes of soluble proteins became smaller. These results indicated that soybean proteins were degraded to a certain degree after fermentation. Simultaneously, the molecular structure of proteins in fermented samples was further unfolded, resulting in an increase in beta-sheet content and a decrease in alpha-helix content, as compared to the original soybean proteins and those sterilized at 0 h of fermentation. A red shift in the wavelength of maximum fluorescence emission was observed for the fermented soybean proteins. More sulfhydryl groups were exposed after fermentation. In addition, scanning electron microscopy (SEM) analysis showed that the surface of fermented soybean proteins was not as smooth as that of the original ones, with corrosion pores appearing.

        Lactobacillus plantarum; soybean meal; protein structure; fermentation

        10.7506/spkx1002-6630-201714012

        TS214.2

        A

        1002-6630(2017)14-0078-06

        張莉麗, 崔憲, 張功圣, 等. 植物乳桿菌發(fā)酵對豆粕蛋白結(jié)構(gòu)的影響[J]. 食品科學(xué), 2017, 38(14): 78-83.

        10.7506/

        spkx1002-6630-201714012. http://www.spkx.net.cn

        ZHANG Lili, CUI Xian, ZHANG Gongsheng, et al. Effects of Lactobacillus plantarum fermentation on the structure of soybean meal proteins[J]. Food Science, 2017, 38(14): 78-83. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/spkx1002-6630-201714012. http://www.spkx.net.cn

        2016-09-13

        國家高技術(shù)研究發(fā)展計劃(863計劃)項目(2013AA102208);國家自然科學(xué)基金青年科學(xué)基金項目(31301545);

        中國博士后基金項目(2014M560244);黑龍江省博士后基金項目(LBH-Z13042);

        省級科研院所基本科研業(yè)務(wù)費支持項目;中國博士后基金國際交流項目(20150082);

        東北農(nóng)業(yè)大學(xué)青年才俊項目(14QC42)

        張莉麗(1981—),女,副教授,博士,研究方向為蛋白質(zhì)和發(fā)酵工程。E-mail:lilizhang2011@163.com

        *通信作者:韓建春(1973—),男,教授,博士,研究方向為蛋白質(zhì)和發(fā)酵工程。E-mail:hanjianchun@hotmail.com

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