江海霞，郭棟良，李玉環(huán)，閆文亮，楊亮杰，謝麗瓊

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亞麻快速生長(zhǎng)期細(xì)胞壁形成相關(guān)基因的表達(dá)分析

江海霞，郭棟良，李玉環(huán)，閆文亮，楊亮杰，謝麗瓊

（新疆大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院，烏魯木齊 830046）

【目的】亞麻在快速生長(zhǎng)期其韌皮纖維細(xì)胞發(fā)育在SP（the snap point）點(diǎn)上下端分別經(jīng)歷細(xì)胞伸長(zhǎng)和次生細(xì)胞壁加厚2個(gè)不重疊時(shí)期。研究亞麻快速生長(zhǎng)期不同組織、不同時(shí)期、不同器官中與細(xì)胞壁形成相關(guān)的β-半乳糖苷酶（LuBGALs）、纖維素合酶（LuCESAs）等家族基因的表達(dá)譜，探討快速生長(zhǎng)期亞麻韌皮纖維細(xì)胞細(xì)胞壁的發(fā)育模式，為改善亞麻纖維產(chǎn)量提供理論依據(jù)?！痉椒ā恳陨L(zhǎng)45 d的亞麻根、莖韌皮纖維、葉為材料，用透射電鏡觀察并測(cè)量莖韌皮纖維細(xì)胞細(xì)胞壁結(jié)構(gòu)和厚度，采用實(shí)時(shí)熒光定量（qRT-PCR）方法，研究亞麻快速生長(zhǎng)期和等細(xì)胞壁形成相關(guān)的基因在亞麻韌皮纖維不同階段的表達(dá)特點(diǎn)。【結(jié)果】在SP點(diǎn)上部TOP端纖維細(xì)胞細(xì)胞壁薄，約110 nm；緊鄰SP點(diǎn)莖中部的MID區(qū)（約500 nm）和莖下部的BOT區(qū)（約650 nm），細(xì)胞壁厚度明顯增厚，細(xì)胞壁質(zhì)地均一，沒有明顯的分層現(xiàn)象，說明SP點(diǎn)中部和下部韌皮纖維細(xì)胞細(xì)胞壁已經(jīng)開始加厚但還未進(jìn)入次生壁加厚階段，與TOP明顯不同。亞麻在TOP區(qū)的表達(dá)顯著低于MID區(qū)和BOT區(qū)，表明其主要參與纖維細(xì)胞細(xì)胞壁加厚過程。而、、在TOP區(qū)表達(dá)最高，MID區(qū)次之，表明此類基因主要參與亞麻韌皮細(xì)胞伸長(zhǎng)和細(xì)胞壁重建過程。在幼嫩的TOP區(qū)表達(dá)量高，在亞麻莖較為成熟的MID區(qū)較低，說明在細(xì)胞壁形成過程中起作用。其他基因的表達(dá)量均較低。在亞麻莖幼嫩的TOP區(qū)纖維細(xì)胞中，亞麻纖維素合酶基因、、、、和都檢測(cè)出較高的表達(dá)量，且明顯高于其在MID區(qū)和BOT區(qū)的表達(dá)。其中和在MID區(qū)的表達(dá)顯著低于BOT區(qū)，其他幾個(gè)基因在MID和BOT的表達(dá)并無明顯差異。結(jié)合這些基因在亞麻快速生長(zhǎng)期不同器官中的表達(dá)模式，結(jié)果說明，亞麻中6個(gè)（、、、、和）主要促進(jìn)亞麻韌皮纖維細(xì)胞的伸長(zhǎng)。在幼莖韌皮纖維細(xì)胞中表達(dá)量高，表明亞麻莖伸長(zhǎng)和加粗需要大量能量。在亞麻細(xì)胞壁發(fā)育過程中發(fā)揮作用?！窘Y(jié)論】快速生長(zhǎng)期亞麻莖韌皮纖維細(xì)胞細(xì)胞壁沒有次生加厚過程；、、、、、、和在亞麻細(xì)胞壁細(xì)胞伸長(zhǎng)過程中起作用；主要促進(jìn)亞麻細(xì)胞壁加厚過程；和在亞麻細(xì)胞壁發(fā)育中發(fā)揮作用。

亞麻；韌皮纖維；細(xì)胞壁形成；基因相對(duì)表達(dá)量

0 引言

【研究意義】亞麻（L.）是亞麻科亞麻屬一年生草本植物，其纖維來源于成熟亞麻莖的韌皮纖維。亞麻韌皮纖維細(xì)胞起源于單個(gè)細(xì)胞，其發(fā)育在形態(tài)學(xué)上經(jīng)歷了細(xì)胞伸長(zhǎng)和次生細(xì)胞壁加厚2個(gè)不重疊時(shí)期，這兩個(gè)階段被主莖上的分界點(diǎn)（the snap point，SP）分開。植株進(jìn)入快速生長(zhǎng)期后，SP分界點(diǎn)之上為韌皮細(xì)胞伸長(zhǎng)階段，之下為細(xì)胞壁加厚階段[1]。這兩個(gè)階段分別決定了成熟亞麻韌皮纖維的長(zhǎng)度和厚度，最終影響亞麻纖維的產(chǎn)量和品質(zhì)。因此，研究與細(xì)胞壁形成相關(guān)基因在亞麻SP點(diǎn)不同發(fā)育階段細(xì)胞中的表達(dá)模式對(duì)進(jìn)一步理解亞麻纖維細(xì)胞形成、細(xì)胞壁加厚的發(fā)育規(guī)律具有重要意義?！厩叭搜芯窟M(jìn)展】β-半乳糖苷酶家族（BGALs），纖維素合成酶家族（CESAs）等在植物細(xì)胞壁形成和重建過程中起重要作用。BGAL屬于糖苷水解酶家族成員（glycosyl hydrolyse family 35，GH35），參與細(xì)胞壁纖維素形成[2-3]和細(xì)胞壁細(xì)胞伸長(zhǎng)[4]等過程。擬南芥中有17個(gè)β-半乳糖苷酶基因，其中，已證實(shí)、、、、和在細(xì)胞壁重建和擴(kuò)展中起作用[5]。β-半乳糖苷酶還與棉花纖維細(xì)胞的起始和分化相關(guān)[6]。亞麻中預(yù)測(cè)有35個(gè)，芯片和qRT-PCR方法檢測(cè)發(fā)現(xiàn)部分在纖維中表達(dá)[7]。纖維素是植物細(xì)胞壁中最重要的組分，由位于質(zhì)膜上的纖維素合酶復(fù)合體（cellulose synthase complexs，CSCs）合成。擬南芥、楊樹、棉花、豌豆、水稻等多種植物中研究發(fā)現(xiàn)纖維素合酶是多基因家族，不同組分形成不同CSC復(fù)合體，在初生細(xì)胞壁和次生細(xì)胞壁形成過程中分別起作用，作用模式現(xiàn)已基本研究清楚。擬南芥CESA1、CESA3、CESA6蛋白形成CSC參與初生壁纖維素合成[8]，缺失其中任一組分，植株致死；而、、決定次生壁纖維素合成[9]，其他基因在不同生理時(shí)期和組織中參與細(xì)胞壁形成。棉花中至少有15個(gè)基因是纖維素合成所必需的[10]，其中、、、主要參與次生細(xì)胞壁的合成，、、、在棉花初生細(xì)胞壁的合成中起作用[11]。已有研究表明楊樹中有18個(gè)基因，其中5個(gè)基因（、-A、-B、-A、-B）主要在次生細(xì)胞壁合成中發(fā)揮作用[12-16]，其他在楊樹不同生長(zhǎng)發(fā)育過程中參與細(xì)胞壁構(gòu)建過程[17-19]。通過病毒介導(dǎo)的基因沉默（VIGS）法，研究者發(fā)現(xiàn)、、、、在亞麻纖維細(xì)胞壁構(gòu)建中扮演重要角色[20]。和在亞麻快速生長(zhǎng)期、花期和綠熟期的表達(dá)高，推測(cè)這兩個(gè)基因在亞麻次生細(xì)胞壁加厚過程中起重要作用[21]?！颈狙芯壳腥朦c(diǎn)】盡管已有研究分析了亞麻不同組織器官的基因表達(dá)譜，但各個(gè)研究者關(guān)于韌皮纖維發(fā)育的芯片數(shù)據(jù)結(jié)果并不一致，亞麻快速生長(zhǎng)期與纖維合成密切相關(guān)的、等基因的表達(dá)模式還不清楚[20,22-24]。因此，和等基因家族在亞麻韌皮纖維細(xì)胞中的表達(dá)模式需進(jìn)一步分析明確?！緮M解決的關(guān)鍵問題】本研究通過qRT-PCR方法，擬探討與細(xì)胞壁形成相關(guān)的和等基因在亞麻快速生長(zhǎng)期韌皮纖維細(xì)胞伸長(zhǎng)和細(xì)胞壁加厚過程中的表達(dá)模式，為研究纖用亞麻韌皮纖維發(fā)育機(jī)制奠定理論基礎(chǔ)。

1 材料與方法

試驗(yàn)于2016年在新疆大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院植物培養(yǎng)室完成。

1.1 材料

亞麻（L.）品種范妮（FANY）。范妮亞麻種子種植在花土﹕蛭石=3﹕1的土壤中，置于光照強(qiáng)度0—10 000 lx，16 h光照/8 h黑暗，（25±2）℃溫室中培養(yǎng)45 d。

1.2 亞麻總RNA的提取和cDNA的合成

種植后21—50 d為亞麻快速生長(zhǎng)期，45 d的亞麻處于快速生長(zhǎng)期后期，莖的表皮和木質(zhì)部較易分離。取生長(zhǎng)45 d亞麻莖3段，每段約2 cm。最上端（TOP）距莖尖1—3 cm且位于分界點(diǎn)（SP）上部。第二段（MID）距莖尖4—6 cm。基部（BOT）距莖尖17—19 cm。TOP直接取莖，MID和BOT取莖的表皮（圖1-A）。每9棵亞麻莖段為一個(gè)池，每個(gè)部位設(shè)置6個(gè)重復(fù)，共18個(gè)樣品。所取亞麻器官還包括生長(zhǎng)了45 d的亞麻幼葉、成熟葉、根和基部，每個(gè)器官設(shè)置4個(gè)生物學(xué)重復(fù)，共16個(gè)樣品。

參照TIANGEN RNAprep Pure 植物總RNA提取試劑盒說明書提取總RNA，使用Thermo超微量分光光度計(jì)進(jìn)行RNA定量。參照TaKaRa第一鏈合成試劑盒說明書合成cDNA。

1.3 引物設(shè)計(jì)

根據(jù)已知擬南芥相關(guān)基因序列，通過Phytozome v9.1和Quant Prime qPCR在線工具設(shè)計(jì)qRT-PCR引物。引物如電子版附表1所示。

1.4 亞麻莖透射電鏡TEM觀察

亞麻莖TOP、MID、BOT樣品經(jīng)過固定液（2.5%戊二醛-磷酸緩沖液）固定、梯度乙醇脫水、包埋、固化后切片，切片經(jīng)3%醋酸鈾-枸櫞酸鉛雙染色后在透射電鏡下觀察拍照。每個(gè)部位設(shè)置3個(gè)生物學(xué)重復(fù)。

1.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR（qRT-PCR）檢測(cè)基因的相對(duì)表達(dá)量

以合成的cDNA為模板，（eukaryotic translation initiation factor 1）為內(nèi)參基因[7]，使用ABI PRISM 7500實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀進(jìn)行qRT-PCR 試驗(yàn)，每個(gè)樣品設(shè)置3個(gè)重復(fù)。反應(yīng)體系為20 μL；包括1 μL cDNA、10 μL iTaqTMUniversal SYBR?Green Supermix、上下游引物各0.5 μL和8 μL RNase free H2O。PCR反應(yīng)條件為95℃2 min；95℃15 s，60℃20 s，72℃15 s，40個(gè)循環(huán)。

相對(duì)表達(dá)水平數(shù)據(jù)采用2-ΔΔct法進(jìn)行分析。用GraphPad Prism 5和SPSS 19軟件對(duì)目的基因的相對(duì)表達(dá)量進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。用△CT法對(duì)相對(duì)轉(zhuǎn)錄水平進(jìn)行分析，用MeV 4.9.0（Multi Experiment Viewer，http://www.tm4.org/）作圖。

2 結(jié)果

2.1 亞麻莖不同部位韌皮纖維細(xì)胞細(xì)胞壁的發(fā)育

亞麻進(jìn)入快速生長(zhǎng)期后，株高呈現(xiàn)明顯的日變化。為了探討亞麻莖韌皮纖維細(xì)胞細(xì)胞壁在快速生長(zhǎng)期的發(fā)育變化，研究檢測(cè)了亞麻莖SP點(diǎn)上下不同部位細(xì)胞壁發(fā)育的情況。結(jié)果表明，SP點(diǎn)上部，靠近莖尖生長(zhǎng)點(diǎn)，莖部組織分化不明顯，莖的表皮與髓部無法分離。SP點(diǎn)下部靠近莖中部區(qū)域，細(xì)胞壁開始加厚，莖表皮能夠與木質(zhì)部分離，越往莖的基部，亞麻莖表皮越易剝離，韌皮纖維也越厚（圖1-A）。透射電鏡觀察亞麻韌皮纖維在快速生長(zhǎng)期細(xì)胞壁的厚度變化（圖1-B），結(jié)果表明，在SP點(diǎn)上部TOP端纖維細(xì)胞可見結(jié)構(gòu)疏松的細(xì)胞壁物質(zhì)，壁薄約110 nm；緊鄰SP點(diǎn)下部的MID區(qū)，細(xì)胞壁厚度明顯增厚，約500 nm，壁物質(zhì)密度增大；靠近莖中下部的BOT區(qū)，細(xì)胞壁厚度增大到約650 nm（表1）。盡管中下部細(xì)胞壁厚度增加，從圖中可看出，細(xì)胞壁質(zhì)地均一，沒有明顯的分層現(xiàn)象。

表1 亞麻莖在SP點(diǎn)不同區(qū)域韌皮纖維厚度

平均值±SD，N≥30。大寫字母和小寫字母分別表示在＜0.01和＜0.05水平差異顯著

Average ± SD, N≥30. Uppercase and lowercase letters indicate significance at＜0.01 and＜0.05, respectively

2.2在亞麻快速生長(zhǎng)期不同器官和莖韌皮纖維的表達(dá)分析

為了獲得β-半乳糖苷酶家族基因在亞麻快速生長(zhǎng)期細(xì)胞壁形成中的作用，研究分析了這些基因在亞麻莖SP點(diǎn)不同部位韌皮纖維細(xì)胞和根、莖、葉不同器官中的表達(dá)水平（圖2）。

2.2.1在亞麻韌皮纖維中的表達(dá)分析 圖2-A和2-C顯示了SP點(diǎn)上下不同部位表達(dá)有差異的。結(jié)果表明，在亞麻莖的3個(gè)不同部位的表達(dá)量存在極顯著差異（＜0.01），TOP區(qū)的表達(dá)顯著低于MID區(qū)和BOT區(qū)（＜0.01），表明它主要促進(jìn)韌皮纖維細(xì)胞壁加厚過程。而、、在TOP區(qū)表達(dá)最高，MID區(qū)次之，表明此類基因主要參與亞麻韌皮細(xì)胞伸長(zhǎng)和細(xì)胞壁形成過程。在幼嫩的TOP區(qū)表達(dá)量高，麻莖較為成熟的MID區(qū)較低（＜0.05）說明主要參與細(xì)胞壁細(xì)胞伸長(zhǎng)過程。、在亞麻莖的表達(dá)都較低，但在TOP區(qū)的表達(dá)極顯著高于MID和BOT區(qū)（＜0.01），說明這兩個(gè)基因可能在亞麻韌皮纖維細(xì)胞伸長(zhǎng)過程中起作用。、、、在莖韌皮纖維中都具有較高的表達(dá)水平，說明在細(xì)胞壁加厚過程中多個(gè)共同作用。

2.2.2在亞麻不同器官中的表達(dá)分析 為了進(jìn)一步分析基因家族的表達(dá)模式，研究檢測(cè)了基因在亞麻根、莖、葉3個(gè)不同器官中的表達(dá)情況（圖2-B和2-D）。結(jié)果顯示和在幼葉中、成熟葉和根中的表達(dá)極顯著低于BOT區(qū)（＜0.001）。在幼葉和成熟葉中的表達(dá)極顯著高于BOT區(qū)（＜0.001），但在根中的表達(dá)極顯著低于BOT區(qū)（＜0.001）。和具有相似的表達(dá)模式，在幼葉中的表達(dá)顯著高于BOT（＜0.001），根和成熟葉的表達(dá)量顯著低于BOT（＜0.01）。和在幼葉、成熟葉、根中的表達(dá)顯著高于對(duì)照（＜0.05）。

盡管BGALs家族基因在亞麻中預(yù)測(cè)有30多個(gè)成員，但多數(shù)在麻莖韌皮纖維的生長(zhǎng)發(fā)育過程中處于不表達(dá)狀態(tài)（數(shù)據(jù)未顯示）。在BOT和MID的表達(dá)較高，而在根中表達(dá)較低；在幼莖、幼葉和成熟葉中的表達(dá)量高，而在根中的表達(dá)低；、在幼嫩部位（TOP和YL）的表達(dá)高；在所有組織的表達(dá)都較高；和在所有研究組織中的表達(dá)都較低。說明BGALs家族基因的表達(dá)具有明顯的組織器官差異。

2.3在亞麻快速生長(zhǎng)期不同器官和莖韌皮纖維中的表達(dá)分析

擬南芥、楊樹、棉花等植物中基因有多個(gè)組合，分別在不同的細(xì)胞壁發(fā)育階段起作用[8, 11-19]。研究探討了該家族基因在亞麻快速生長(zhǎng)期細(xì)胞壁形成過程中的表達(dá)模式（圖3）。

2.3.1在亞麻韌皮纖維中的表達(dá)分析 圖3-A和圖3-C結(jié)果顯示在麻莖幼嫩的TOP區(qū)纖維細(xì)胞中，、、、、和都檢測(cè)出較高的表達(dá)量，且明顯高于其在MID區(qū)和BOT區(qū)的表達(dá)（＜0.001）。其中和在MID區(qū)的表達(dá)顯著低于BOT區(qū)（＜0.05），其他幾個(gè)基因在MID和BOT的表達(dá)并無明顯差異。上述結(jié)果說明亞麻中6個(gè)基因（、、、、和）主要促進(jìn)亞麻韌皮纖維細(xì)胞的伸長(zhǎng)。在TOP和MID的表達(dá)極顯著高于BOT區(qū)（＜0.01），而在TOP和MID的表達(dá)無顯著性差異。在莖不同部位的表達(dá)無顯著性差異。和不僅在亞麻TOP區(qū)的表達(dá)較高，在BOT和MID區(qū)也具有較高的表達(dá)，表明這兩個(gè)基因也參與細(xì)胞壁加厚過程。

2.3.2在亞麻不同器官中的表達(dá)分析 圖3-B和3-D表明在纖維素合酶基因家族中，除了和，其余的成員都在幼葉中有顯著高表達(dá)（＜0.01）。、、和等基因在根中的表達(dá)較低，達(dá)到極顯著水平（＜0.001），而在根中的表達(dá)與莖BOT區(qū)中的表達(dá)沒有顯著差異，而在幼葉和成熟葉中的表達(dá)極顯著低于根和莖BOT區(qū)（＜0.001）。

LuCESA1、LuCESA3、LuCESA9和LuCESA10在莖和葉中都表達(dá)，在TOP和YL的表達(dá)更高。結(jié)合纖維素合成酶復(fù)合體的模式，LuCESA1、LuCESA3、LuCESA9和LuCESA10可能參與初生壁的形成。

2.4和在快速生長(zhǎng)期不同組織和莖韌皮纖維中的表達(dá)分析

蔗糖合酶（SuSy）和木聚糖水解酶（XTH）在細(xì)胞壁形成與加厚過程中起作用。本研究檢測(cè)了和的表達(dá)情況（圖4）。結(jié)果顯示在亞麻幼嫩組織中相對(duì)表達(dá)量較高（圖4-A），在莖的TOP區(qū)和幼葉中的表達(dá)顯著高于其他部位。在莖、葉和根中的表達(dá)都較低（圖4-B），盡管在亞麻麻莖MID區(qū)的表達(dá)顯著高于TOP區(qū)（＜0.05，圖4-C），但在幼葉和根中明顯比在莖中活躍（圖4-D）。表明和在亞麻細(xì)胞壁細(xì)胞形成和增大過程中起作用。

盡管細(xì)胞壁形成相關(guān)基因、、、、和在不同部位和器官中的表達(dá)量較低，但其表達(dá)具有顯著性差異，研究認(rèn)為其在亞麻纖維發(fā)育表達(dá)水平上仍有一定的生物學(xué)意義。

3 討論

亞麻是研究韌皮纖維細(xì)胞發(fā)育理想的模式植物[25]。本研究通過觀察亞麻莖纖維細(xì)胞細(xì)胞壁的發(fā)育，發(fā)現(xiàn)亞麻莖SP點(diǎn)基部和中部在細(xì)胞壁形態(tài)上沒有明顯區(qū)別，只有細(xì)胞壁的加厚，沒有出現(xiàn)明顯的分層，說明此時(shí)細(xì)胞還未進(jìn)入次生細(xì)胞壁加厚階段。國(guó)內(nèi)研究認(rèn)為亞麻纖維細(xì)胞壁加厚階段在現(xiàn)蕾期到綠熟期[26-27]，而Gorshkova等[28]認(rèn)為快速生長(zhǎng)期伴隨次生細(xì)胞壁加厚過程，本文的結(jié)果表明至少在快速生長(zhǎng)期后期，仍未出現(xiàn)次生壁加厚情況。

β-半乳糖苷酶是糖苷水解酶家族成員，廣泛分布于植物組織中，在植物果實(shí)生長(zhǎng)成熟[29-30]過程中研究較多[31]。BGALs家族基因在亞麻中預(yù)測(cè)有30多個(gè)成員，多數(shù)在亞麻細(xì)胞壁發(fā)育過程中的功能并不清楚[7]。在亞麻莖韌皮纖維細(xì)胞中，發(fā)現(xiàn)多個(gè)在幼嫩的莖中高表達(dá)。結(jié)合這些基因在幼葉、成熟葉、根中的表達(dá)（圖2-D）情況，認(rèn)為在亞麻快速生長(zhǎng)期，主要在SP點(diǎn)下部表達(dá)，在全株的表達(dá)較高，主要在幼葉和幼莖（SP點(diǎn)上部）起作用，與前人研究結(jié)果一致[7]。不僅在莖中表達(dá)，在葉中表達(dá)更高，在幼莖、幼葉和根中有較高的表達(dá)量，和在開花前各部位表達(dá)都較低，與NEIL HOBSON[7]的結(jié)果有差異。前人根據(jù)BGAL蛋白序列將LuBGAL1、LuBGAL3、LuBGAL5、LuBGAL6和LuBGAL9劃分在A1族[7]，認(rèn)為這些半乳糖苷酶在亞麻韌皮纖維發(fā)育中有重要作用，本研究證實(shí)了這個(gè)推論。

纖維素合酶基因在亞麻中的研究主要從2012年亞麻全基因組測(cè)序完成后開始，通過擬南芥、楊樹等植物中的同源序列分析，推測(cè)亞麻中有10—16個(gè)基因可能參與不同階段細(xì)胞壁合成過程。本研究結(jié)果顯示，、、、主要促進(jìn)韌皮纖維細(xì)胞初生細(xì)胞壁的形成，與前人報(bào)道相同[32]。已有研究報(bào)道、和在木質(zhì)部中參與亞麻次生細(xì)胞壁的合成[23,32]，亞麻外莖組織中，、和在亞麻韌皮纖維細(xì)胞的表達(dá)模式與前人結(jié)果一致[23]。結(jié)合三者的表達(dá)情況和莖的橫切，認(rèn)為亞麻快速生長(zhǎng)期的后期，盡管細(xì)胞壁沒有明顯分層，但與次生壁相關(guān)的基因已經(jīng)開始表達(dá)。、在CESA家族中處于同一亞族，親緣關(guān)系非常近[21, 23, 32]，由于在檢測(cè)的組織中它們的表達(dá)量都較低，因此認(rèn)為、可能在亞麻韌皮纖維細(xì)胞發(fā)育過程中出現(xiàn)功能冗余。

在植物細(xì)胞形成和增大過程中，蔗糖合酶（SuSy）為細(xì)胞壁纖維素合成提供底物UDPG，糖苷水解酶家族GH16中的木聚糖水解酶（XTH）[33]催化木葡聚糖分子的斷裂和重新連接，參與細(xì)胞壁的合成或松弛過程，二者在初生壁和次生壁的合成中起重要作用。在亞麻幼嫩組織中相對(duì)表達(dá)量較高說明在新生細(xì)胞中提供底物；同時(shí)，在麻莖中的表達(dá)量高于成熟葉和根，說明在亞麻快速生長(zhǎng)期，莖是重要的代謝庫，需要更多的UDPG參與到韌皮纖維細(xì)胞壁加厚的過程。盡管在亞麻麻莖MID區(qū)的表達(dá)顯著高于TOP區(qū)（＜0.05），但在幼葉中表達(dá)量更高，說明可能主要在幼葉中參與細(xì)胞壁的形成。和的表達(dá)與莖發(fā)育變化呈現(xiàn)一致性。

前人對(duì)亞麻韌皮纖維發(fā)育的研究，在研究材料、取材時(shí)期和取材部位上多有不同[20,22-23]，不同研究者的結(jié)果存在差異。研究同一時(shí)期，同一植株的不同部位細(xì)胞壁形成相關(guān)基因的表達(dá)，為亞麻快速生長(zhǎng)期韌皮纖維細(xì)胞的發(fā)育提供基本的理論支持。

4 結(jié)論

4.1 快速生長(zhǎng)期亞麻莖韌皮纖維細(xì)胞厚度TOP＜MID＜BOT區(qū)，SP點(diǎn)下部細(xì)胞壁沒有次生加厚過程。

4.2 多個(gè)共同參與亞麻細(xì)胞壁的形成，其中、、和主要促進(jìn)亞麻細(xì)胞壁細(xì)胞伸長(zhǎng)，主要參與亞麻細(xì)胞壁加厚過程。

4.3 LuCESA1、LuCESA3、LuCESA9、LuCESA10參與初生壁的形成。

4.4和的表達(dá)與莖發(fā)育變化呈現(xiàn)一致性。

References

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（責(zé)任編輯 李莉）

附錄1 引物序列

Tabel 1 Primersequences

基因名稱 Genes 基因代碼 The genetic code引物序列Primersequences LuCESA1Lus10018902FGACTAATGGCCAGCAGATTTCGG Lus10018902RTCGAGATAAGGAGACGACTGCAC LuCESA3Lus10007538FATCTCCTGGACGGTACTCGATG Lus10007538RTCTCCCAGTCTAATGGTTGCTCTG LuCESA4Lus10008225FTGCAGAATGGACAGAACGAGTGG Lus10008225RGTTGTCTGGCATCAGCGGTTAAG LuCESA5Lus10003525FGGCTATGAATGCACTGCGATGG Lus10003525RTTAATGAGGAGGTCGTGGCTCTGG LuCESA6Lus10002940FCTGTTCTGCGGGTCTAGGAAGAAC Lus10002940RTCCAGCCAACCTGTTCAACTTC LuCESA7Lus10007296FGGTTTGCTTTCTCTTGGGTGCTG Lus10007296RACCTGGCCTTTCAAACCTTGC LuCESA8Lus10029245FGGTTTGCTTTCTCTTGGGTGTTGG Lus10029245RACCTGGCCTTTCAAACCTTGC LuCESA9Lus10002939FCAGAGAGGCCATCCAAGTTATCAG Lus10002939RCGAACCATATATCCAGCCAACCTC LuCESA10Lus10028597FTGAAGCAGGAGAAGGGAATGATGC Lus10028597RGAGCATCGTCAGCCATTTGAAGC LuSuSyLus10030176FTAGATTTCGGGATGGCCGTTTG Lus10030176RACGGATGACAACATTGCATTGCC LuXTH4Lus10011052FCCACCTCGATAACTACACTGGAAC Lus10011052RTCCACCAACCATCTTGATGTGC LuBGAL1 Lus10008974FACTCATCGGTAGCGCTTATGGC Lus10008974RGAAGTGTAAGCCAACATTCGCAAG LuBGAL3 Lus10006009FTGCATTCCTGGCGAACTACGAC Lus10006009RGCACTCTCGGAGCAGAAACCTTTG LuBGAL5 Lus10000701FAGCTGTCATGCCTTGCACTCATAC Lus10000701RACCAATTCTGTCCAACACAAAGCC LuBGAL6 Lus10015625FGGTGAACATCTGAGCCTTCATTCC Lus10015625RGCAGGAGCATTGAATGTGGTCTTG LuBGAL9 Lus10024292FTAGCGGTTGGATTGCCGAATG Lus10024292RACCATCTGTGGCCTGTCAAGTC LuBGAL20 Lus10003343FAGCTGTTTGCTTCTCAGGGAGAC Lus10003343RTTGAGCAACGGCCATTTGAGC LuBGAL22 Lus10025108FACCGAGAATTGGTCTGGATGGTG Lus10025108RAGTTGACCGGTGAGGATTAGTGG LuETIF1 Lus10015124 FGATCCAGCTTCAAGGTGACCAG Lus10015124 RTCACAATTCCAGCCTGAACGAG

The Expression of Genes Related to Cell Wall Formation at Fast growth Stage in Flax(L.)

JIANG HaiXia, GUO DongLiang, LI YuHuan, YAN WenLiang, YANG LiangJie, XIE LiQiong

(College of Life Science and Technology, Xinjiang University, Urumqi 830046)

【Objective】The development of flax bast cells is separated into two non-overlapping phases, cell elongation and secondary cell wall thickening phases which are splitted by the snap point at rapid-growing phase. Genes of β-glycosyl hydrolyse (LuBGALs) family and Cellulose synthase (LuCESAs) family focused on the role of cell wall formation in flax () fibres were analyzed in order to gain a deeper insight into the development of cell walls in rapid growth of flax.【Method】The microstructure of the cell walls at snap point (SP) of stem was studied by transmission electron microscope.andwere analyzed by quantitative real-time PCR (qRT-PCR) in the bast fiber of stem, leaves and root of flax at 45 days after germination. 【Result】The width of cell walls at top of SP (TOP) was 110 nm. Though they at MID were about 500 nm and BOT about 650 nm under the SP were thicker than theirs in TOP, it was difficult to find different layers in the thicken cell wall. It showed that the cell walls above the SP were undergone cell elongation and below were thickening but not secondary cell walls thickening. The expression ofat TOP was significantly lower than it’s in MID and BOT, indicating that it was mainly involved in cell wall thickening of fiber cell in the stem. While the expressions of,,andat TOP were the highest and the followed was MID zone, which showed that those genes mainly worked in cell wall reconstructure and bast fiber elongation.was higher at TOP and lower at MID than other genes, which demonstrated thatplayed a role in cell wall formation. And the expression of othergenes were low.,,,,, andhighly expressed in TOP zone and were significantly higher than their expression in MID and BOT. The expression ofandMID was lower than theirs in BOT and there was no significant difference between MID and BOT of othergenes. The results suggested that thesegenes played an important role in cell elongation of flax bast fiber combining their expression in different organs. The character ofexpression indicated that a lot of UDPG was required in cell elongation and thickening of bast fiber.played a role in cell wall development of flax.【Conclusion】The cell walls of bast fiber had not processed secondary thickening in the stem at fast growth stage.,,,,,,, andmainly promoted cell elongation of cell wall in flax.played an important role in cell wall thickening.andalso took part in the development of cell wall.

flax(L.); bast fiber; cell wall formation; gene expression

2016-11-30；接受日期：2017-03-17

國(guó)家自然科學(xué)基金（31160056/C020408）

江海霞，E-mail：738230018@qq.com。通信作者謝麗瓊，E-mail：picea@sina.com