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        實時熒光PCR檢測肉制品中羊源性成分

        2017-07-05 11:00:02陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院孫麗君陜西省人民醫(yī)院中心實驗室樊鄭玉紅陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院
        食品安全導(dǎo)刊 2017年15期
        關(guān)鍵詞:檢測方法

        □ 舒 靜 陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院 孫麗君 陜西省人民醫(yī)院中心實驗室樊 成 嚴 燁 王 瑛 鄭玉紅 陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院

        實時熒光PCR檢測肉制品中羊源性成分

        □ 舒 靜 陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院 孫麗君 陜西省人民醫(yī)院中心實驗室
        樊 成 嚴 燁 王 瑛 鄭玉紅 陜西省產(chǎn)品質(zhì)量監(jiān)督檢驗研究院

        為了建立一種快速檢測肉制品中羊源性成分的方法,本文根據(jù)羊特異性線粒體DNA片段,設(shè)計合成引物,通過檢測引物的特異性及方法靈敏性,建立肉制品中羊源性成分實時熒光PCR檢測方法。

        羊源性成分;肉制品;實時熒光PCR方法

        據(jù)報道,某些不法企業(yè)和個人利用雞肉或鴨肉等廉價肉冒充牛肉、羊肉,在熟食加工時會加入香料、調(diào)味品等食品添加劑以掩蓋這種造假行為,由于肉制品加工后不能用肉眼判斷其種屬,使假冒產(chǎn)品更容易被市場銷售,極大的侵犯了市場消費者的合法權(quán)益[1]。食品安全是關(guān)乎大家的重大民生問題,食品摻假問題不僅涉及經(jīng)濟、營養(yǎng)價值和食品安全等方面,牛羊肉的摻假而且涉及群眾宗教信仰。所以,鑒定肉制品物種源性是食品安全檢測中的必要檢測。

        目前,針對肉類制品中的物種鑒別主要方法有高效液相色譜(HPLC)[2]、等電聚焦電泳(IEF)[3]、酶聯(lián)免疫測定(ELISA)[4]等方法,但都因存在周期長、靈敏度低、不能檢測熟肉加工品等缺點而未被廣泛使用[5]。實時熒光PCR相比于一般PCR,檢測時間短,無需瓊脂糖凝膠電泳,避免產(chǎn)物污染和EB對實驗人員的危害,具有快速簡便的特點。而且無論是生熟肉還是其加工品,均可進行檢測,實時熒光PCR技術(shù)已經(jīng)逐步取代了一般的PCR方法[6],已逐步成為肉類成分鑒別的主流技術(shù)[7]。本文根據(jù)羊線粒體特異基因序列設(shè)計特異性的引物,用實時熒光PCR方法檢測對肉制品中羊源性成分,為食品市場快速檢測肉制品中的羊源性成分構(gòu)建技術(shù)平臺。

        1 材料與方法

        1

        .1 材料

        1.1.1 標本

        本試驗的標本羊肉干、羊肉卷、生羊肉、熟羊肉等肉制加工品,均來源于當?shù)啬吵小?/p>

        1.1.2 主要試劑

        Tissue DNA Kit(OMEGA)和熒光PCR酶SYBRⅡ(TAKARA)。

        1.1.3 主要儀器

        熒光PCR儀ABI7500(life)、漩渦振蕩器(大龍興創(chuàng))、NANODROP 2 000C(Thermo scientific公司)和離心機(大龍興創(chuàng))。

        1.2 方法

        1.2.1 引物設(shè)計與合成

        根據(jù)GenBank中查詢的羊源性特異性DNA序列,內(nèi)參引物為動物共同的一段保守序列,設(shè)計合成一對對特異性引物及一對內(nèi)參引物,由華大公司合成,其序列見表1。

        1.2.2 模板DNA的提取

        模板DNA抽提按照OMEGA組織DNA提取試劑盒中的說明書進行抽提。

        1.2.3 模板DNA含量的測定

        取1 μL模板DNA,利用紫外分光光度計檢測模板DNA,A260/A280比值檢測在1.8~2.0,則證明抽提的核酸DNA模板質(zhì)量合格。

        1.2.4 多重實時熒光PCR擴增體系及條件

        羊源性成分檢測體系包含SYBRⅡ10 μL、模板1 μL、羊上、下游引物各0.5 μL、ddH2O 8 μL;內(nèi)參檢測PCR體系包含SYBRⅡ 10 μL、模板1 μL、內(nèi)參上、下游引物各0.5 μL、ddH2O 8 μL。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性10 min,95 ℃變性30 s,60 ℃退火45 s,72 ℃延伸45 s,35個cycels,PCR溶解曲線條件為60 ℃ 15 s,90 ℃ 15 s。

        1.2.5 引物特異性試驗

        選取抽提得到的豬、牛、羊、雞、鴨、鵝、驢和馬的DNA,分別用羊引物進行多重實時熒光PCR方法檢測,判定羊引物的特異性。

        1.2.6 方法靈敏度試驗

        將抽提的羊肉DNA進行濃度稀釋至每個模板羊肉的含量依次為20%、10%、5%、2%和1%(V︰V)5個稀釋度的模板DNA進行羊源性成分的檢測,驗證方法的靈敏度。

        1.2.7 羊源性多重實時熒光PCR方法的應(yīng)用

        利用本文方法檢測市場上的羊肉加工樣品,檢測結(jié)果說明,部分與標注不符。

        2 結(jié)果

        2.1 結(jié)果判讀

        陽性結(jié)果判定:在陰性對照無熒光信號和模板內(nèi)參基因Ct值小于25的條件下,羊源性檢測體系中有熒光信號并且Ct值小于30,證明樣本有羊源性成分,Ct大于30證明無羊源性成分。

        2.2 特異性試驗

        利用羊源性引物對豬、牛、羊、雞、鴨、鵝、驢和馬的8種肉制品樣本進行檢測,結(jié)果見表2。檢測結(jié)果顯示,只有羊肉制品樣本的結(jié)果為陽性,其余物種的肉制品樣本均為陰性,由此可證明此方法引物特異性比較好。

        2.3 靈敏度試驗

        用紫外分光光度計檢測羊肉DNA濃度,以初始約50 ng/μL進行稀釋,每個模板中羊肉的含量依次為20%、10%、5%、2%和1%,靈敏度試驗重復(fù)三次。羊源性成分擴增曲線圖,如圖1所示。PCR檢測結(jié)果說明,羊肉含量為1%時仍可檢測出。

        表1 引物序列表

        表2 特異性檢測表

        圖1 羊源性成分擴增曲線圖(從左到右依次為20%、10%、5%、2%和1%)

        表3 多重實時熒光PCR檢測羊源性成分應(yīng)用表

        2.4 多重實時熒光PCR檢測羊源性成分應(yīng)用

        利用建立的羊源性成分PCR檢測方法,檢測市售的某些羊肉產(chǎn)品。檢測結(jié)果中,某些產(chǎn)品與標述不符合,檢測結(jié)果見表3。

        3 結(jié)論

        本試驗通過內(nèi)參基因的檢測可以避免由于模板原因而造成的結(jié)果誤判,減少了假陰性的原因,如果試驗結(jié)果擴增曲線不明顯或者CT值在30,即可重復(fù)實驗檢測。目前,基于PCR和實時熒光PCR方法檢測飼料和肉制品中的動物源性成分已經(jīng)得到了較多的關(guān)注和研究[8-12,5],此方法彌補了普通PCR電泳污染及費時的問題,為食品監(jiān)管部門加強食品安全管理、打擊肉制品市場上的以廉價肉冒充羊肉的現(xiàn)象提供了強有力的技術(shù)支持[13]。通過對市售羊肉制品的檢測證明,此方法與行標方法檢測結(jié)果一致,檢測結(jié)果說明在羊肉卷和羊肉干中摻假的現(xiàn)象比較多,同時該方法也為肉制品中各動物源性成分含量的檢測奠定了基礎(chǔ),保證消費者的健康及保護其合法權(quán)益。綜合分析此方法快速簡便經(jīng)濟,基本可以滿足市場對羊肉制品檢測的要求。

        [1]何瑋玲,張馳,楊靜,等.食品中4種肉類成分多重PCR的快速鑒別方法[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2012(9):1873-1880.

        [2]Aristoy M C, Toldrá F.Histidine dipeptides HPLC-based test for the detection of mammalian origin proteins in feeds for ruminants[J].Meat Sci,2004(2):211-217.

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        陜西省科技計劃項目(編號:2016KTCQ03-04)。

        舒靜(1981-),女,陜西西安人,本科,工程師,主任。研究方向:食品與微生物檢驗。

        舒靜。

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