吳瓊,劉昭貴,王小中
(1、南昌大學第二附屬醫(yī)院檢驗科,江西南昌330006;2、贛州市南康區(qū)婦幼保健院,江西南康341400)
惡性血液病患者化療前后淋巴細胞亞群分析
吳瓊1,劉昭貴2,王小中1
(1、南昌大學第二附屬醫(yī)院檢驗科,江西南昌330006;2、贛州市南康區(qū)婦幼保健院,江西南康341400)
目的探討惡性血液病患者化療前后TBNK淋巴細胞亞群檢測的臨床意義。方法采用流式細胞儀對兩組患者進行外周血TBNK淋巴細胞亞群檢測,分析化療前后的變化,觀察組患者的免疫功能變化及其與病情進展之間的聯(lián)系和病情的變化及預后。結果分析發(fā)現,觀察組患者的CD3+、CD4+、CD4+/CD8+、CD16+56+指標均低于對照組,且急性患者的CD4+/CD8+最低為(0.97±0.32)。隨著病情的緩解,指標都在升高并恢復至正常水平,緩解后各項指標和對照組比較,并無顯著差異,無統(tǒng)計學意義(P<0.05)。從觀察組的40例患者治療前后的TBNK淋巴細胞比較,治療后的惡性血液病患者CD3+、CD4+、CD4+/ CD8+、CD16+56+指標有明顯的提高,前后差異顯著有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。結論化療前,惡性血液病患者的TBNK各項指標異常,化療后得到有效的緩解,表明通過檢測TBNK淋巴細胞亞群有助于了解患者的免疫功能和病情的變化情況,值得推廣應用。
惡性血液?。换?;TBNK淋巴細胞亞群
惡性血液病是一類原發(fā)于造血系統(tǒng)的重大疾病,在所有惡性腫瘤發(fā)病率排第6位,嚴重威脅著人類健康[1]。目前惡性血液病的主要治療手段是化療,但化療藥物通?!皵澄也环帧?,在殺死病變細胞的同時,也會殺傷人體正常免疫細胞。感染是惡性血液病患者死亡的重要原因,研究表明[2]:化療會對機體的免疫系統(tǒng)產生損害,導致患者免疫力下降,增加其發(fā)生感染的機率。如何在化療、免疫調節(jié)劑應用和預防感染三者中找到一個平衡點,對患者進行恰如其分的治療,是臨床工作者經常碰到的問題,這需要臨床醫(yī)生確切地掌握每個患者的免疫情況。本研究旨在通過對TBNK淋巴細胞亞群的檢測,了解患者的免疫功能變化及其病情進展之間的聯(lián)系,并為臨床醫(yī)生提供重要的預后信息,現報告如下。
1.1 研究對象觀察組選擇2014年3月至2015年3月我院接受診治的惡性血液初治病患者共40例,男27例,女13例,年齡20~65歲,平均年齡35.22±2.1歲。均根據MICM確診為急慢性白血病,其中,急性白血病22例,慢性白血病5例、惡性淋巴瘤9例、多發(fā)性骨髓瘤4例。對照組選擇同時期到我院健康體檢者30例,其中,男16例,女14例,年齡22~67歲,平均年齡35.31±2.3歲。所有病例診斷均符合血液病診斷及療效標準[3],兩組的年齡、性別等一般資料的差異,均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。
1.2 儀器和試劑BD Multitest IMK試劑盒:內含兩瓶試劑,一瓶是multitest CD3-FITC/CD8-PE/ CD45-Percp/CD4-APC(克隆號:SK7,SK1,2D1,SK3)。一瓶是multitest CD3-FITC/CD16+56-PE/ CD45-Percp/CD19-APC(克隆號:SK7,B73.1,NCAM16.2,2D1,SJ25C1)。溶血素為BD FACS Lysing Solution;采用BD FACSCalibur流式細胞儀檢測,BD MultiSET軟件分析數據。以上試劑及儀器均由美國BD公司提供。
1.3 方法檢測時間和次數:惡性血液病患者分別采用DA、DVP、CHOP、COMP等方案治療,21d為一周期。所有病例及正常對照組均空腹抽晨血,檢測惡性血液病患者治療前、有效緩解、未緩解、化療緩解后鞏固治療各階段及正常人的外周血分別3次測定TBNK淋巴細胞亞群。
標本收集:⑴收集正常人外周血和各類惡性血液病初治患者外周血,無菌條件下采集以EDTA-K2抗凝2ml;⑵收集化療有效緩解的患者與未能緩解患者化療前后外周血,無菌條件下采集以EDTA-K2抗凝2ml;⑶收集化療緩解后各類惡性血液病患者鞏固治療各階段外周血,無菌條件下采集以EDTA-K2抗凝2ml。
流式細胞儀檢測:取上樣管2支,各加入EDTA-K2抗凝血100μl,分別加入熒光標記的抗體20μl,振蕩混勻后避光孵育20min,加入2ml溶血素,振蕩混勻,溶血10min,離心5min,用0.1mol/L pH7.0 PBS洗滌2遍,再加入500μl的PBS重懸細胞,上機檢測。打開MultiSET軟件,用門圈出淋巴細胞群,計數10000個細胞,檢測淋巴細胞中各標記細胞的百分率。
1.4 統(tǒng)計學分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件對數據進行分析和處理,計量資料以均數±標準差(x±s)表示,檢測數據采用配對t檢驗。計數資料采用χ2檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 兩組患者外周血TBNK淋巴細胞亞群治療前后的檢測變化比較從觀察組的40例患者治療前后的TBNK淋巴細胞比較,治療后的惡性血液病患者CD3+、CD4+、CD4+/CD8+、CD16+56+指標有明顯的提高,前后差異顯著有統(tǒng)計學意義(P<0.05),具體數據見表1。
2.2 惡性血液病患者和健康人群TBNK淋巴細胞分布特點觀察組的CD3+、CD4+、CD4+/CD8+、CD16+56+指標均低于對照組,且急性患者的CD4+/CD8+最低為(0.97±0.32)。隨著病情的緩解,指標都在升高并恢復至正常水平,緩解后各項指標和對照組比較,并無顯著差異,無統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
表1 兩組患者外周血TBNK淋巴細胞亞群治療前后的檢測變化比較(x±s)
目前最常用的檢測淋巴細胞亞群,包括T淋巴細胞(CD3+)、B淋巴細胞(CD19+)、NK細胞(CD16+56)、輔助性T淋巴細胞(CD3+CD4+)、抑制性T淋巴細胞(CD3+CD8+)[4]。CD4+細胞可協(xié)助B細胞分泌抗體和調節(jié)其他T細胞的免疫應答,能夠識別血液腫瘤細胞分泌的可溶性抗原,釋放IL-2,IFN-γ,IL-4等細胞因子,激活巨噬細胞和NK細胞,促進B淋巴細胞活化和抗體的形成,從而起到抗腫瘤作用[5];CD8+細胞常表現細胞毒活性,是主要的細胞毒效應細胞[6];NK細胞是機體防御腫瘤的天然屏障,腫瘤細胞能被它直接或者分泌出細胞因子而殺傷,腫瘤發(fā)展和發(fā)生轉移的原因往往是因為其活性的降低[7]。分泌抗體和介導體液免疫應答是B淋巴細胞的主要功能[8]。活化的B淋巴細胞可以分泌抗原,誘導T細胞免疫和巨噬細胞補體系統(tǒng)一起殺死腫瘤細胞[9]。
胸腺肽是臨床上應用很廣的一種免疫調節(jié)劑,能誘導T細胞的分化成熟,增加細胞因子的生成和增強B細胞的抗體應答,起到維持機體免疫平衡,提高機體抵抗疾病的能力[10,11]。已有報導證實[12]:化療的同時使用胸腺肽可以保護增強免疫細胞的活性,保證化療的如期進行,還能調動提高機體免疫活性細胞達到機體免疫功能良性循環(huán)。
正常情況下機體免疫狀態(tài)的維持,靠各種免疫細胞之間相互作用,使各細胞的指標達到一種穩(wěn)定的狀態(tài)[13]。近年的相關研究表明[14],Th(輔助性T淋巴細胞)及Ts(抑制性T淋巴細胞)的平衡是維持機體免疫內環(huán)境穩(wěn)定的一個中心環(huán)節(jié),其比值可直接反映機體細胞免疫功能狀態(tài),當Th/Ts比值很低時,機體細胞免疫處于受抑制的狀態(tài),增加機體發(fā)生感染的概率[4],同時也預示著患者的預后較差,容易發(fā)生腫瘤轉移[15]。
本次研究證明,惡性血液病患者TBNK細胞比值及其功能和正常的健康人群相比更低,如與免疫功能有關的CD3+CD8+指標,其功能低下會導致腫瘤的持續(xù)生長;CD4+、CD16+56+細胞在體內抗瘤免疫中具有重要作用。經化療后可以改善CD3+、CD4+、CD4+/CD8+、CD16+56+各項指標的比值,緩解后免疫功能恢復到正常水平。
綜上所述,治療前的惡性血液病患者和治療后的惡性血液病患者TBNK淋巴細胞的比值有明顯差異,檢測TBNK淋巴細胞亞群的比值,對評價治療后的療效、患者的免疫功能變化及其與病情進展之間的聯(lián)系和預后方面有著一定的臨床價值,值得廣為應用。
[1]顧科峰,陳琳軍,鄧曉輝,等.惡性血液病患者外周血NK細胞數量變化及意義[J].實用醫(yī)學雜志,2013,29(13):2154-2157.
[2]鄭淑霞,謝若騰.惡性血液病患者外周血NK細胞數量變化及意義[J].中國實驗血液學雜志,2015,23(4):1133-1137.
[3]張之南,沈悌.血液病診斷及療效標準[M].北京:科學出版社,2008.
[4]程傳耀,吳大鵬,楊柳,等.晚期惡性腫瘤患者化療前后T細胞亞群變化的臨床分析[J].腫瘤基礎與臨床,2011,24(5):432-434.
[5]黃菊,王宙政,韓艷霞,等.急性白血病患者外周血T淋巴細胞亞群及NK細胞表達情況分析[J].浙江醫(yī)學,2013,(17):1596-1598.
[6]江虹,李菊湘.T淋巴細胞亞群在惡性腫瘤患者外周血中的變化[J].檢驗醫(yī)學與臨床,2010,7(13):1361-1362.
[7]劉長安,孫武,邵玉霞,等.大腸癌患者外周血T細胞亞群和NK細胞活性檢測的臨床意義[J].實用癌癥雜志,2001,16(5):476.
[8]Baumgarth N,Chen J,Herman OC,et al.The role of B-1 and B-2 cells in immune protection from influenza virusinfection[J].Curr Top Microbiol Immunol,2000,252:163-169.
[9]何金媛,賈祝霞,蔡曉輝,等.NKG2D在細胞因子誘導的殺傷性細胞(CIK)抗血液腫瘤細胞的作用[J].中國實驗血液學雜志,2013,21(6):1380-1384.
[10]Chakravarti B,Abraham GN.Ageing and T-tell-mediated immunity[J].Mechanisms Ageing Dev,1999,108:183-206.
[11]Merlino PG,Marsh JA.Evidence for the direct action of thymulinon avian NK cells[J].Dev Comp Immunol,2001,25:337-343.
[12]潘瑩,王會平,張翠,等.流式細胞術在侵襲性NK細胞白血病診斷中的價值一例報道并文獻復習[J].白血病淋巴瘤,2014,23 (1):38-44.
[13]石艷芬,陳梅英,蘇文芳.腫瘤患者外周血T淋巴細胞亞群和自然殺傷細胞數目的變化及其臨床意義[J].檢驗醫(yī)學與臨床,2012,9(22):2888-2889.
[14]田曉剛,高力英.外周血T細胞亞群檢測在惡性腫瘤中的價值[J].甘肅醫(yī)藥,2010,29(1):32-33.
[15]鄔露丹,徐煒峰,熊逸群.惡性腫瘤患者淋巴細胞亞群的測定及與癌胚抗原的關系[J].實驗與檢驗醫(yī)學,2008,26(1):57-58.
R446.62,R733.7
A
1674-1129(2017)02-0183-03
10.3969/j.issn.1674-1129.2017.02.014
2016-12-29;
2017-03-15)
江西省衛(wèi)計委科技計劃,編號:20151649
吳瓊,女,1984年生,碩士,主管技師,流式細胞術。
王小中,男,1973年生,博士,主任技師,教授,主要從事臨床檢驗診斷學。