劉軍++程云斌++劉騫++沈菁
摘要:建立液相色譜-質譜法檢測油菜子、植株和土壤中三唑醇殘留量的方法。油菜子和植株經(jīng)乙腈提取,經(jīng)Carbon/NH2柱凈化,實現(xiàn)樣品的制備;土壤則經(jīng)乙腈提取濃縮后直接檢測。在島津VP-ODS色譜柱上,以乙腈+0.1%甲酸水為流動相,梯度洗脫,采用電噴霧正離子(ESI+)sim掃描離子模式,以m/z 296為定量檢測離子。結果表明,三唑醇保留時間在11.9 min左右。在0.02~2.00 mg/L的濃度范圍內呈良好的線性關系,其相關系數(shù)為0.999 7。在油菜子、植株、土壤中添加0.02、0.20、2.0 mg/kg 3個濃度的三唑醇標樣,其回收率為71%~110%,相對標準偏差(n=5)均小于10%,最低檢出量(S/N=10)為1.7×10-9 g。該方法準確度和精密度均能滿足檢測要求。
關鍵詞:三唑醇;殘留;液相色譜-質譜;油菜子;土壤
中圖分類號:O657.63 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2016)22-5934-03
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2016.22.051
Determination of Triadimenol Residue in Rapeseed,Plants and Soil by LC-MS
LIU Jun,CHENG Yun-bin,LIU Qian,SHEN Jing
(Agricultural Quality Standards and Inspection Technology Research Institute, Hubei Academy of Agricultural Science,Wuhan 430064,China)
Abstract:A method for determination of triadimenol residue in rapeseed,plants and soil was established by LC-MS. Triadimenol residue was extracted from sample with acetonitrile,cleaned up by ProElut CARB/NH2 SPE to achieve sample preparation,and separatesd on the Shimadzu VP-ODS column,using a mixture of acetonitrile and 0.1% formic acid solution as mobile phase. Determination was made by using ESI and under the mode of SIM. Quectionantitative detection of ions at m/z 296,the retention time of pyraclostrobin was about 11.9 min. Linearity were held in the ranges of 0.02~2.00 mg/L with the correlation coefficient for 0.999 7. The average recoveries of triadimenol in rapeseed,plants and soil at the spiked amounts of 0.02~2.00 mg/kg were 71%~110%,and the relative standard deviation was lower than 10%. The limit of detectable amount(S/N=10) was 1.7×10-9 g. The accuracy and precision of this method can meet the determinate requirements.
Key words: triadimenol; residue; LC-MS; rapeseed; soil
三唑醇(Triadimenol),又名百坦,屬于高效、廣譜的三唑類殺菌劑。目前,關于三唑醇的檢測方法有黃超群等[1]用液相色譜-串聯(lián)質譜法同時測定蔬菜中7種三唑醇類殺菌劑的殘留量;沈偉健等[2]采用固相分散萃取與氣相色譜-負化學離子源質譜聯(lián)用法測定食品中三唑醇的殘留量;徐穎潔[3]采用SPE-GC-μECD測定蔬菜中6種三唑類農(nóng)藥的殘留量;分子印記法[4,5]以及大豆植株[6]、玉米植株[7]、大豆[8]、玉米[9]、香蕉[10,11]、煙葉[12]、小麥[13]、土壤[14]、水[15,16]、酒精飲料[17-19]等介質中的殘留均有研究,但未有在油菜子中殘留檢測的報道。本研究檢測方法是為了解三唑醇在防治油菜作物菌核病后,油菜子、植株和土壤中三唑醇的殘留量水平,其針對性更強。
1 材料與方法
1.1 儀器及試劑
LC-20AD型液相色譜儀(日本島津公司),配有LC-MS 2010 EV型質譜檢測器和電噴霧電離源,自動進樣器,LC-MS工作站。
三唑醇(98%,江蘇劍牌農(nóng)化有限公司),甲醇、乙腈(色譜純,美國Baker公司),甲酸(99.0%,美國Acros Organics公司),氯化鈉(分析純,國藥集團化學試劑有限公司),超純水用Barnstead超純水機制備,其他試劑均為分析純。
1.2 樣品前處理
油菜子:準確稱取磨碎的油菜子樣品5.0 g,先加10 mL純水充分浸潤,再加入30 mL乙腈,搖勻超聲15 min,加入5.0 g NaCl 搖勻后超聲5 min, 3 500 r/min離心5 min。移取上清液12 mL于100 mL燒杯中,水浴70 ℃蒸發(fā)近干,加入2 mL乙腈/甲苯(3/1,V∶V,下同)待凈化。
油菜植株:準確稱取攪碎的油菜植株樣品10.0 g,加入30 mL 乙腈,14 000 r/min勻質2 min,加入5.0 g NaCl再14 000 r/min勻質1 min,3 500 r/min離心5 min。移取上清液6 mL于100 mL燒杯中,水浴70 ℃蒸發(fā)近干,加入2 mL乙腈/甲苯(3/1)待凈化。
土壤:準確稱取晾干磨碎的土壤樣品5.0 g,加入10 mL純水充分浸潤,加入30 mL乙腈,劇烈搖勻,超聲15 min,加入5.0 g NaCl搖勻后再超聲5 min,3 500 r/min離心5 min。移取上清液12 mL于100 mL燒杯中,水浴70 ℃蒸發(fā)近干,加入2 mL乙腈溶解過膜待檢測。
1.3 樣品凈化
用5 mL乙腈/甲苯(3/1)預淋洗Carbon/NH2柱(1 000 mg,6 mL),待淋洗液近干時迅速將油菜子、油菜植株的待凈化液轉移其中,10 mL乙腈/甲苯(3/1)淋洗,淋洗液收集于100 mL燒杯中,水浴70 ℃蒸發(fā)近干,加入2 mL乙腈溶解過膜待檢測。
1.4 液相色譜-質譜條件
色譜柱:島津VP-ODS(150 mm×2.0 mm,5 μm);流動相采用含0.1%甲酸的水-乙腈,梯度洗脫(表1);流速0.2 mL/min;進樣體積5 μL;柱溫40 ℃;離子源ESI(+),SIM掃描模式(m/z 296);CDL溫度250 ℃; 加熱模塊溫度200 ℃;霧化氣流速(N2)1.5 L/min;干燥氣(N2)壓力80 kPa;檢測電壓1.75 V。
2 結果與分析
2.1 定量離子的選擇
在上述色譜條件下選擇Scan(+)模式,進10 mg/L的三唑醇標樣溶液,掃描范圍m/z 150~350,得到全掃描質譜圖(圖1)。由圖1可見,m/z 296(M+H)的為目標離子,所以選擇m/z 296為定量離子。以m/z 296為定量離子采用Sim(+)模式,油菜子中的三唑醇的添加回收、標樣質譜以及空白質譜見圖2,油菜植株的質譜見圖3,土壤中的質譜見圖4。
2.2 線性范圍和檢出限
配制濃度為0.02、0.05、0.10、0.20、0.50、1.00、2.00 mg/L三唑醇標樣,以m/z 296質量色譜圖峰面積為縱坐標,以對應的三唑醇質量濃度(mg/L)為橫坐標,繪制標準曲線(圖5)。其線性回歸方程為Y=1.082×10-7X+89 220,線性相關系數(shù)r2=0.999 7。按 S/N=10的信噪比計算三唑醇最低檢出量為1.7×10-9 g。
2.3 SPE凈化柱淋洗溶劑體積的選擇
在空白油菜子5.0 g、油菜植株10.0 g中添加0.2 mg/kg的三唑醇標樣,按上述方法提取,樣品凈化時淋洗溶劑乙腈/甲苯(3/1)的體積按每次5 mL,共5次,分開收集,分別蒸發(fā)近干、定容,0.22 μm濾膜過濾,質譜檢測,檢測數(shù)據(jù)結果見表2。由表2可見,選擇10 mL為最佳淋洗體積。
2.4 方法的添加回收率、精確度和最小檢出濃度
利用未施藥的油菜子、油菜植株、土壤樣品作為空白樣品,分別添加0.02、0.2、2.0 mg/kg 3個水平,每個水平5次重復,檢測結果見表3。從表3可見,添加樣品中三唑醇加標回收率為71%~110%,相對標準偏差(RSD)為1.5%~9.6%。以最小添加濃度0.02 mg/kg作為最小檢出濃度,其回收率、相對標準偏差和最小檢測濃度都能滿足農(nóng)藥登記殘留試驗的要求。
3 結論
本研究采用乙腈提取,Carbon/NH2柱凈化,液相色譜-質譜法檢測三唑醇在油菜子、油菜植株、土壤中的殘留,該方法操作簡單,其添加回收率、精確度和最小檢出濃度均能達到農(nóng)藥登記殘留試驗的要求。
參考文獻:
[1] 黃超群,丁慧瑛,朱曉雨,等.液相色譜-串聯(lián)質譜法同時測定蔬菜中7種三唑醇類殺菌劑的殘留量[J].分析測試學報,2011,30(6):656-660.
[2] 沈偉健,林 宏,趙增運,等.固相分散萃取與氣相色譜-負化學離子源質譜聯(lián)用法測定食品中三唑醇的殘留量[J].色譜,2008, 26(4):515-518.
[3]徐穎潔.SPE-GC-μECD測定蔬菜中6種三唑類農(nóng)藥的殘留量[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2014,42(18):5813-5815.
[4] 胡 靜,褚建功,高文惠.三唑醇分子印跡聚合物的制備及在食品檢測中的應用[J].藥物分析雜志,2011,31(12):2260-2265.
[5] 劉麗梅,李志偉,于奕峰,等.三唑醇分子印跡整體柱用于結構類似物的分離與分析[J].農(nóng)藥,2007,46(10):677-678.
[6] 李俊凱,王 勇,程 玲.氣相色譜法測定大豆植株中三唑醇殘留量研究[J].長江大學學報,2008,5(3):58-59.
[7] 張偉國,陳姍姍,高金山,等.玉米植株中三唑酮、三唑醇-a、三唑醇-b殘留量測定[J].農(nóng)藥,2005,44(7):324-325.
[8] 李春風,沈偉健,蔣 原,等.分散固相萃取氣相色譜-負化學離子源質譜法測定大豆和玉米中20種農(nóng)藥的殘留量[J].色譜,2009,27(2):176-180.
[9] 沈偉健,桂茜雯,余可垚,等.氣相色譜-負化學離子源質譜測定大豆和玉米中12種三唑類殺菌劑的殘留量[J].色譜,2009,27(1):91-95.
[10] 王明月,林靖凌.超高效液相色譜串聯(lián)質譜法測定香蕉中的三唑醇殘留[J].食品科學,2011,32(12):292-295.
[11] 羅金輝,王明月.優(yōu)化氣相色譜法測定香蕉中三唑醇殘留量[J].農(nóng)藥,2011,50(2):128-129.
[12] 陳 萍,師君麗,孔光輝,等.煙葉中三唑酮、三唑醇-a、三唑醇-b殘留量的GC-MS檢測[J].光譜實驗室,2013,30(4):1990-1993.
[13] 王 軍,萬 宇,陳 楓,等.三唑醇在京皖兩地小麥和土壤中殘留動態(tài)研究[J].農(nóng)藥科學與管理,2007,28(8):14-17.
[14] 王 軍,邊俠玲,萬 宇,等.麥田環(huán)境中三唑醇殘留行為及其安全性評價[J].安徽農(nóng)業(yè)大學學報,2009,36(4):666-669.
[15] WANG C,WU Q H,WU C X,et al. Application of dispersion-solidification liquid-liquid microextraction for the determination of triazole fungicides in environmental water samples by high-performance liquid chromatography[J].Journal of Hazardous Materials,2011,185:71-76.
[16] SAMPEDRO M C,MART?魱N O,L?魷PEZ DE ARMENTIA C, et al. Solid-phase microextraction for the determination of systemic and non-volatile pesticides in river water using gas chromatography with nitrogen-phosphorous and electron-capture detection[J].Journal of Chromatography A,2000,893:347-358.
[17] PLAZA BOLA■OS P,ROMERO-GONZ?魣LEZ R,GARRIDO FRENICH A,et al. Application of hollow fibre liquid phase microextraction for the multiresidue determination of pesticides in alcoholic beverages by ultra-high pressure liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry[J].Journal of Chromatography A,2008,1208:16-24.
[18] NOZAL M J,BERNAL J L,JIM?魪NEZ J J,et al. Determination of azolic fungicides in wine by solid-phase extraction and high-performance liquid chromatography-atmospheric pressure chemical ionization-mass spectrometry[J].Journal of Chromatography A,2005,1076:90-96.
[19] MILL?魣N S,SAMPEDRO M,Cunceta N,et al. Coupling solid-phase microextraction and high-performance liquid chromatography for direct and sensitive determination of halogenated fungicides in wine[J].Journal of Chromatography A,2003,995:135-142.