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        單增李斯特菌環(huán)介導等溫擴增快速檢測方法的建立

        2017-03-24 09:12:24楊愛華李秀梅韓文瑜
        中國畜牧獸醫(yī)文摘 2017年2期
        關鍵詞:單增瓊脂糖李斯特

        楊愛華 李秀梅 韓文瑜

        (1.吉林大學動物醫(yī)學學院,吉林長春 130062; 2.天津市動物疫病預防控制中心,天津 300402)

        單增李斯特菌環(huán)介導等溫擴增快速檢測方法的建立

        楊愛華1,2李秀梅2韓文瑜1

        (1.吉林大學動物醫(yī)學學院,吉林長春 130062; 2.天津市動物疫病預防控制中心,天津 300402)

        研究針對細胞增生性李斯特菌(以下簡稱單增李斯特菌)hlyA基因設計了4條特異性的環(huán)介導等溫核酸擴增(loopmediated isothermal amplification,LAMP)引物,通過優(yōu)化反應條件,建立了單增李斯特菌的LAMP快速檢測方法。特異性和敏感性試驗結果顯示,該方法能夠特異地檢測單增李斯特菌,其最低檢測限為3 CFU/mL。擴增產物可通過瓊脂糖凝膠電泳、顯色反應進行判定。LAMP可以快速、直觀、準確地檢測單增李斯特菌,是一種適合基層現(xiàn)場應用的檢測方法。

        單增李斯特菌 環(huán)介導等溫擴增 快速檢測 hlyA基因

        單增李斯特菌(Listeria monocytogenes,LM)是一種重要的人畜共患病原菌和食源性病原菌,人畜在食用了被該菌污染的食物后,除了出現(xiàn)惡心、嘔吐、腹痛等一般細菌性食物中毒癥狀外,還會導致腦膜炎、骨髓炎、敗血癥、心肌炎、流產等,病死率高達30%。該菌在自然界分布廣泛,4℃的環(huán)境中仍可生長、繁殖,增加了冷藏食品威脅人類健康的風險,WHO已將該菌列為重點檢測的食源性致病菌之一,因此,建立快速、準確的檢測方法對保證人類和動物生命安全具有重要意義。

        目前,用于單增李斯特菌的檢測技術主要有細菌分離鑒定、免疫學方法和PCR等,但上述方法花費時間較長,而且判定結果需要借助精密儀器設備,難以在基層生產中普及應用,因此建立一種簡單、快速、準確的病原診斷方法顯得十分必要。Notomi等于2000年發(fā)明了環(huán)介導等溫核酸擴增技術,該技術依賴4條特異性引物和一種具有鏈置換特性的DNA聚合酶,在等溫條件下快速、高效、高特異、高靈敏地擴增靶序列。本試驗針對單增李斯特菌的hlyA基因設計了一套LAMP特異性引物,建立了一種用于單增李斯特菌基因檢測的方法。與傳統(tǒng)PCR相比,該方法操作簡便,實驗儀器要求較低,在普通恒溫水浴鍋中反應45min即可完成,而且可以通過在終產物中加入染料的方法直接用肉眼觀察結果,能快速、準確地鑒定單增李斯特菌,在基層生產中具有廣闊的推廣應用前景。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        Bst DNA聚合酶、dNTP、10×buffer(Mg2+Free)緩沖液購自紐英倫生物技術(北京)有限公司;Betaine Solution(甜菜堿)、鈣黃綠素購自美國Sigma公司,MgCl2、DNA marker購自天根生化科技(北京)有限公司;細菌基因組DNA提取試劑盒、普通質粒小提試劑盒購自杭州博日股份科技有限公司;單增李斯特菌菌株(54003,2013.11.22)由CDC惠贈;金黃色葡萄球菌、鼠傷寒沙門氏菌、志賀氏菌、副溶血性弧菌、肺炎克雷伯菌、大腸桿菌菌株購自廣州粵晨生物科技有限公司。

        1.2 引物設計與合成

        采用引物設計軟件Primer 4.0(http://primerexlorer.jp;Eiken Chemical Co.Ltd,Japan),針對單增李斯特菌保守的hlyA基因設計了4條LAMP的特異性引物,包括2條外引物(F3和B3)以及2條內引物(FIP和BIP)。引物由北京三博遠志生物技術有限公司合成,引物序列見表1。

        1.3 單增李斯特菌DNA模板的提取

        使用細菌基因組DNA提取試劑盒對單增李斯特菌細菌培養(yǎng)液提取基因組DNA,經核酸蛋白定量儀定量后,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.4 單增李斯特菌LAMP檢測方法反應體系的建立

        根據(jù)反應體系優(yōu)化策略,依次對引物濃度、Mg2+濃度、甜菜堿濃度和反應溫度進行優(yōu)化,具體梯度如下:內、外引物濃度比分別為:4、6、8、10,外引物終濃度為0.2μmol·L-1,其對應的內引物終濃度分別為:0.8、1.2、1.6、2.0μmol·L-1;Mg2+終濃度分別為2、3、4、6、8、10 mmol·L-1;甜菜堿終濃度分別為:0.4、0.6、0.8、1.0mmol·L-1;反應溫度分別為61、62、63、64、65℃;在25μL的反應體系中dNTP混合液終濃度為1.4 mmol·L-1,1×buffer(Mg2+free),Bst DNA聚合酶8 U,模板2μl。所有體系在63℃分別反應45 min,80℃加熱2 min終止反應,取5μl反應產物上樣于1.5%瓊脂糖凝膠電泳鑒定,以確定最佳的反應體系。

        1.5 單增李斯特菌LAMP反應產物的鑒定

        1.5.1 電泳分析與測序鑒定

        將含LAMP反應液的PCR反應管置于水浴鍋中63℃等溫擴增45min后,取5μL反應產物用1.5%瓊脂糖凝膠分析和測序驗證。

        1.5.2 可視化鑒定

        反應前在LAMP反應液中加入1μl的熒光染料鈣黃綠素,LAMP反應結束后用肉眼直接觀察LAMP反應液的顏色變化。反應液顏色呈現(xiàn)綠色為陽性,反應液顏色呈現(xiàn)橘紅色為陰性。

        1.6 LAMP的敏感性試驗

        將單增李斯特菌細菌培養(yǎng)液經平板菌落計數(shù)后進行10倍梯度稀釋,用建立的LAMP檢測方法分別對各稀釋度單增李斯特菌菌液DNA模板進行擴增,擴增產物經1.5%的瓊脂糖凝膠電泳鑒定,以確定檢測方法的敏感性。

        1.7 LAMP的特異性試驗

        將單增李斯特菌與金黃色葡萄球菌、鼠傷寒沙門氏菌、志賀氏菌、副溶血性弧菌、肺炎克雷伯菌、大腸桿菌菌株基因組核酸,按照建立的LAMP檢測方法,進行特異性試驗。

        表1 引物序列表

        2 結果

        2.1 LAMP 檢測方法反應條件的建立

        優(yōu)化后的反應體系(2 5 μ l)確定為:外引物(F 3和B3)(5pmol·μl-1)各0.5μl,內引物(FIP和BIP)(40pmol·μl-1)各0.5μL,Mg2+(25mM)6μl,甜菜堿(5M)4μl,dNTP混合液(10mM)3.5μl,10×buffer(Mg2+free)2.5μl,Bst DNA聚合酶(8 U·μl-1)1μl,模板2μl,去離子水3μl,鈣黃綠素1μl。最佳反應溫度為63℃。

        2.2 LAMP產物的電泳與測序分析結果

        將提取的單增李斯特菌DNA進行LAMP擴增,取5μl反應產物用1.5%的瓊脂糖凝膠電泳檢測,結果見圖1,單增李斯特菌DNA擴增出了梯狀條帶,而陰性對照沒有擴增產物,表明建立的LAMP檢測方法可以用于單增李斯特菌核酸的檢測。測序結果分析表明,擴增產物目的片段與單增李斯特菌(GENBANK:HM589603.1)的同源性達到99.92%,證明LAMP產物為單增李斯特菌基因片段。

        圖1 單增李斯特菌LAMP產物電泳圖

        2.3 LAMP產物的可視化鑒定結果

        在LAMP反應前加入熒光染料鈣黃綠素,反應結束后通過肉眼觀察,陽性樣品管呈綠色,而對照陰性管橘紅色,見圖2。其結果與LAMP產物電泳結果一致,表明加入鈣黃綠素后所呈現(xiàn)的顏色反應具有特異性。

        圖2 單增李斯特菌LAMP可視化結果

        2.4 LAMP敏感性試驗

        單增李斯特菌細菌培養(yǎng)液經平板菌落計數(shù)后,原始菌濃度為3×106CFU/ml,10倍梯度稀釋菌液后,分別提取DNA模板進行LAMP擴增,擴增產物經1.5%的瓊脂凝膠電泳鑒定,結果見圖3。圖中3 CFU/mL以上的稀釋度均顯示了典型的LAMP擴增條帶,且信號依次遞增。說明該方法的靈敏度理論上可達到大約3 CFU/ml的水平。

        圖3 敏感性試驗結果

        LAMP特異性試驗

        將單增李斯特菌與金黃色葡萄球菌、鼠傷寒沙門氏菌、志賀氏菌、副溶血性弧菌、肺炎克雷伯菌、大腸桿菌菌株的基因組DNA進行LAMP反應,結果見圖4。該結果表明,只有單增李斯特菌的DNA出現(xiàn)目的條帶,其他均未擴增出任何條帶。

        圖4 特異性試驗結果

        3 討論

        從本試驗可以看出,LAMP 擴增方法具有普通PCR 無法比擬的優(yōu)點:(1)只需一恒定溫度就能擴增反應。(2)高特異性。原理上LAMP法擴增的特異性很高,因此可以根據(jù)是否擴增就能判斷目標基因的存在與否,即能夠進行細菌或病毒的定性檢測。(3)快速、高效擴增。整個擴增大約1 h 即可完成。(4)靈敏度高:擴增模板可達約3 CFU/ml。(5)步驟簡單。反應不需PCR 儀和特殊試劑,在水浴鍋中就能進行。(6)鑒定簡便。LAMP 擴增過程中,核酸大量合成時,從dNTP析出的焦磷酸根離子與反應溶液中的Mg2+結合,產生大量的副產物—焦磷酸鎂沉淀,使陽性反應管有明顯的變渾濁現(xiàn)象,肉眼即可直接觀察結果。但在本試驗中我們發(fā)現(xiàn)產生這種沉淀的重復性不高且量很小,其靈敏度也低于瓊脂糖凝膠電泳分析法,這也是今后需要進一步研究的內容。同時大量的擴增產物在結合核酸染色劑鈣黃綠素的情況下,有肉眼可見的顏色變化(陰性為橙黃色,陽性偏綠色),結果肉眼可視。

        保證引物的特異性是LAMP方法建立的關鍵。因此,選擇特異的保守基因作為靶基因,用來設計合適的引物至關重要。本研究選擇的靶基因是在李斯特菌屬種間有很高同源性,并且是單增李斯特菌最主要的致病因子的hlyA基因。利用該設計引物,經Blastn和Clustal W比對分析,在理論上保證其特異性并位于hlyA基因保守區(qū)段,再經對實際菌株樣品檢測進一步驗證,結果表明,本研究建立的LAMP快速檢測方法能特異性的檢測和鑒定單增李斯特菌,與金黃色葡萄球菌、鼠傷寒沙門氏菌、志賀氏菌、副溶血性弧菌、肺炎克雷伯菌、大腸桿菌無交叉反應,具有很高的特異性,能夠有效地避免假陽性問題。

        為了提高檢測效率,縮短檢測周期,本研究建立了檢測單增李斯特菌的LAMP檢測方法。結果顯示該方法是一種快速、實用、靈敏的檢測技術,如果進一步優(yōu)化、完善和推廣,該技術將會在單增李斯特菌的早期診斷及預防控制方面發(fā)揮重要作用。

        [1] Kathariou S.Listeria monocytogenes virulence and pathogenicity a food safety perspective[J].Food Prot,2002,(65):1811-1829.

        [2] Vazquez-Boland JA,Kuhn M,Berche P,et al.Listeria pathogenesis and molecular virulence deteminants[J].Clin Microbiol Rev,2001,(14):584-640.

        [3] 李翠云.單核細胞李斯特菌研究近況[J].中國熱帶醫(yī)學,2010,10(1):120-122.

        [4] 周曉輝,焦新安.產單核細胞李斯特菌的分子鑒定與亞分型研究[J].中國人獸共患病雜志,2003,19(5):44-47.

        楊愛華(1981-),女,獸醫(yī)師,本科學歷,主要從事動物疫病防控及實驗室檢測工作。

        韓文瑜(1955-),男,教授,博士,博士生導師,研究方向為病原微生物學與免疫學。

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