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        水貂犬瘟熱病毒RT-PCR檢測(cè)方法建立及應(yīng)用

        2016-11-29 02:33:52于紅鴿山東省即墨市畜牧獸醫(yī)局266100
        中國(guó)畜禽種業(yè) 2016年10期
        關(guān)鍵詞:犬瘟熱水貂瓊脂糖

        于紅鴿 (山東省即墨市畜牧獸醫(yī)局266100)

        水貂犬瘟熱病毒RT-PCR檢測(cè)方法建立及應(yīng)用

        于紅鴿 (山東省即墨市畜牧獸醫(yī)局266100)

        水貂犬瘟熱病毒 (Canine distemper virus,CDV)屬于副黏病毒科 (Paramyxoviridae)麻疹病毒屬 (Morbillivirus)。形狀多種,病毒直徑大小多在150~300nm[1]。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)RTPCR技術(shù)檢測(cè)了水貂病料中犬瘟熱病毒的感染情況,建立具有快速、靈敏的RT-PCR檢測(cè)方法。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 參考毒株

        犬瘟熱CDV-3弱毒株。

        1.1.2 試劑

        DNAzol Regent、TRIzol LS?Reagent、RNA提取試劑盒;rTaqDNA ploymerase、 dNTPs、 AMV Reverse Transcriptase、Rnase-Inhibitor、 DNA Marker(DL2000); Agarose 瓊脂糖;異丙醇、無(wú)水乙醇、DEPC水、氯仿、瓊脂粉等。

        1.1.3 儀器設(shè)備

        超凈工作臺(tái)、臺(tái)式高速冷凍離心機(jī)、PCR擴(kuò)增儀 (Alpha Unit Black Assembly PCR、PTC-200)、42℃可調(diào)恒溫水浴鍋、高速離心機(jī)、微波爐、電子天平、DYY-Ⅲ-7型、DYY-Ⅲ-8B核酸電泳儀、紫外凝膠成像系統(tǒng)[2]。

        1.1.4 檢測(cè)的組織病料來(lái)源及病料采集方法

        某新建貂場(chǎng)飼養(yǎng)水貂1600只,其中44日齡斷奶幼貂1100只,2016年4月23日突然發(fā)病176只,死亡114只。

        無(wú)菌操作剪取1.0~2.0g病料,加少量滅菌PBS(含青霉素、鏈霉素),注意邊研磨邊加液氮,防止RNA被降解。用PBS按1∶4稀釋成懸液,-20℃反復(fù)凍融3次,4℃10000r/min離心10min,取上清,-70℃保存。

        1.2 方法步驟

        1.2.1 引物設(shè)計(jì)與合成

        根據(jù)GenBank中CDV-3N蛋白基因序列,用Primer軟件設(shè)計(jì)了特異性引物,擴(kuò)增引物:CDV-3-P1(5′TAGGTTAGGGCTGTGGCCTT3′); CDV-3-P2 (5′CCGCACCTTCGGATATACTG3′)。

        1.2.2 CDV的RNA提取

        1.5ml離心管中加入 250μl組織液;加 TRIzol LSR Reagent750μl,顛倒 6~8 次,4℃靜止 5min; 加 200μl氯仿充分震蕩,在4℃冰箱,靜止10min;4℃離心12000轉(zhuǎn)15min;取上清液500μl,轉(zhuǎn)入新EP管,加等量的異丙醇,顛倒6~8次 (-70℃冰箱中靜置45min),充分沉淀核酸;4℃離心12000轉(zhuǎn)15min,棄上清液;加入75%冷乙醇 (DEPC配置)1000μl,離心5min,棄上清液,干燥核酸;加20μlDEPC水溶解-20℃保存,備用。

        1.2.3 CDV RNA的反轉(zhuǎn)錄

        CDV反轉(zhuǎn)錄反應(yīng) (RT-PCR)總體積為 20μl:5×Buffer4μl,M-MLV(反轉(zhuǎn)錄酶)0.5μl,RNase inhibitor 0.5μl,RT 引物 1μl,2.5mM dNTP2.5μl,DEPC 滅菌水 8.5μl,病毒RNA模板3μl,混勻42℃水浴1h,70℃5min滅活反轉(zhuǎn)錄酶。得到cDNA模板,-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.4 CDV PCR的反應(yīng)條件的優(yōu)化及體系的建立

        最適模板量確定:分別以2、3、4、5、6、7和8μl反轉(zhuǎn)錄的cDNA為模板,對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳觀察,保持其他試劑濃度及反應(yīng)條件不變,確立最佳模板濃度。最適引物濃度確定:在PCR反應(yīng)體系中分別加入上、下游引物(20μmol/μl) 0.1、 0.3、 0.5、 0.7、 1.0μl,通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物觀察,確立最佳引物濃度。最佳退火溫度確定:分別以47、49、51、53、55和 57℃退火溫度進(jìn)行PCR反應(yīng),通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行對(duì)擴(kuò)增產(chǎn)物的觀察,確立最佳退火溫度。CDV最佳反應(yīng)體系:總體積25μl,10×Buffer2.5μl,dNTP Mixture(2.5mmol/L)2μl,P1+P2 0.5μl+0.5μl,Taq0.5μl,滅菌雙蒸水 17μl,DNA 模板 2μl。 最佳擴(kuò)增條件:95℃預(yù)變性 5min,94℃變性 30s,51℃退火 40s,72℃延伸2min,共30個(gè)循環(huán),72℃終延伸10min。

        在PCR儀中進(jìn)行擴(kuò)增:95℃預(yù)變性5min;94℃變性30s,51℃退火40s,72℃延伸2min,循環(huán)數(shù)30次;72℃終延伸10min。對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳:用TAE緩沖液配制1%瓊脂糖凝膠,瓊脂糖加熱溶化后加入溴化乙錠 (EB,10mg/ml)至終濃度0.5μg/μl,混勻,制成電泳凝膠板待用。取3μl擴(kuò)增產(chǎn)物加3μl6×Loading Buffer(上樣緩沖液)混勻,加入上樣孔,同時(shí)以標(biāo)準(zhǔn)DNA分子量 (DL-2000 Marker)為對(duì)照,100V電泳30min,紫外凝膠成像系統(tǒng)觀察分析結(jié)果。

        1.3 CDV PCR檢測(cè)方法的特異性、敏感性、重復(fù)性試驗(yàn)

        1.3.1 RT-PCR特異性試驗(yàn)

        分別取犬瘟熱病毒 (CDV)、犬冠狀病毒 (CCV)反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物及犬細(xì)小病毒 (CPV)抽提的DNA,用已建立的方法進(jìn)行擴(kuò)增,驗(yàn)證本方法的特異性。

        1.3.2 RT-PCR敏感性試驗(yàn)

        從疫苗中抽提CDV-3的RNA,用DEPC水將RNA依次進(jìn)行10-1~10-7倍稀釋,分別進(jìn)行RT-PCR檢測(cè),確定其敏感性。

        1.3.3 RT-PCR重復(fù)性性試驗(yàn)

        用已建立的RT-PCR檢測(cè)方法對(duì)用免疫膠體金試紙跟RT-PCR同檢測(cè)為水貂犬瘟熱病毒為陽(yáng)性的病料進(jìn)行重復(fù)檢測(cè)3次,驗(yàn)證本方法的重復(fù)性和穩(wěn)定性。

        1.4 RT-PCR的臨床應(yīng)用

        從儲(chǔ)存水貂病料中隨機(jī)取2份病料,分別用膠體金和RT-PCR方法檢測(cè)。

        2 結(jié)果

        2.1 RT-PCR檢測(cè)方法反應(yīng)條件的確定

        以CDV-3株為模板,利用設(shè)計(jì)的特異性引物進(jìn)行RTPCR反應(yīng)。顯示擴(kuò)增得到與預(yù)期目的條帶大小相符的特異性片段。經(jīng)過(guò)不同條件,優(yōu)化PCR反應(yīng)體系,確定采用2μl的模板量,上、下游引物各0.5μl,退火溫度為51℃進(jìn)行擴(kuò)增。以優(yōu)化的PCR反應(yīng)的最佳條件進(jìn)行PCR擴(kuò)增并進(jìn)行凝膠電泳,在287bp處得到清晰可見(jiàn)的目的條帶。

        2.2 CDV PCR檢測(cè)方法的特異性、敏感性、重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果

        2.2.1 特異性試驗(yàn)結(jié)果

        RT-PCR能從提取的核酸中擴(kuò)增出287bp特異條帶,其他泳道的病毒:犬細(xì)小病毒 (CPV)、犬冠狀病毒 (CCV)擴(kuò)增結(jié)果為陰性,說(shuō)明本引物特異性好 (見(jiàn)圖1)。

        圖1 RT-PCR特異性實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        圖2 RT-PCR敏感性實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        圖3 RT-PCR重復(fù)性實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        2.2.2 敏感性試驗(yàn)結(jié)果

        對(duì)不同濃度CDV-3RNA進(jìn)行RT-PCR擴(kuò)增,顯示該RT-PCR方法最低能檢出約稀釋濃度10~5倍的病毒RNA(見(jiàn)圖 2)。

        2.2.3 重復(fù)性試驗(yàn)結(jié)果

        3次重復(fù)操作RT-PCR方法檢測(cè)結(jié)果一致,表明方法穩(wěn)定可靠 (見(jiàn)圖3)。

        2.3 臨床收集樣品檢測(cè)結(jié)果

        本試驗(yàn)RT-PCR檢測(cè)方法比免疫膠體金法敏感度高,結(jié)果準(zhǔn)。

        [1]高娃,楊敬,陳振文,等.犬瘟熱病毒分子生物學(xué)研究進(jìn)展[J].中國(guó)比較醫(yī)學(xué)雜志,2004,14(4):241-244.

        [2]殷震,劉景華.動(dòng)物病毒學(xué)[M].第2版.北京科學(xué)出版社,1997,16(7):329-330.

        于紅鴿 (1989.9-),女,山東省即墨市人,大學(xué)本科,助理獸醫(yī)師,主要從事動(dòng)物疾病防控、動(dòng)物疾病診斷工作。

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