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        熊果酸對人結腸癌HT-29細胞增殖抑制和誘導凋亡的研究

        2016-10-21 09:28:38張奕穎尹素改張小莉劉勝利張秋萍河南中醫(yī)學院基礎醫(yī)學院河南鄭州450046河南中醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院ICU河南鄭州450000武漢大學醫(yī)學院免疫系湖北武漢4007
        中國醫(yī)藥導報 2016年25期
        關鍵詞:靶細胞果酸線粒體

        江 華 張奕穎 尹素改 張小莉 馮 黎 劉勝利 張秋萍.河南中醫(yī)學院基礎醫(yī)學院,河南鄭州450046;.河南中醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院ICU,河南鄭州450000;.武漢大學醫(yī)學院免疫系,湖北武漢4007

        熊果酸對人結腸癌HT-29細胞增殖抑制和誘導凋亡的研究

        江華1張奕穎2尹素改1張小莉1馮黎1劉勝利1張秋萍3
        1.河南中醫(yī)學院基礎醫(yī)學院,河南鄭州450046;2.河南中醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院ICU,河南鄭州450000;3.武漢大學醫(yī)學院免疫系,湖北武漢430071

        目的探討熊果酸(UA)誘導人結腸癌細胞HT-29凋亡的作用機制。方法MTT法觀察UA對HT-29細胞增殖的抑制作用;熒光顯微鏡和流式細胞術觀察HT-29細胞的凋亡情況;Western blot檢測細胞色素c(cyt-c)、caspase-3及Livin蛋白的表達。結果UA對HT-29細胞具有明顯的的增殖抑制作用,并呈一定的濃度和時間依賴性;熒光顯微鏡觀察結果顯示,50 μmol/L的UA作用24 h后,較多細胞呈現(xiàn)出凋亡的特征性改變;流式細胞術檢測發(fā)現(xiàn),UA可將HT-29細胞阻滯于G1期,隨著UA濃度的增高,細胞凋亡率也相應增加;Western blot結果顯示,UA作用24 h后,Livin蛋白和caspase-3酶原的表達逐漸降低,線粒體釋放的cyt-c逐漸增多,活化的caspase-3片段逐漸增加。結論UA對HT-29細胞具有明顯的增殖抑制作用,其機制可能與UA阻滯HT-29細胞的細胞周期、激活線粒體凋亡途徑以及下調凋亡抑制蛋白Livin的表達有關。

        熊果酸;人結腸癌細胞HT-29;凋亡

        [Abstract]Objective To investigate the apoptosis-inducing mechanism of ursolic aicd(UA)in human colon cancer cell HT-29.Methods The inhibitory effect of UA on the growth of HT-29 cells was evaluated by MTT assay.Apoptosis was determined by fluorescence microscopy and flow cytometry.The expressions of apoptosis-associated proteins including cytochrome c(cyt-c),caspase-3 and Livin were assessed by Western blot analysis.Results UA inhibited HT-29 cell proliferation in a time-and dose-dependent manner.Fluorescent microscope indicated characteristics of apoptosis present in cells after UA-treated(50 μmol/L,24 h).Flow cytometry showed that UA inhibited HT-29 in G1phase,and the apoptosis rate of HT-29 cell exposured to UA increased,corresponding to the concentration of UA.The inceasing of the release of cyt-c from the mitochondria and the activated fragment of caspase-3 were detected by Western blot,while the expression of procaspase-3 and Livin was decreased gradually.Conclusion UA can inhibit the proliferation of HT-29 cells effectively in vitro.The mechanism of above-mentioned phenomena may be related with the arrest effect of UA in the cell cycle of HT-29,activated mitochondrial apoptotic pathway,and down-regulating the expression of Livin.

        [Key words]Ursolic acid;Human colon cancer cell HT-29;Apoptosis

        熊果酸(Ursolic acid,UA),又叫烏蘇酸、烏索酸,它在自然界中存在廣泛,是熊果、白花蛇舌草、烏梅等多種植物的主要活性成分,具有多種生物學活性,包括護肝[1]、抗炎[2-3]、抗血管生成[4]、降血糖[5]以及抗腫瘤[6-8]等作用。現(xiàn)在人們日益重視UA的抗腫瘤作用,它可以抑制腫瘤細胞的轉移、減少腫瘤血管的生成、誘導腫瘤細胞的凋亡等,但UA通過何種途徑誘導腫瘤細胞的凋亡尚不完全清楚。本實驗研究了UA對HT-29細胞增殖和凋亡的影響,并探討其可能的作用機制。

        1 材料與方法

        1.1材料

        人結腸癌細胞HT-29購自北京大學;UA、胰酶、四甲基偶氮唑藍(MTT)、DMSO、Hoechst33258和碘化丙啶(PI)染料均購自Sigma公司;RPMI-1640培養(yǎng)基購自HYCLONE公司;新生小牛血清購自杭州四季青有限公司;鼠抗人cyt-c單克隆抗體和鼠抗人caspase-3單克隆抗體均購自Neomarkers公司;鼠抗人Livin單克隆抗體購自Stratagene Corporation公司;Western blot試劑盒購自Kirkegaard Perry Laboratories公司;二氧化碳細胞培養(yǎng)箱為美國NUAIRE公司產(chǎn)品;熒光酶標儀為TECAN公司產(chǎn)品,型號:GENiOS VA200;流式細胞儀為BECKMAN產(chǎn)品。

        1.2方法

        1.2.1細胞培養(yǎng)用含10%新生小牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)基于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)HT-29細胞,每2~3天傳代1次,用對數(shù)生長期的細胞進行實驗。

        1.2.2 MTT法檢測UA對HT-29細胞的增殖抑制情況將HT-29細胞調節(jié)濃度至5×104個/mL,加入96孔培養(yǎng)板中,待其貼壁后加入UA,使終濃度分別為10、20、30、40、50 μmol/L,并設立不含UA(0 μmol/L)的對照組,每組設3個復孔,各組中DMSO的最終含量均為0.5%(V/V)。將96孔板放在培養(yǎng)箱中分別培養(yǎng)12、24、36、48 h后加入5 mg/mL的MTT溶液20 μL,然后置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄上清,每孔加入DMSO 100 μL,震蕩混勻后用酶標儀在570 nm波長下檢測各孔的吸光值(OD值)。計算細胞增殖抑制率=[(對照組OD值-實驗組OD值)/對照組OD值]×100%。

        1.2.3熒光顯微鏡觀察細胞凋亡情況將HT-29細胞接種于24孔培養(yǎng)板中,接種濃度為1.25×105個/mL,加入UA至終濃度為50 μmol/L,同時設立不含UA(0 μmol/L)的對照組。UA作用24 h后,0.25﹪胰酶消化,2000 r/min離心10 min收獲細胞,PBS洗滌,加入Hoechst 33258染液避光孵育10 min。離心棄上清,加入PI染液4℃孵育30 min,離心,PBS洗滌,滴片,用熒光顯微鏡進行觀察。

        1.2.4流式細胞術(FCM)檢測細胞周期和細胞凋亡率分別以0、20、30、40、50 μmol/L的UA作用于HT-29細胞24 h,胰酶消化,離心棄上清,冷PBS洗2次,用預冷的70%乙醇4℃固定過夜。離心棄固定液,冷PBS洗2次,棄上清,加入RNA酶(1 mg/mL)240 μL,37℃水浴箱中放置30 min,加入PI染液避光染色30 min,流式細胞儀檢測。

        1.2.5 Western blot檢測蛋白表達將HT-29細胞以5×106個/mL濃度培養(yǎng)于培養(yǎng)瓶中,加入UA使其終濃度分別為0、20、30、40、50 μmol/L作用24 h后,2000 r/min離心10 min,PBS洗滌,棄上液。分別加入100 μL蛋白裂解液裂解30 min,離心取上清,熒光酶標儀檢測蛋白濃度。各實驗組蛋白液與等體積上樣緩沖液混勻,煮沸3 min,以15%SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白,并轉印蛋白至硝酸纖維素膜。然后將其放在封閉液中封閉2 h,分別加入鼠抗人cyt-c單克隆抗體、鼠抗人caspase-3單克隆抗體和鼠抗人Livin單克隆抗體,4℃孵育2 h。TBS漂洗3次,加入辣根過氧化物酶標記的二抗室溫孵育1 h。TBS漂洗3次,用Western blot蛋白質印跡(ECL)檢測試劑盒檢測,并用圖像分析軟件分析蛋白條帶的光密度。

        1.3統(tǒng)計學方法

        采用SPSS 21.0統(tǒng)計學軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料數(shù)據(jù)用均數(shù)±標準差(x±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結果

        2.1 UA對HT-29細胞的增殖抑制作用

        小組合作學習是小學語文課堂教學中的重要教學模式之一,在將學生合理分組后,由教師分配學習任務,學生以小組為單位,對學習任務進行交流、討論,探尋問題的解決方式,最后將學習成果進行展示,教師和學生共同進行總結和評價。在小學語文課堂教學中,小組合作學習的開展,有助于強化學生的認知,鍛煉學生的主動探究能力,對于學生全面發(fā)展具有重要意義。

        MTT結果表明,UA對人結腸癌細胞HT-29具有增殖抑制作用,并呈現(xiàn)出明顯的劑量和時間依賴性(圖1)。直線回歸方程顯示,UA作用于HT-29細胞12、24、36、48 h,其IC50值分別為(52.73±1.50)、(43.23±1.94)、(37.39±1.69)、(32.04±1.16)μmol/L。

        圖1 不同濃度UA對HT-29細胞的增殖抑制作用

        2.2熒光顯微鏡觀察細胞凋亡情況

        熒光顯微鏡觀察結果顯示,50 μmol/L的UA作用于HT-29細胞24 h后,許多細胞呈現(xiàn)出凋亡的特征性改變,HT-29細胞內的染色質分布不均勻,呈濃染的塊狀或顆粒狀;而0 μmol/L的UA作用24 h后,HT-29細胞內的染色質分布比較均勻,呈均勻彌散的藍白色熒光。壞死細胞呈紅色熒光(圖2,封三)。

        2.3流式細胞術(FCM)檢測細胞周期及細胞凋亡率情況

        細胞經(jīng)不同濃度UA作用24 h后,隨著UA濃度的增加,G0/G1期細胞比例逐漸增高,S期細胞比例逐漸降低;流式細胞儀分析顯示,隨著UA濃度的增高,在G1期前出現(xiàn)亞二倍體峰(細胞凋亡峰)逐漸增高,與0 μmol/L UA比較,凋亡率差異有高度統(tǒng)計學意義(P<0.01)。見表1、圖3。

        表1 UA對HT-29細胞周期及凋亡率的影響(%,x±s)

        2.4 Western blot檢測Livin、caspase-3、cyt-c蛋白表達情況

        圖3 不同濃度UA作用24 h后對細胞周期及細胞凋亡率的影響

        Western blot結果顯示,隨著UA濃度(0、20、30、40、50 μmol/L)的增加,Livin蛋白和caspase-3酶原蛋白表達逐漸降低,而從線粒體中釋放出來的cyt-c逐漸增多,活化后的caspase-3片段的表達也逐漸升高,與0 μmol/L UA比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。見圖4。

        圖4 Werstern blot檢測cyt-c、caspase-3和Livin的表達情況

        3 討論

        UA在自然界中分布較為廣泛,具有多種多樣的生物學效應,其突出作用是抗腫瘤,它對多種致癌物有抵抗作用,并且對多種惡性腫瘤細胞具有明顯的細胞毒作用、誘導分化以及抗血管生成作用。因此,人們越來越重視UA的抗癌防癌作用。

        本試驗研究了UA對于人結腸癌HT-29細胞的作用,細胞增殖抑制實驗表明從30 μmol/L起,UA開始較顯著地抑制HT-29細胞的增殖作用,并呈濃度和時間依賴性。

        PI只能透過壞死的細胞膜與細胞核結合,因此在紫外光激發(fā)下壞死細胞呈紅色。而Hoechst 33258屬于脂溶性染液,可以通過完整的細胞膜與靶細胞的細胞核結合,在紫外光的激發(fā)下會發(fā)出藍白色熒光。若細胞核染色均勻一致,呈彌散的藍白色熒光,則是活細胞;若細胞核染色不均勻,呈現(xiàn)出濃染的塊狀或顆粒狀,則是凋亡細胞。本試驗中采用Hoechst 33258和PI染色,通過熒光顯微鏡觀察HT-29細胞的凋亡現(xiàn)象,發(fā)現(xiàn)在50 μmol/L UA作用下,比較多的HT-29細胞呈現(xiàn)出凋亡的改變,其細胞內染色質分布不均勻,在熒光顯微鏡下可看到熒光斑點形成,而0 μmol/L的UA作用24 h后,HT-29細胞的細胞膜完整,染色質分布均勻,呈彌散的藍白色熒光。在兩個濃度的UA作用下都可以觀察到表現(xiàn)為紅色熒光的壞死細胞。

        通過FCM檢測發(fā)現(xiàn),UA可以將HT-29細胞阻滯在細胞周期的G1期,具體表現(xiàn)為G0/G1期的細胞比例增加,而S期的細胞比例降低。隨著熊果酸濃度的增加,HT-29細胞的凋亡率也在逐漸升高,體現(xiàn)在HT-29細胞的凋亡峰逐漸增高。因此,UA對HT-29細胞的凋亡作用可能是通過影響HT-29細胞從G1期向S期轉變,從而將該腫瘤細胞阻滯在G1期,減少了HT-29細胞進入S期的數(shù)量,從而抑制了腫瘤細胞DNA的復制,并導致HT-29細胞凋亡。

        研究表明,腫瘤的發(fā)生和失控性生長是細胞增殖和細胞凋亡兩個過程失衡的結果。參與細胞凋亡的通路有三條,線粒體通路[9]、死亡受體通路[10]和內質網(wǎng)通路[11],而線粒體通路中細胞色素c(cyt-c)是關鍵的分子。當細胞受到損傷后,cyt-c從線粒體中釋放出來,與凋亡活化因子1(Apaf-1)結合,并且激活caspase-9的前體,再進一步激活caspase-3,引發(fā)caspase的級聯(lián)反應,而caspase活化以后又可以促進靶細胞內的線粒體釋放cyt-c,同時其降解底物后的產(chǎn)物可以引起線粒體通透性的改變從而導致靶細胞凋亡的發(fā)生[12-15]。

        在細胞凋亡的過程中,天冬氨酸特異的半胱氨酸蛋白酶(caspase)發(fā)揮著很重要的作用。根據(jù)caspase在細胞凋亡中的作用和N-末端的長度,可以將其分成為兩大類:一類是起始型caspase(initiator caspase),如caspase-8、caspase-9,它們可以激活下游的caspase;另一類為效應型caspase(effector caspase),如caspase-3、caspase-6、caspase-7,它們可以直接降解靶細胞內的相關功能蛋白,導致凋亡的發(fā)生。這些caspase都是以無活性的前體形式存在,需要相關的激活因子將其激活為活性形式后才能發(fā)揮作用[16]。

        在機體內還存在有抗凋亡基因和其相關表達產(chǎn)物,凋亡抑制蛋白家族(inhibitor of apoptosis protein,IAPs)就是其中一類,它對于調節(jié)細胞凋亡具有重要的作用[17],某些IAPs成員的異常高表達可以導致細胞的凋亡過程受阻,其中,Livin是近些年來發(fā)現(xiàn)的人類IAP家族的新成員[18],它與腫瘤的發(fā)生有著密切的關系[19-21]。研究證實,IAPs主要通過與特異性的caspase蛋白結合并抑制caspase蛋白的活性,從而阻斷凋亡的發(fā)生[22-23]。

        本研究Western blot結果表明,UA作用24 h后,隨著藥物濃度的增加,15 kD處cyt-c的釋放增多,caspase-3酶原和Livin蛋白的表達降低,而活化后的caspase-3片段的表達逐漸增高。據(jù)此推測,UA有可能通過改變HT-29細胞內線粒體膜的通透性,促進cyt-c的釋放,釋放出來的cyt-c進而導致caspase-3的活化。同時,UA還可以下調HT-29細胞內Livin蛋白的表達,故UA有可能解除Livin蛋白對caspase-3的抑制作用。上述兩個過程均可以增強靶細胞內caspase-3的活化作用,而活化的caspase-3可以作用于HT-29細胞質中的相關細胞骨架蛋白,或者是作用于靶細胞內的DNA酶,引起DNA的斷裂,從而導致HT-29細胞凋亡。

        綜上所述,在體外UA可明顯抑制HT-29細胞增殖,并誘導其凋亡,它的作用機制可能是通過下調HT-29細胞內Livin蛋白的表達,促進線粒體內膜中的cyt-c釋放到胞漿中,繼而激活caspase-3,導致靶細胞的凋亡,其具體分子機制還有待進一步研究。

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        Research of ursolic acid on proliferation inhibition and apoptosis-inducing in human colon cancer cell HT-29

        JIANG Hua1ZHANG Yiying2YIN Sugai1ZHANG Xiaoli1FENG Li1LIU Shengli1ZHANG Qiuping3
        1.School of Basic Medicine,He′nan University of Chinese Medicine,He′nan Province,Zhengzhou450046,China;2.Department of ICU,the First Affiliated Hospital of He′nan University of Chinese Medicine,He′nan Province,Zhengzhou450000,China;3.Department of Immunology,Wuhan University School of Medicine,Hubei Province,Wuhan430071,China

        R735.3+5

        A

        1674-4721(2016)09(a)-0025-05

        2016-05-16本文編輯:程銘)

        張秋萍(1963-),女,博士,教授,主要從事腫瘤免疫學的研究。

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