鄭家濤,王軍,歐紹武,王運(yùn)杰(中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,遼寧 沈陽110001)
成熟型與幼稚型Nav1.5 Na+通道變構(gòu)體在神經(jīng)損傷大鼠背根神經(jīng)節(jié)細(xì)胞中的表達(dá)
鄭家濤,王軍,歐紹武,王運(yùn)杰*
(中國醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,遼寧沈陽110001)
目的:研究幼稚型和成熟型Nav1.5 Na+通道變構(gòu)體在選擇性神經(jīng)損傷(SNI)大鼠背根神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(DRG)中的表達(dá)情況。方法:建立SNI大鼠模型。采用RT-PCR、DNA測序、限制性酶切技術(shù)、免疫組化等方法檢測幼稚型和成熟型Nav1.5 Na+通道變構(gòu)體在SNI大鼠DRG中的表達(dá);采用Western blot法檢測DRG神經(jīng)元中蛋白激酶C(PKC)的表達(dá)。結(jié)果:成熟型和幼稚型Nav1.5 Na+通道變構(gòu)體在大鼠DRG神經(jīng)元中的表達(dá)比例為2.5∶1。在SNI大鼠模型中,幼稚型和成熟型Nav1.5的mRNA和蛋白表達(dá)水平均降低50%左右,PKC-γ表達(dá)水平增加大約1倍。結(jié)論:幼稚型和成熟型Nav1.5 Na+通道變構(gòu)體在大鼠DRG中有表達(dá),在疼痛模型中的表達(dá)水平顯著降低;在SNI模型中,PKC-γ表達(dá)水平的上調(diào)直接或間接導(dǎo)致了Nav1.5亞型的低表達(dá),此機(jī)制可能參與了神經(jīng)病理性疼痛的發(fā)生發(fā)展過程。
Nav1.5 Na+通道;背根神經(jīng)節(jié)細(xì)胞;疼痛模型
doi:10.16753/j.cnki.1008-2344.2016.04.002
[Abstract]Objective:To study the expression of adult and neonatal Nav1.5 isoforms in the dorsal root ganglia(DRG)neurons of rats with spared nerve injury(SNI).Methods:The expression of adult and neonatal Nav1.5 isoforms in the DRG neurons of rats with SNI was detected by RT-PCR,DNA sequencing,restriction enzyme digestion,immunohistochemistry and immunofluorescence methods.The expression of PKC-γ was detected by Western blot.Results:Both adult and neonatal Nav1.5 isoforms were expressed in the DRG neurons,but their expression ratio was approximately 2.5∶1.In SNI rat models,the expression of both adult and neonatal Nav1.5 isoforms decreased by approximately a half in both mRNA and protein levels.In contrast,the expression of PKC-γ increased by approximately one-fold.Conclusions:Both adult and neonatal Nav1.5 isoforms expressed in the DRG neurons of rat,but their expression levels decrease in pain models.The up-regulation of PKC-γ may directly or indirectly down-regulate the expression of Nav1.5 isoforms in SNI rat models,which may further involve in the pathological process of neuropathic pain.
[Key words]sodium channel Nav1.5;dorsal root ganglia neurons;pain model
作為跨膜蛋白的電壓-門控Na+通道是可興奮細(xì)胞動(dòng)作電位產(chǎn)生和傳導(dǎo)的重要離子通道,在傷害感受性電興奮中扮演著重要角色[1-2]。電壓-門控Na+通道的三維空間結(jié)構(gòu)目前尚不清楚,一般認(rèn)為它由一個(gè)大的α亞單位和2~4個(gè)小的β亞單位構(gòu)成[3]。到目前為止,已有9種Na+通道α亞單位(Nav1.1-Nav1.9)在不同的哺乳動(dòng)物組織中被克隆出來[4]。除Nav1.4Na+通道變構(gòu)體外,其余幾種Na+通道α亞單位均可在成熟背根神經(jīng)節(jié)(DRG)神經(jīng)元中檢測到表達(dá)[5-6]。河豚毒-抵抗型(TTX-R)的Nav1.5 Na+通道首先在心臟中被克隆,被認(rèn)為是心肌特異性Na+通道,與心肌細(xì)胞電生理活動(dòng)密切相關(guān)[7-8],但是在其他哺乳動(dòng)物腦組織和DRG神經(jīng)元中也能夠檢測到表達(dá)[7-17]。既往的研究證實(shí)Nav1.5 mRNA(包括Nav1.5a和Nav1.5c亞型)在成年小鼠和大鼠DRG神經(jīng)元中有表達(dá)[14-15]。此外,Nav1.5電流被認(rèn)為是構(gòu)成大鼠的小DRG神經(jīng)元“第3種TTX-R鈉離子電流”的基礎(chǔ)[12]。到目前為止,人們已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了9種Nav1.5剪接變異體(Nav1.5a-f,E28B-D),其中的4種(Nav1.5a、Nav1.5c、Nav1.5d、Nav1.5e)被證實(shí)形成了功能性的Nav1.5Na+通道[8],但其它亞型的Nav1.5剪接變異體,特別是與成熟Nav1.5功能不同的幼稚型Nav1.5變構(gòu)體(Nav1.5e)是否在DRG神經(jīng)元中表達(dá),目前仍不清楚[19]。本研究通過RT-PCR、DNA測序、限制性酶切技術(shù)、免疫組化等技術(shù)手段,系統(tǒng)地研究幼稚型和成熟型Nav1.5亞型在選擇性神經(jīng)損傷(SNI)大鼠DRG中的表達(dá)情況。此外,對(duì)TTX-R Na+電流起激活作用的蛋白激酶C (PKC)在DRG神經(jīng)元中的表達(dá)情況也進(jìn)行了檢測。
1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及SNI模型的制備選取8~10周齡健康雄性SD大鼠18只,體重200~250 g,中國醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,常規(guī)飼養(yǎng)。本研究獲得中國醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn),遵守NIH指南中關(guān)于關(guān)懷和使用實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的原則(NIH出版物No.80-23)。將大鼠隨機(jī)分為2組,SNI組12只,對(duì)照組6只。根據(jù)文獻(xiàn)方法[20]建立SNI大鼠模型。
1.2RT-PCR手術(shù)后14 d,將DRG(L4-6)和外周感覺神經(jīng)元移除,使用RNA提取試劑盒提取總的RNA。使用RT-PCR技術(shù)從1 μg總的RNA中產(chǎn)生得到cDNAs(美國生命科學(xué)技術(shù)公司)。用來擴(kuò)增產(chǎn)生成熟型和幼稚型Nav1.5的PCR引物,被設(shè)計(jì)目標(biāo)為第6外顯子和第6A外顯子。正向引物為5'-TTCTGCC TGCATGCATTCACCTT-3',反向引物為5'-GCAGAAGACAGTGAGGACC A-3',產(chǎn)物長度為240 bp。PCR反應(yīng)條件為95℃預(yù)變性5 min,然后95℃保持30 s,66℃保持30 s,72℃保持30 s,進(jìn)行36個(gè)周期,最終72℃延伸5 min。使用GAPDH作參考對(duì)照:正向引物為5'-GACCACCCAGCCCAGCAAG G-3',反向引物為5'-TCCCCAGGCCCCTCCTGTT G-3',引物長度為144 bp。通過凝膠圖像分析系統(tǒng)進(jìn)行mRNA表達(dá)的分析。
1.3DNA測序使用凝膠回收試劑盒(美國Qiagen公司)來萃取和提純得到期望大小的片段,之后采用3730 xl全自動(dòng)DNA測序儀(美國BioSystem公司)進(jìn)行直接測序。
1.4限制性內(nèi)切酶消化使用限制性內(nèi)切酶SacⅠ將總的PCR產(chǎn)物進(jìn)行消化,從總的Nav1.5 cDNAs中區(qū)分出幼稚型Nav1.5剪接變異體。此反應(yīng)系統(tǒng)總共有30 μl,包含8 μl PCR產(chǎn)物,0.5 μl SacⅠ,3 μl加樣緩沖液,18.5 μl特級(jí)純化水。在38℃中孵化1 h或室溫下過夜,通過電泳的方法將PCR產(chǎn)物在2%瓊脂凝膠中進(jìn)行分離得到結(jié)果。
1.5免疫組化染色使用Histostain-SP試劑盒(美國Invitrogen公司),將新鮮的DRG(L4-6)標(biāo)本使用1%~4%多聚甲醛固定,制成4 μm后用石蠟包埋。標(biāo)本使用原始Nav1.5抗體(兔,1∶100,以色列Alomone公司)進(jìn)行孵化,接著使用二抗(生物素化山羊抗兔IgG,1∶500,美國Invitrogen公司)進(jìn)行繼續(xù)孵化。PBS代替一抗作為陰性對(duì)照,并將已知的Nav1.5正性表達(dá)的人心房肌作為陽性對(duì)照。
1.6Western blot使用的抗體包括兔抗Nav1.5多克隆抗體(1∶200,以色列Alomone公司);兔多克隆抗PKC-γ抗體(1∶1 000,美國Santa Cruz Biotechnology公司);兔抗α微管蛋白單克隆抗體(1∶10 000,美國Millipore公司);辣根過氧化物酶相關(guān)的抗兔、抗小鼠IgG二抗(1∶2 000,美國CST公司)。將100 mg左右的組織通過預(yù)冷的PBS (4℃)進(jìn)行沖洗,混合500 μl RIPA強(qiáng)溶解緩沖劑,用高速攪拌器攪勻,在4℃環(huán)境中過夜使之溶解。在4℃的環(huán)境中使用12 000 r/min高速離心30 min,收集上層清液后鑒定蛋白成分。使用BCA方法測定蛋白濃度,將100 μg蛋白裝進(jìn)每一個(gè)通道中,在80 V環(huán)境下通過6%~10%SDS-PAGE電泳2 h。蛋白經(jīng)過轉(zhuǎn)膜、10%脫脂蛋白封堵、孵化過夜、漂洗、室溫下震動(dòng)、ECL處理,使用增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光試劑和定量密度測量方法進(jìn)行免疫反應(yīng)性蛋白條帶的檢測。使用凝膠分析系統(tǒng)進(jìn)行蛋白表達(dá)的分析。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.7統(tǒng)計(jì)學(xué)方法采用SPSS 13.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,2組計(jì)量資料比較采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1Nav1.5 mRNA在SNI大鼠DRG神經(jīng)元中的表達(dá)下降RT-PCR結(jié)果顯示,與對(duì)照組比較,SNI大鼠模型中總的Nav1.5 mRNA(包括幼稚型和成熟型Nav1.5)下降大約55%。限制性內(nèi)切酶結(jié)果顯示,在SNI大鼠的DRG神經(jīng)元中,成熟型和幼稚型Nav1.5 mRNA表達(dá)均下降,其中成熟型Nav1.5 mRNA下降53%,幼稚型Nav1.5 mRNA下降56%。見圖1~圖3。
2.2幼稚型和成熟型Nav1.5 mRNA在SNI模型大鼠的DRG神經(jīng)元中均表達(dá)PCR結(jié)果顯示有2%的瓊脂糖膠能顯示帶有預(yù)期大?。?40 bp)的條帶,見圖1。單一序列存在于第5外顯子和第7外顯子編碼區(qū)域,對(duì)偶序列存在于第6外顯子和第6A外顯子編碼區(qū)域。DNA序列分析顯示SCN5A基因的第6外顯子和第6A外顯子均包含在PCR產(chǎn)物中,提示成熟型和幼稚型Nav1.5通道(Nav1.5e)均表達(dá)于DRG神經(jīng)元中。PCR碎片中包含第6A外顯子的部分被消化成兩帶,而包含第6外顯子的部分完整保存。因此,被酶消化和未被消化的PCR產(chǎn)物量的對(duì)比可以分別定量代表幼稚型和成熟型的Nav1.5 cDNA。對(duì)酶消化前和消化后通過放射自顯影方法比較DRG神經(jīng)元中成熟型Nav1.5與幼稚型Nav1.5表達(dá)的比例大約是2.5∶1,見圖1。
2.3PKC-γ在SNI模型大鼠DRG神經(jīng)元中的表達(dá)上調(diào)Western blot結(jié)果顯示,PKC-γ在SNI模型大鼠DRG神經(jīng)元中的表達(dá)上調(diào),增加了接近1倍。見圖4。
圖1 RT-PCR和直接DNA序列結(jié)果
圖2 Nav1.5 mRNA在DRG神經(jīng)元中的表達(dá)
在DRG神經(jīng)元中,電壓-門控鈉離子通道是傷害性感受動(dòng)作電位產(chǎn)生和傳播的必要條件[1,6,21-22],至少發(fā)現(xiàn)了8種鈉通道[5,6,22]。既往的研究表明,在小鼠的外周神經(jīng)切斷7 d后,L4和L5神經(jīng)元中Nav1.5a和Nav1.5/Nav1.5c mRNA的表達(dá)分別下降了48.1%和46.4%[14]。本研究RT-PCR結(jié)果顯示在SNI模型大鼠中,DRG神經(jīng)元中幼稚型和成熟型的Nav1.5 mRNA表達(dá)下降了接近一半,與上述研究結(jié)果一致。免疫組化和免疫熒光結(jié)果也顯示總Nav1.5蛋白在上述結(jié)構(gòu)中的表達(dá)下降。以往研究和本研究均顯示在SNI模型中,Nav1.5通道m(xù)RNA和蛋白表達(dá)水平均下降。
既往的研究證實(shí)Nav1.5a是在DRG神經(jīng)元中表達(dá)的Nav1.5最主要的同工型,跟全長Nav1.5相比有不同的功能特性[13-14]。后來的電生理檢查方法也表明Nav1.5通道在大鼠的小DRG神經(jīng)元中產(chǎn)生第三TTX-R電流。但是,除了目前已知的9種Nav1.5剪接變異體(Nav1.5a-f,E28B-D)之外,是否有其它的Nav1.5亞型存在于DRG神經(jīng)元中目前仍不得而知。因此,本研究系統(tǒng)地分析了Nav1.5在SNI模型大鼠的DRG神經(jīng)元中的表達(dá)情況。結(jié)果首次證實(shí)了成熟型和幼稚型Nav1.5在DRG神經(jīng)元和外周感覺神經(jīng)軸突中均表達(dá)。但是,兩種不同Nav1.5亞型的表達(dá)比例目前仍不是很清楚,而這種表達(dá)比例可能會(huì)影響總的Nav1.5功能特性。因此,我們分析了第6外顯子和第6A外顯子的不同,結(jié)果發(fā)現(xiàn)一種特異性限制內(nèi)切酶位點(diǎn)SacⅠ存在于第6A外顯子中,而第6外顯子中沒有。因此,SacⅠ被用來消化PCR產(chǎn)物,結(jié)果顯示在DRG神經(jīng)元和外周感覺神經(jīng)軸突中,成熟型Nav1.5和幼稚型Nav1.5(Nav1.5e)表達(dá)比例大約為2.5∶1。因此,結(jié)果提示在成熟型和幼稚型Nav1.5亞型形成混合產(chǎn)物之前檢測到Nav1.5鈉電流。
圖3 Nav1.5在大鼠DRG神經(jīng)元中的表達(dá)情況(免疫組化染色,A和E:×40;B和F:×100;C和G:×200)
圖4 Western blot檢測PKC-γ在SNI模型大鼠和正常對(duì)照組DRG神經(jīng)元中的表達(dá)
既往的研究通過Western blot方法發(fā)現(xiàn)了Nav1.5蛋白在DRG神經(jīng)元中的表達(dá)。本研究使用免疫組化和免疫熒光的方法檢測Nav1.5蛋白在DRG神經(jīng)元中的表達(dá)。結(jié)果顯示,均能檢測到Nav1.5在DRG神經(jīng)元中的表達(dá),并且在小直徑的DRG神經(jīng)元中表達(dá)強(qiáng)度要強(qiáng)于大的DRG神經(jīng)元。結(jié)合本次研究和之前的電生理學(xué)結(jié)果,證實(shí)了Nav1.5蛋白在DRG神經(jīng)元中的表達(dá)。但它在動(dòng)作電位的產(chǎn)生和傳導(dǎo)中的功能目前仍不是很清楚。既往的研究表明,Nav1.5在DRG神經(jīng)元中的一些功能特性被證實(shí)不同于其他TTX-R鈉通道(如Nav1.8和Nav1.9通道),體現(xiàn)在以下幾個(gè)方面:激活的半衰期、失活的時(shí)間常量,激活和失活的中點(diǎn)[12]。進(jìn)一步研究有待于更深層次的研究Nav1.5 在DRG神經(jīng)元和外周感覺神經(jīng)軸突中的功能特性。
作為一種常規(guī)PKC(cPKC)的同工酶,PKC-γ在神經(jīng)系統(tǒng)中大量的表達(dá)。本研究檢測了SNI模型大鼠DRG神經(jīng)元中PKC-γ的表達(dá)情況。結(jié)果發(fā)現(xiàn),PKC-γ在大鼠疼痛模型DRG神經(jīng)元中具有可重復(fù)性上調(diào)作用。
綜上所述,本研究首次證實(shí)了成熟型和幼稚型Nav1.5亞型在DRG神經(jīng)元中的表達(dá)。在SNI疼痛模型大鼠的DRG神經(jīng)元中,成熟型和幼稚型Nav1.5mRNA和蛋白表達(dá)水平均下降一半左右,PKC-γ的表達(dá)增加了近1倍。PKC-γ的表達(dá)上調(diào)可能跟SNI模型大鼠中成熟型與幼稚型Nav1.5的表達(dá)下調(diào)有關(guān),從而參與了神經(jīng)性疼痛的發(fā)生。關(guān)于疼痛模型中PKC-γ的表達(dá)上調(diào)與Nav1.5的表達(dá)下調(diào)之間的特殊關(guān)系,有待進(jìn)一步研究證實(shí)。
[1]Liu M,Wood JN.The roles of sodium channels in nociception:implications for mechanisms of neuropathic pain[J].Pain Med,2011,12(Suppl 3):S93-S99.
[2]Cummins TR,Sheets PL,Waxman SG.The roles of sodium channels in nociception:Implications for mechanisms of pain[J]. Pain,2007,131(3):243-257.
[3]Catterall WA.From ionic currents to molecular mechanisms:the structure and function of voltage-gated sodium channels[J]. Neuron,2000,26(1):13-25.
[4]Yu FH,Catterall WA.Overview of the voltage-gated sodium channel family[J].Genome Biol,2003,4(3):207.
[5]Laedermann CJ,Pertin M,Suter MR.Decosterd,I.Voltage-gated sodium channel expression in mouse DRG after SNI leads to reevaluation of projections of injured fibers[J].Mol Pain,2014,10:19.
[6]Devor M.Sodium channels and mechanisms of neuropathic pain [J].J Pain,2006,7(1 Suppl 1):S3-S12.
[7]Rook MB,Evers MM,Vos MA.Biology of cardiac sodium channel Nav1.5 expression[J].Cardiovasc Res,2012,93(1):12-23.
[8]Schroeter A,Walzik S,Blechschmidt S,et al.Structure and function of splice variants of the cardiac voltage-gated sodium channel Na(v)1.5[J].J Mol Cell Cardiol,2010,49(1):16-24.
[9]Wang J,Ou SW,Wang YJ.Analysis of four novel variants of Nav 1.5/SCN5A cloned from the brain[J].Neurosci Res,2009,64 (4):339-347.
[10]Wang J,Ou SW,Wang YJ,et al.New variants of Nav1.5/SCN 5A encode Na+channels in the brain[J].J Neurogenet,2008,22(1):57-75.
[11]Xing D,Wang J,Ou S.Expression of neonatal Nav1.5 in human brain astrocytoma and its effect on proliferation,invasion and apoptosis of astrocytoma cells[J].Oncol Rep,2014,31(6):2692-2700.
[12]RenganathanM,Dib-HajjS,WaxmanSG.Na(v)1.5underlies the'third TTX-R sodium current'in rat small DRG neurons[J]. Brain Res Mol Brain Res,2002,106(1-2):70-82.
[13]Kerr NC,Holmes FE,Wynick D.Novel isoforms of the sodium channels Nav1.8 and Nav1.5 are produced by a conserved mechanism in mouse and rat[J].J Biol Chem,2004,279(23):24826-24833.
[14]Kerr NC,Gao Z,Holmes FE.The sodium channel Nav 1.5a is the predominant isoform expressed in adult mouse dorsal root ganglia and exhibits distinct inactivation properties from the fulllength Nav1.5 channel[J].Mol Cell Neurosci,2007,35(2):283-291.
[15]Ren CT,Li DM,Ou SW.Cloning and expression of the two new variants of Nav1.5/SCN5A in rat brain[J].Mol Cell Biochem,2012,365(1-2):139-148.
[16]HartmannHA,Colom LV,Sutherland ML.Selective localization of cardiac SCN5A sodium channels in limbic regions of rat brain [J].Nat Neurosci,1999,2(7):593-595.
[17]Wu L,Nishiyama K,Hollyfield JG,et al.Localization of Nav 1.5 sodium channel protein in the mouse brain[J].Neuroreport,2002,13(18):2547-2551.
[18]FrenzCT,HansenA,DupuisND,etal.NaV1.5sodiumchannel window currents contribute to spontaneous firing in olfactory sensory neurons[J].J Neurophysiol,2014,112(5):1091-1104.
[19]Onkal R,Mattis JH,F(xiàn)raser SP.Alternative splicing of Nav1.5:an electrophysiological comparison of'neonatal'and'adult' isoforms and critical involvement of a lysine residue[J].J Cell Physiol,2008,216(3):716-726.
[20]Decosterd I,Woolf CJ.Spared nerve injury:an animal model of persistent peripheral neuropathic pain[J].Pain,2000,87 (2):149-158.
[21]WangW,GuJ,LiYQ,etal.Arevoltage-gatedsodiumchannels on the dorsal root ganglion involved in the development of neuropathic pain?[J].Mol Pain,2011,7:16.
[22]Moldovan M,Alvarez S.Romer Rosberg M,et al.Axonal voltagegated ion channels as pharmacological targets for pain[J].Eur J Pharmacol,2013,708(1-3):105-112.
(文敏編輯)
Expression of Adult and Neonatal Nav1.5 Isoforms in the Dorsal Root Ganglia Neurons of Rats with Spared Nerve Injury
ZHENG Jiatao,WANG Jun,OU Shaowu,WANG Yunjie*
(Department of Neurosurgery,The First Affiliated Hospital of China Medical University,Shenyang 110001,China)
R651.3
A
1008-2344(2016)04-0229-05
遼寧省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(No.2014021097);國家自然科學(xué)基金項(xiàng)目(No.31100770)
鄭家濤(1981—),男(漢),主治醫(yī)師,研究方向:神經(jīng)外科.E-mail:xy_810927@163.com
王運(yùn)杰(1956—),男(漢),主任醫(yī)師,研究方向:神經(jīng)外科.E-mail:wyj024@vip.sina.com
2016-05-16
沈陽醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào)2016年4期