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        江西口岸及國檢監(jiān)管區(qū)鼠類感染鉤端螺旋體的檢測及基因序列分析

        2016-08-24 11:26:23趙明惠徐鐵龍王建軍劉開明
        關(guān)鍵詞:鉤端鼠類螺旋體

        趙明惠,徐鐵龍,張 強(qiáng),胡 婷,王建軍,劉開明,廖 蕓

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        江西口岸及國檢監(jiān)管區(qū)鼠類感染鉤端螺旋體的檢測及基因序列分析

        趙明惠,徐鐵龍,張強(qiáng),胡婷,王建軍,劉開明,廖蕓

        目的為了解江西省口岸及國檢監(jiān)管區(qū)鼠類攜帶的鉤端螺旋體情況,2015年7-12月,對江西省2個(gè)一類口岸和9個(gè)國檢監(jiān)管區(qū)捕獲的鼠類攜帶的鉤端螺旋體進(jìn)行了檢測。方法采用熒光定量PCR和特異性PCR擴(kuò)增兩種方法對樣本進(jìn)行檢測。結(jié)果研究發(fā)現(xiàn)捕獲的107只鼠類中存在12例致病性鉤端螺旋體陽性,陽性率為11.2%。包括褐家鼠6只,黃毛鼠3只,黃胸鼠1只,社鼠2只,分布在昌北機(jī)場、康替龍國檢監(jiān)管區(qū)、南豐國檢監(jiān)管區(qū)、鷹潭國檢監(jiān)管區(qū)和瑞金國檢監(jiān)管區(qū)。同源性對比和系統(tǒng)進(jìn)化分析顯示,12例鉤端螺旋體中11例為問號(hào)鉤端螺旋體,另1例為博氏鉤端螺旋體。結(jié)論在江西口岸及國檢監(jiān)管區(qū)鼠類中存在問號(hào)鉤端螺旋體和博氏鉤端螺旋體感染。兩種PCR檢測方法均可適用于口岸及國檢監(jiān)管區(qū)對鉤端螺旋體的檢測,防止相應(yīng)傳染病在口岸的爆發(fā)與傳播,保衛(wèi)口岸安全。

        口岸;國檢監(jiān)管區(qū);鼠類;鉤端螺旋體

        鉤端螺旋體(Leptospira,簡稱鉤體)是一種絲狀、柱形、螺旋盤繞而致密的病原微生物。鉤體在世界范圍內(nèi)廣泛分布,可引起人獸共患鉤端螺旋體病(leptospirosis,簡稱鉤體病)[1]。該病的早期癥狀包括高燒、流口水、眼睛紅腫及“茶色”尿液,如病菌入侵腎臟、肺和心臟可危及生命[2]。急性患者常因彌漫性肺出血(pulmonary diffuse hemorrhage,PHD)而死亡[3]。鼠和嚙齒動(dòng)物是其主要傳染源,其他動(dòng)物如豬、牛、羊、馬、狼、蛇、蛙等均可成為傳染源,但它們攜帶菌的情況和傳染作用等因地而異[4-6]。鉤體病是我國危害最大的鼠傳疾病之一,其發(fā)病高峰時(shí)期患病人數(shù)多達(dá)10萬,自1955年本病被列入法定報(bào)告?zhèn)魅静∫詠恚珖塾?jì)報(bào)告已經(jīng)幾百萬病例[7]。由于我國經(jīng)濟(jì)的快速發(fā)展,對外經(jīng)濟(jì)貿(mào)易和人口的往來日益頻繁,這便加劇了鉤體病等鼠傳疾病在全球范圍的傳播。為了有效地控制鉤體病的流行,必須加強(qiáng)宿主動(dòng)物間鉤體的流行病學(xué)監(jiān)測。目前,實(shí)驗(yàn)室檢測成為診斷鉤體病的重要手段。由于直接鏡檢陽性檢出率低,菌量過低時(shí)容易漏檢,而且分離培養(yǎng)時(shí)間較長,容易被污染,因此,在鉤體的早期診斷上具有一定的局限性。聚合酶鏈反應(yīng)(PCR)技術(shù)具有特異性強(qiáng)和靈敏度高等特點(diǎn),適用于大量標(biāo)本的流行病學(xué)調(diào)查和鉤體病的早期監(jiān)測[8-9]。本研究使用熒光定量PCR和特異性PCR擴(kuò)增兩種方法,對江西口岸和國檢監(jiān)管區(qū)捕獲的鼠類樣本進(jìn)行鉤端螺旋體的檢測,通過基因序列分析初步了解鉤端螺旋體的種類,做好口岸風(fēng)險(xiǎn)評估,防止相應(yīng)傳染病在口岸的爆發(fā)與傳播,保衛(wèi)口岸安全。現(xiàn)將結(jié)果報(bào)告如下。

        1 材料與方法

        1.1實(shí)驗(yàn)材料

        1.1.1鼠種類2015年7月至12月,從江西省2個(gè)一類口岸和9個(gè)國檢監(jiān)管區(qū)共捕獲活鼠107只,鼠種組成和分布見表1。

        表12015年7-12月在江西省口岸及國檢監(jiān)管區(qū)捕獲的鼠種類及分布

        Tab.1Species and distributions of the rats captured from Jiangxi Ports and supervision areas during July to December 2015

        口岸/國監(jiān)區(qū)PortorCIQ’ssupervisionareas褐家鼠Rattusnorvegicus黑線姬鼠Apodemusagrarius黃毛鼠Rattuslosea黃胸鼠Rattusflavipectus小家鼠Musmusculus社鼠Rattusniviventer針毛鼠Rattusfulvescens板齒鼠Bandicotaindica合計(jì)Total九江城西港18?9昌北機(jī)場611331?24白水湖碼頭1?1井岡山411?6理文36?9康替龍6111?9南豐13282?25南康1?1瑞金314上栗1?1鷹潭21114?18合計(jì)319321211831107

        1.1.2試劑核酸提取試劑盒購自凱杰生物公司,熒光定量PCR檢測試劑盒購自上海之江生物公司,Taq DNA酶Mix和100 bp DNA Marker 購自康為世紀(jì)生物公司;瓊脂糖和染色劑購自上海生工生物公司。

        1.1.3設(shè)備全自動(dòng)核酸提取儀為凱杰QIAcube HT型號(hào),生物樣本勻質(zhì)儀為奧盛公司Bioprep-24型號(hào),熒光定量PCR儀為伯樂CFX96Touch型號(hào),普通PCR儀為伯樂T100型號(hào),凝膠成像系統(tǒng)為伯樂GelDoc XR系統(tǒng)。

        1.2實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1DNA的提取無菌條件下在生物安全柜內(nèi)提取鼠腎組織50 mg左右,放入裝有研磨珠和450 μL ATL裂解液的研磨管中,使用生物樣品均質(zhì)儀進(jìn)行研磨勻漿,12 000 r/min離心2 min后,上機(jī)提取DNA。提取試劑采用凱杰公司的核酸提取試劑盒(貨號(hào):54161),按照說明書操作,提取出來的DNA放在-20 ℃冰箱保存。

        1.2.2熒光定量PCR檢測對提取出來的DNA首先用上海之江公司的鉤端螺旋體核酸檢測試劑盒進(jìn)行病原體檢測,按照說明書操作。

        1.2.3特異性PCR擴(kuò)增根據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)[10-11],合成鉤端螺旋體sec Y和23S rRNA基因引物,對樣本進(jìn)行特異性擴(kuò)增,引物見表2。反應(yīng)體系為Taq酶 mix 12.5 μL,上游引物和下游引物各1 μL,DNA模板2 μL,最后加ddH2O補(bǔ)足到25 μL。反應(yīng)條件是95 ℃,5 min,之后95 ℃ 30 s;55 ℃ 1 min;72 ℃ 1 min,反應(yīng)35個(gè)循環(huán),最后72 ℃ 10 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳,出現(xiàn)特異性條帶送生工公司測序。

        表2鉤端螺旋體特異性PCR擴(kuò)增引物

        Tab.2Two pairs of specific primers used to amplify Leptospira

        引物Primers序列(5'→3')Sequence(5'→3')片段大小Length(bp)SecY-FCTGAATCGCTGTATAAAAGTSecY-RGGAAAACAAATGGTCGGAAG28523s-FGACCCGAAGCCTGTCGAG23s-RGCCATGCTTAGTCCCGATTAC484

        1.2.4基因序列分析將得到的片段序列在NCBI-BLAST平臺(tái)進(jìn)行同源性比對,選擇同源性接近的鉤端螺旋體為代表株進(jìn)行種系進(jìn)化分析。利用Mega 6軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。

        2 結(jié) 果

        2.1熒光定量PCR檢測結(jié)果對107只鼠進(jìn)行鉤端螺旋體熒光檢測,共發(fā)現(xiàn)12例陽性,總的陽性率為11.2%。其中,褐家鼠6只,在總捕獲的褐家鼠中所占比重為19.4%;黃毛鼠3只,所占比重為9.4%;黃胸鼠1只,所占比重為8.3%;社鼠2只,所占比重為11.1%。陽性鉤端螺旋體樣本來源地分布見表3,熒光曲線見圖1。

        表3陽性鉤端螺旋體樣本來源地分布

        Tab.3Distribution of the positive Leptospira

        來源地Origin褐家鼠Rattusnorvegicus黃毛鼠Rattuslosea黃胸鼠Rattusflavipectus社鼠Rattusniviventer合計(jì)Total康替龍33南豐1124鷹潭11昌北機(jī)場123瑞金11合計(jì)631212

        圖1 熒光定量PCR檢測結(jié)果圖Fig.1 Results of fluorogenic quantitative PCR

        2.2特異性PCR擴(kuò)增結(jié)果對107只鼠腎組織樣品進(jìn)行sec Y基因和23S rRNA基因特異性擴(kuò)增,結(jié)果與實(shí)時(shí)定量PCR結(jié)果一致,共發(fā)現(xiàn)12例陽性,擴(kuò)增片段電泳檢測與預(yù)期大小一致,見圖2。

        M: 100 bp Marker. 1: 23S rRNA negative control; 2: 23S rRNA positive specimen; 3: sec Y negative control; 4: sec Y positive specimen.圖2 特異性PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.2 Results of specific PCR

        2.3基因進(jìn)化樹分析將測序所得的陽性樣本序列在NCBI-BLAST平臺(tái)進(jìn)行同源性比對。建立基于sec Y基因和23S rRNA基因序列的系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖3,4)。結(jié)果顯示,12例陽性樣本中有11例為問號(hào)鉤端螺旋體,其23S rRNA 基因與8株問號(hào)鉤端螺旋體聚在一起,sec Y基因也與8株問號(hào)鉤端螺旋體聚在一起;1例為博氏鉤端螺旋體,其23S rRNA 基因與2株博氏鉤端螺旋體聚在一起,sec Y基因與4株博氏鉤端螺旋體聚在一起。兩個(gè)基因片段得到的同源性對比結(jié)果一致。

        The dots were the 12 cases of positive Leptospira.圖3 鉤端螺旋體sec Y基因系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.3 Phylogenic tree of Leptospira sec Y gene

        The dots were the 12 cases of positive Leptospira.圖4 鉤端螺旋體23S rRNA基因系統(tǒng)進(jìn)化樹Fig.4 Phylogenic tree of Leptospira 23S rRNA gene

        3 討 論

        由致病性鉤端螺旋體引起的鉤端螺旋體病是一種人獸共患病,對動(dòng)物和人類健康都產(chǎn)生重大的威脅。盡管目前還沒有全球患病人數(shù)的精確統(tǒng)計(jì),近期,WHO給出了一個(gè)估計(jì)數(shù)據(jù),即每年將近500 000患有嚴(yán)重的鉤端螺旋體病[12-13]??诎都皣鴻z監(jiān)管區(qū)作為出入境的特殊區(qū)域,其出入境人員相對復(fù)雜,環(huán)境相對特殊,因此,在這些區(qū)域?qū)Σ东@的鼠類樣品進(jìn)行鉤端螺旋體感染情況監(jiān)測,不僅能夠了解口岸區(qū)域鉤體的傳播規(guī)律,也能有效的防止鉤端螺旋體病從口岸的傳入和傳出。目前,PCR檢測方法,因其檢測周期短,靈敏度高,已經(jīng)普遍應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)室鉤端螺旋體的檢測[10,14]。本研究采用實(shí)時(shí)定量PCR方法和特異性PCR擴(kuò)增方法對江西省2個(gè)口岸和9個(gè)國檢監(jiān)管區(qū)捕獲的107只鼠腎樣本進(jìn)行了致病性鉤端螺旋體的檢測,共發(fā)現(xiàn)12例陽性,分別來自昌北機(jī)場、康替龍國檢監(jiān)管區(qū)、南豐國檢監(jiān)管區(qū)、鷹潭國檢監(jiān)管區(qū)和瑞金國檢監(jiān)管區(qū),總的陽性率達(dá)11.2%。其中,褐家鼠陽性率最高,達(dá)所捕獲褐家鼠總數(shù)的19.4%。其次是社鼠,陽性率為11.1%,黃毛鼠和黃胸鼠的陽性率也將近10%。就口岸而言,昌北機(jī)場口岸陽性率為12.5%(3/24),其他四個(gè)國檢監(jiān)管區(qū)的陽性率分別為康替龍國檢監(jiān)管區(qū)33.3%(3/9),瑞金國檢監(jiān)管區(qū)25%(1/4),南豐國檢監(jiān)管區(qū)16%(4/25),鷹潭國檢監(jiān)管區(qū)5.6%(1/18)。由此可以看出,在江西口岸及國檢監(jiān)管區(qū)鼠類攜帶的鉤端螺旋體陽性率很高,因此有必要在這些陽性區(qū)域內(nèi)實(shí)施必要的滅鼠防鼠措施,防治鉤端螺旋體病在鼠與人類之間的傳播,保障口岸安全。

        兩種PCR檢測方法所得結(jié)果一致。熒光定量PCR檢測精度高,周期短,操作簡單,也有成品試劑盒可用于檢測,適用于口岸一線對鉤端螺旋體的快速檢測;特異性PCR擴(kuò)增方法可以特異性擴(kuò)增鉤端螺旋體的某個(gè)片段基因,陽性擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)測序可以分析出鉤端螺旋體的種類,適用于對鉤端螺旋體血清型的進(jìn)一步研究。本研究發(fā)現(xiàn)的12例鉤端螺旋體經(jīng)同源性對比和聚類分析,結(jié)果為11例問號(hào)鉤端螺旋體和1例博氏鉤端螺旋體。2個(gè)基因同源性對比結(jié)果一致。其中,博氏鉤端螺旋體來自鷹潭國檢監(jiān)管區(qū),其他問號(hào)鉤端螺旋體則來自其他4個(gè)口岸及國檢監(jiān)管區(qū)。說明江西口岸及國檢監(jiān)管區(qū)鼠類感染的鉤端螺旋體為問號(hào)鉤端螺旋體和博氏鉤端螺旋體。

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        Detection and sequencing analysis ofLeptospiracarried by rats from Jiangxi Port and Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau’s supervision areas

        ZHAO Ming-hui, XU Tie-long, ZHANG Qiang, HU Ting,WANG Jian-jun, LIU Kai-ming, LIAO Yun

        (JiangxiInternationalTravelHealthcareCenter,Nanchang330002,China)

        To detect theLeptospiracarried by rats in Jiangxi Ports and Entry-Exit Inspection and Quarantine Bureau’s (CIQ) supervision areas, rats captured from 2 ports and 9 supervision areas of Jiangxi were tested during July to December, 2015. Fluorescent quantitative PCR and specificity PCR amplification were used to test the samples. There were 12 positive cases ofLeptospiraamong the 107 rats (11.2%), including 6 cases ofRattusnorvegicus, 3 cases ofRattuslosea, 1 case ofRattusflavipectusand 2 cases ofRattusniviventer, which were captured from Changbei airport, Kangtilong, Nanfeng, Yingtan and Ruijin CIQ’s supervision areas. Homology comparison and phylogenetic analysis showed that there were 11 cases ofLeptospirainterrogansand 1 case ofLeptospiraborgpetersenii. Therefore, the study could confirm the existence ofLeptospirainterrogansandLeptospiraborgpeterseniiin Jiangxi Ports and CIQ’s supervision areas. And those two kinds of PCR detection methods could be applied to theLeptospiradetection in ports and supervision areas.

        port; entry-exit inspection and quarantine bureau’s supervision areas; rats;Leptospira

        Liao Yun, Email: zhihan1214@sina.com

        廖蕓, Email:zhihan1214@sina.com

        江西國際旅行衛(wèi)生保健中心,南昌330002

        R377.5

        B

        1002-2694(2016)07-0674-05

        2016-01-07;

        2016-04-11

        DOI:10.3969/j.issn.1002-2694.2016.07.017

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