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        自噬和凋亡在甲型流感病毒和肺炎球菌協(xié)同感染小鼠模型中作用的初探

        2016-08-19 08:12:10秦臻王紅仁黃筱鈞羅俊游江舟李婉宜楊遠周琳琳李明遠
        中華實驗和臨床病毒學雜志 2016年2期
        關鍵詞:滴度流感病毒免疫組化

        秦臻 王紅仁 黃筱鈞 羅俊 游江舟 李婉宜 楊遠 周琳琳 李明遠

        610041成都,四川大學華西基礎醫(yī)學與法醫(yī)學院微生物學教研室

        自噬和凋亡在甲型流感病毒和肺炎球菌協(xié)同感染小鼠模型中作用的初探

        秦臻 王紅仁 黃筱鈞 羅俊 游江舟 李婉宜 楊遠 周琳琳 李明遠

        610041成都,四川大學華西基礎醫(yī)學與法醫(yī)學院微生物學教研室

        目的 建立甲型流感病毒(Inf1uenza A virus,IAV)和肺炎鏈球菌(Streptococcus pneumoniae,SP)協(xié)同感染小鼠模型,在該模型中初步探索自噬和凋亡的發(fā)生情況。方法 將IAV和SP以不同順序感染Ba1b/c小鼠,觀察其體重變化和死亡率,檢測其肺部IAV和SP滴度、病理改變情況,建立IAV~SP協(xié)同感染動物模型。使用免疫組化法檢測自噬特征蛋白LC3及凋亡特征蛋白Caspase-3的表達情況。結果 IAV~SP組第二次感染后24 h時小鼠肺部IAV和SP滴度最高,死亡率也明顯高于其他各組,48 h病理改變也最為嚴重。免疫組化結果顯示IAV感染早期(24 h~48 h)LC3蛋白表達出現(xiàn)峰值,Caspase-3緩慢上升;晚期(72 h~96 h)Caspase-3蛋白表達出現(xiàn)峰值,而LC3蛋白表達逐漸下降。結論 本研究成功建立了IAV~SP協(xié)同感染動物模型,模型鼠中自噬先于凋亡發(fā)生,為進一步研究自噬和凋亡在IAV~SP協(xié)同感染中的作用奠定了基礎。

        【主題詞】 甲型流感病毒;肺炎鏈球菌;自噬;凋亡;炎癥

        Fund program:Opening project of State Key Laboratory of Ora1 Diseases(SKLOD2015OF08)

        甲型流感病毒(IAV)是分節(jié)段的負鏈RNA包膜病毒,由于其極強的變異性,使得常規(guī)抗病毒藥物及流感疫苗的應用都受到一定限制[1,2]。在IAV感染引起的嚴重及死亡病例中,大都是因為繼發(fā)了細菌性感染,其中以肺炎鏈球菌 (Streptococcus pneumoniae,SP)為主[3]。近年來自噬(Autophagy)和凋亡(Apoptosis)的深入研究,為探索IAV感染導致嚴重的繼發(fā)性細菌感染的發(fā)生機制提供了新的突破點。

        自噬是一種高度保守的能降解細胞內衰老細胞器及外來入侵物質的細胞死亡方式,可在饑餓、缺氧及感染等情況下被激活,以維持細胞穩(wěn)態(tài)[4]。周智等人發(fā)現(xiàn)IAV感染A549細胞后可激活細胞自噬,而抑制自噬可阻礙病毒復制[5]。此后,體內外研究均證實抑制自噬可減輕IAV所致疾病程度[6,7]。凋亡是一種細胞的“自殺”死亡方式,最終可有效清除細胞本身及其內容物[8]。至今也有較多IAV感染可誘導凋亡發(fā)生、抑制凋亡可減輕疾病程度的報道[9,10]。本研究建立了 IAV~SP協(xié)同感染小鼠模型,并初步探索了模型中自噬和凋亡的發(fā)生情況,以期為進一步研究自噬和凋亡在IAV~SP協(xié)同感染模型中的作用機制奠定基礎。

        1 材料與方法

        1.1實驗材料 甲型流感病毒(A/Puerto Rico/8/ 34,H1N1)小鼠適應株和肺炎鏈球菌ATCC6303均由本教研室保存;9-11日齡SPF級受精雞蛋(濟南斯派福瑞);哥倫比亞血瓊脂基礎(Oxoid);MDCK細胞購于ATCC;DMEM培養(yǎng)基購自Gibco公司;標準胎牛血清(上海復蒙);兔抗鼠LC3B多克隆抗體(Abcam);兔抗鼠 Caspase-3多克隆抗體(Ce11 Signa1ing);生物素化羊抗兔IgG、HRP標記的親和素和DAB顯色試劑盒(武漢博士德);健康8~9周齡雌性Ba1b/c小鼠(四川大學實驗動物中心);Leica光學顯微鏡(ICC50 HD);SPSS19.0統(tǒng)計學分析軟件;GraphPad Prism 5.0數(shù)據(jù)分析作圖軟件;ImagePro P1us 6.0圖像分析軟件。

        1.2實驗方法

        1.2.1IAV和SP的培養(yǎng):使用10日齡雞胚復蘇并培養(yǎng)IAV,所得尿囊液的TCID50為10-5.1/0.1 m1,分裝儲存于-80℃。SP在加有3%~5%脫纖維兔血的哥倫比亞血瓊脂培養(yǎng)基中復蘇并培養(yǎng),培養(yǎng)物經(jīng)分光光度計測定其不同稀釋濃度下在600 nm處的吸光度值(A600值),并將各濃度SP菌液等體積均勻涂布于血平板上計數(shù)菌落數(shù),由此建立SP濃度-A600標準曲線,公式為y=214419x-293.05(y為每100 μ1中細菌個數(shù),x為A600值)。

        1.2.2半數(shù)致死量(LD50)測定:將IAV和SP分別稀釋不同梯度濃度攻擊小鼠,攻擊劑量均為每只小鼠0.1 m1,記錄各組小鼠的死亡數(shù)量,并利用Reed-Muench方法按表 1和表 2分別計算 IAV和 SP 的LD50。

        1.2.3IAV-SP協(xié)同感染動物:研究采用0.5 LD50IAV和0.3 LD50SP按不同順序和組合(表3)給小鼠滴鼻,每只小鼠滴100 μ1,每只鼻孔50 μ1。觀察動物死亡情況,并于每次感染后不同時間點處死小鼠,取肺組織檢測IAV/SP滴度、HE染色檢測病理改變、免疫組化檢測LC3/Caspase-3的表達情況。

        表1 IAV的LD50測定Tab.1 Determination of IAV LD50

        表2 SP的LD50測定Tab.2 Determination of SP LD50

        表3 IAV和SP以不同順序感染小鼠Tab.3 Mice cha11enged with IAV and/or SP in a sequence-manner

        1.2.4IAV/SP滴度檢測:將小鼠肺組織取出后用PBS洗3次,加入500 μ1 PBS進行勻漿,所得勻漿液經(jīng)4℃、10 000 r/min離心5 min。取上清進行IAV滴度檢測,將上清10倍連續(xù)稀釋后分別感染單層MDCK細胞,于72 h觀察細胞CPE情況,并用Reed-Muench法計算TCID50。沉淀用500 μ1 PBS重懸10倍連續(xù)稀釋后等量涂布至哥倫比亞血平板,24 h后對平板上的菌落進行計數(shù)。

        1.2.5HE染色檢測小鼠肺組織病理改變:感染IAV和/或SP 48 h后取小鼠肺組織,分別用4%PFA固定后行石蠟包埋,再制成5 μm厚切片,進行HE染色后普通光學顯微鏡下觀察病理改變。

        1.2.6免疫組化半定量分析LC3、Capase-3的表達:小鼠肺組織取出后用PBS洗3次,4%PFA中固定后用石蠟包埋,制成5 μm厚切片。按1∶150(抗-Caspase-3)或1∶250(抗-LC3)滴加一抗,再按1∶100滴加生物素化羊抗兔IgG,然后加1∶100的HRP標記的親和素,DAB顯色后用蘇木素復染。染色后顯微鏡下觀察和拍照,并用ImagePro P1us 6.0軟件對陽性區(qū)域進行累積光密度(IOD)、陽性區(qū)域面積(Area)測量,通過光密度總和(IOD sum)/陽性區(qū)域面積總和(Area sum)來反應蛋白表達情況[11]。

        1.3統(tǒng)計學方法 數(shù)據(jù)以Mean±SD表示,使用非配對t檢驗進行組間差異比較,P<0.05表示差異有統(tǒng)計學意義。Kap1an-Meier曲線用于小鼠生存分析,所有數(shù)據(jù)均使用SPSS進行統(tǒng)計學分析。

        1.4生物安全 本研究在四川大學基礎醫(yī)學與法醫(yī)學院微生物學教研室生物安全二級動物實驗室進行。

        2 結果

        2.1IAV~SP協(xié)同感染動物模型建立 IAV~SP組在第二次攻擊后48 h內死亡,IAV組和SP組小鼠分別有44.45%和20%的死亡率,IAV+SP組死亡率為50%,而SP~IAV組小鼠在第二次攻擊后死亡率為0,對照組無小鼠死亡(圖1)。

        圖1 IAV和SP以不同方式感染小鼠后死亡情況Fig.1 Surviva1 curves for IAV and SP infection in different approaches in different groups

        A:IAV~SP組,B:IAV+SP組,C:IAV組,D:SP組,E:對照組圖2 IAV~SP協(xié)同感染小鼠模型感染48 h后肺部病理變化(400×)A:IAV~SP group,B:IAV+SP group,C:IAV group,D:SP group,E:Contro1 groupFig.2 Patho1ogica1 changes from synergistic infection of IAV~SP 48 hours(400×)

        圖3 LC3/Caspase-3免疫組化半定量測定Note:the mice were infected with IAV,the 1ungs were removed at 1,2,3,4 and 7 days 1ater(n=4),and LC3(A)and Caspase-3(B)were measured with immunohistochemica1(IHC).The resu1ts were checked under the microscope magnifying 400;5 randomsights of each samp1e were se1ected.ns:difference was not statistica11y significant,?P<0.05,??,???P<0.01Fig.3 LC3/Caspase-3 ana1ysis of IOD sum/Area sum with IHC

        2.2IAV/SP滴度變化 小鼠在單獨感染病毒后第5天IAV滴度達到峰值,隨后緩慢下降,而在第二次感染SP后IAV滴度出現(xiàn)上升;IAV+SP組及SP~IAV組分別在感染24 h時IAV滴度達到峰值,隨后下降。IAV~SP組小鼠24 h和48 h的SP滴度均明顯高于IAV+SP和 SP組,其中 SP組滴度最低。

        2.3各組感染小鼠肺部病理變化情況 IAV~SP 組48 h肺部病理損傷最為嚴重,鏡下可見全肺肺泡結構消失,巨噬細胞、中性粒細胞等大量炎性細胞浸潤(圖2,A);IAV+SP組雖也有上述病理改變,但病變范圍較IAV~SP組?。▓D2,B);IAV組小鼠肺間質具有較重病理改變,但仍可見部分細支氣管、肺泡等完整結構(圖2,C);而SP組病理改變較輕(圖2,D)。

        2.4IAV感染小鼠后自噬和凋亡的發(fā)生情況初探

        在感染2 d內,LC3表達量出現(xiàn)峰值,隨后下降,第7天時與對照組無明顯差異(圖3 A);Caspase-3在感染后第1天表達量與對照組無明顯差異,緩慢上升并于第4天出現(xiàn)峰值(圖3 B)。

        3 討論

        IAV感染后繼發(fā)性細菌性肺炎是IAV所致嚴重及死亡病例的主要原因之一,所以研究IAV和肺炎鏈球菌等常見協(xié)同感染細菌[3]在宿主體內的相互作用機制,有助于尋找對抗IAV感染的有效預防和治療的新方法。在本研究中,我們通過將IAV和/ 或SP按照不同順序和組合感染小鼠,觀察每組小鼠的疾病過程和死亡情況,檢測不同時間點的肺部IAV/SP滴度及病理變化,以建立IAV~SP協(xié)同感染小鼠模型。

        研究結果顯示IAV感染小鼠后第5天開始死亡,與IAV滴度升高趨勢一致,而繼發(fā)感染SP后小鼠在48 h內全部死亡。IAV~SP組肺部SP滴度明顯高于SP組或IAV+SP組,且肺部病理損傷最為嚴重,說明IAV感染后使得SP更易入侵機體,這種病毒-細菌協(xié)同作用模式比其他各組感染模式更易造成嚴重甚至小鼠死亡。我們認為自噬在IAV感染早期可能對機體起保護作用,而IAV感染后期引發(fā)的凋亡導致機體更易受到細菌入侵,于是我們在IAV感染后的不同時間點對自噬和凋亡的特征性蛋白LC3/Caspase-3的表達情況進行了免疫組化半定量分析。初步結果顯示IAV感染早期確實發(fā)生了自噬,這可能是由于病毒利用了自噬這一機制進行自身復制,反過來自噬對機體起著保護作用[12];而感染后期凋亡反應占據(jù)主要地位,機體免疫力降低,此時再受到細菌入侵,導致嚴重后果。

        此外,我們還發(fā)現(xiàn)先感染SP、7 d后再感染IAV的小鼠無一死亡,我們認為可能是由于SP感染激活了自噬所致。周智的博士論文中也顯示,無論是增強或減弱細胞自噬作用,IAV滴度均下降[13]。Wo1f等發(fā)現(xiàn)SP的溶素是保護機體免于肺炎鏈球菌性肺炎后IAV感染的關鍵因素[14],而Li等發(fā)現(xiàn)SP的溶血素是激活自噬的關鍵因子[15]??傊琒P對機體感染IAV具有一定的保護作用,可能是預防流感的一種新策略。

        本研究成功建立了IAV~SP協(xié)同感染動物模型,初步探索了IAV和SP協(xié)同感染后對自噬和凋亡的影響,率先在動物體內初步證實了“IAV感染早期以發(fā)生自噬為主,而晚期以發(fā)生凋亡為主”的假說。我們將在IAV-SP協(xié)同感染小鼠模型中對自噬與凋亡進行調控,深入研究它們在流感和繼發(fā)的細菌感染發(fā)病機制中的作用也有可能發(fā)現(xiàn)防控流感及其繼發(fā)感染的新策略。

        [1] Smith A,McCu11ers JA.Secondary Bacteria1 Infections in Inf1uenza Virus Infection Pathogenesis.Curr Top Microbio1 Immuno1,2014,385:327-356.doi:10.1007/82_2014_394.

        [2] McCu11ers JA.Inf1uenza.Springer-Ver1ag Ber1in Heide1berg,2012:1199-1208.doi:10.1007/978-3-642-02202-9_112.

        [3] McCu11ers JA.The co-pathogenesis of inf1uenza viruses with bacteria in the 1ung.Nat Rev Microbio1,2014,12:252-262. doi:10.1038/nrmicro3231.

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        [5] Zhou Z,Jiang XJ,Liu D,et a1.Autophagy is invo1ved in inf1uenza A virus rep1ication.Autophagy,2009,5:321-328. doi:10.4161/auto.5.3.7406.

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        [7] Hahn DR,Na CL,Weaver TE.Reserve autophagic capacity in a1veo1ar epithe1ia provides a rep1icative niche for inf1uenza a virus.Am J Respir Ce11 Mo1 Bio1,2014,51:400-412.doi:10.1165/rcmb.2013-0437OC.

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        [10] Liu B,Meng D,Wei T,et a1.Apoptosis and pro-inf1ammatory cytokine response of mast ce11s induced by inf1uenza A viruses. P1oS One,2014,9:e100109.doi:10.1371/journa1.pone. 0100109.

        [11] 于萍,步宏,王華,等.免疫組化結果的圖像分析與人工計數(shù)方法的對比研究生物醫(yī)學工程學雜志,2003,20:288-290.

        [12] DongX,B Levine.Autophagy and viruses:adversaries or a11ies?.J Innate Immun,2013,5:480-493.doi:10.1159 /000346388.

        [13] 周智.流感病毒感染與細胞自噬間相互作用的研究.博士論文.中國農(nóng)業(yè)大學,2007:45-47.

        [14] Wo1f AI,Strauman MC,Mozdzanowska K,et a1.Pneumo1ysin expression by streptococcus pneumoniae protects co1onized mice from inf1uenza virus-induced disease.Viro1ogy,2014,462:254-265.doi:10.1016/j.viro1.2014.06.019.

        [15] Li P,Shi J,He Q,et a1.Streptococcus pneumoniaeInduces Autophagy through the Inhibition of the PI3K-I/Akt/mTOR Pathway and ROS Hypergeneration in A549 Ce11s.PLoS One,2015,10:e0122753.doi:10.1371/journa1.pone.0122753.

        Preliminary exploring of autophagy and apoptosis in Animal model of synergistic infection with influenza A virus and Streptococcus pneumoniae

        Qin Zhen,Wang Hongren,Huang Xiaojun,Luo Jun,You Jiangzhou,Li Wanyi,Yang Yuan,Zhou Linlin,Li Mingyuan Department of Microbiology,West China School of Preclinical and Forensic Medicine,Sichuan University,Chengdu 610041,China

        Li Mingyuan,Email:lmy3985@sina.com

        Objective To estab1ish an anima1 mode1 for synergistic infection of Inf1uenza A virus (MIAetVh)odasnd Streptococcus pneumonia(SP)and pre1iminari1y exp1ore the ro1es of autophagy and apoptosis. Ba1b/c mice were administered with IAV and/or SP in different sequences.Morta1ities were observed.Titers of IAV and SP,patho1ogica1 changes in the 1ungs were ana1yzed at certain time points.The expressions of LC3,Caspase-3 were assayed by immunohistochemica1 staining.Results Mice infected IAV seven days ahead of SP,compared with those from other groups,ended up with the highest morta1ity rate and IAV/SP titers 24 hours after the second cha11enge,they a1so exhibited the most severe patho1ogica1 changes 48 hours after the second cha11enge.Immunochemistry assay showed that the peak of LC3 expression appeared at the ear1y stage of IAV infection fo11owed by a decrease in a time-dependent manner,whi1e Caspase-3 reached the highest expression at the 1ate stage of IAV infection.Conclusions An IAV-SP synergistic infection mouse mode1 has been estab1ished.The deve1opment of autophagy was ear1ier than that of apoptosis in this pre1iminary exp1oring.Our study has 1aid a so1id foundation for further research on the ro1es of autophagy and apoptosis in IAV-SP co-infection in vivo,as we11 as verified our hypothesis that autophagy wou1d occur ear1ier than apoptosis during the intruding of IAV.

        Inf1uenza A virus;Streptococcus pneumoniae;autophagy;apoptosis;inf1ammation

        口腔疾病研究國家重點實驗室開放課題(SKLOD2015OF08)

        李明遠,Emai1:1my3985@sina.com

        10.3760/cma.j.issn.1003-9279.2016.02.020

        2015-11-21)

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