于思明,裴春鵬,代麗娟,郭丹丹
(1.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第一醫(yī)院腎病科,哈爾濱 150040;2.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第二醫(yī)院心內(nèi)一科)
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·基礎(chǔ)研究·
補腎健骨方對腎性骨病模型大鼠鈣磷代謝紊亂與股骨密度的影響
于思明1,裴春鵬1,代麗娟1,郭丹丹2
(1.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第一醫(yī)院腎病科,哈爾濱 150040;2.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第二醫(yī)院心內(nèi)一科)
[摘要]目的探討補腎健骨方對腎性骨病模型大鼠鈣磷代謝紊亂與股骨密度的影響。方法采用0.75%腺嘌呤聯(lián)合高磷飲食飼喂法建立腎性骨病大鼠模型,按體重從輕到重依次編號,采用隨機數(shù)字表分為健康組、模型組、補腎健骨低劑量組、補腎健骨高劑量組、骨化三醇對照組,分別給予相應(yīng)藥物灌胃8周。檢測各組大鼠血清肌酐(Scr)、尿素氮(BUN)、堿性磷酸酶(ALP)、血鈣(Ca2+)、血磷(P3-)、全段甲狀旁腺激素(iPTH)水平,在骨密度儀上測定股骨整體骨密度(W-BMD)、松質(zhì)骨骨密度(T-BMD)及皮質(zhì)骨骨密度(C-BMD),并觀察股骨組織形態(tài)學(xué)變化。結(jié)果補腎低劑量、高劑量組BUN水平低于模型組(P<0.05),且低于骨化三醇對照組(P<0.05);補腎低劑量、高劑量組Scr水平低于模型組(P<0.01),且低于骨化三醇對照組(P<0.01);補腎高劑量組血清Ca2+水平高于模型組(P<0.01),低于骨化三醇對照組(P<0.01),補腎低劑量組血清Ca2+水平與模型組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);補腎低劑量組、高劑量組血清P3-水平均低于模型組(P<0.01),且低于骨化三醇對照組(P<0.01);補腎低劑量組、高劑量組及骨化三醇對照組ALP水平均低于模型組(P<0.01),組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);補腎低劑量組、高劑量組及骨化三醇對照組iPTH水平均低于模型組(P<0.01),組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);補腎低劑量組、高劑量組及骨化三醇對照組大鼠W-BMD與C-BMD高于模型組(P<0.01),組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)論補腎健骨方在保護腎性骨病模型大鼠的腎功能、降低血磷方面具有一定作用,同時有助于提高大鼠股骨整體骨密度與皮質(zhì)骨骨密度。
[關(guān)鍵詞]腎性骨營養(yǎng)障礙;磷代謝障礙;骨密度;腎病治法; 大鼠, Wistar
隨著慢性腎臟病(CKD)患者生存時間的延長,腎性骨病(ROD)逐漸成為CKD患者常見而嚴重的并發(fā)癥之一,ROD常導(dǎo)致CKD患者的骨痛、骨骼畸形,直接影響CKD患者的生存質(zhì)量。腎性骨病的發(fā)生源于腎精虧虛,又與瘀血、痰濁、水濕等病理因素膠著固結(jié),故難以祛除?;谀I性骨病的發(fā)病機制,我們以補肝腎、強筋骨、化瘀泄?jié)釣橹蝿t,組成補腎健骨方,對其干預(yù)腎性骨病的作用進行了初步研究。
1材料與方法
1.1實驗動物Wistar大鼠,雌雄各半,體質(zhì)量(200±20)g,由吉林大學(xué)實驗動物中心提供,動物許可證號:SCXK-(吉)2013-0001。
1.2藥品與試劑補腎健骨方由鹽杜仲,酒大黃,煅牡蠣,土鱉蟲組成,由黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)附屬第一醫(yī)院制劑室煎煮、濃縮制得。骨化三醇由上海羅氏制藥有限公司生產(chǎn),腺嘌呤購自上海源聚生物科技有限公司。
1.3主要儀器Hologic Discovery骨密度儀由美國Hologic公司生產(chǎn),超低溫冰箱由中科美菱低溫科技有限責任公司生產(chǎn)。
1.4造模與分組給藥方法參考相關(guān)文獻方法[1-2],采用0.75% 腺嘌呤聯(lián)合高磷飲食飼喂法(腺嘌呤含量0.75%,磷含量1.03%)建立腎性骨病大鼠模型,持續(xù)腺嘌呤及高磷飲食4 周,繼續(xù)以不含腺嘌呤的高磷飲食飼喂4 周。將大鼠按體重從輕到重依次編號,采用隨機數(shù)字表分為健康組、模型組、補腎健骨低劑量組、補腎健骨高劑量組、骨化三醇對照組,每組10只。補腎健骨低劑量組、補腎健骨高劑量組分別給予補腎健骨方(生藥)1.2 g/kg、2.4 g/kg灌胃,骨化三醇對照組給予骨化三醇0.009 μg/200 g濃度灌胃,灌胃容量均為1 mL/100 g,健康組、模型組給予等量0.9%氯化鈉注射溶液灌胃,1次/d,持續(xù)8 周。
1.5血清學(xué)指標測定連續(xù)給藥8周后予水合氯醛腹腔注射麻醉,心臟采血處死大鼠,收集血液,離心后保存在-80 ℃低溫冰箱待檢。采用全自動生化分析儀檢測血清肌酐(Scr)、尿素氮(BUN)、堿性磷酸酶(ALP)、血鈣(Ca2+)、血磷(P3-),以免疫化學(xué)發(fā)光法檢測全段甲狀旁腺激素(iPTH)。
1.6股骨密度及股骨病理檢測從大鼠腹股溝處切開、分離雙側(cè)股骨,剔除肌肉組織及肌腱,兩端離斷,完整取出股骨,以0.9%氯化鈉注射溶液浸濕紗布包裹,置于-80 ℃低溫冰箱待檢。參考文獻方法[3],檢測時選取左側(cè)股骨遠端1/4作為松質(zhì)骨,中段1/2作為皮質(zhì)骨,將股骨置于Hologic Discovery骨密度儀上分別測定整體骨密度(W-BMD)、松質(zhì)骨骨密度(T-BMD)及皮質(zhì)骨骨密度(C-BMD)。取右側(cè)股骨,離斷遠端股骨頭部,置入EDTANa2脫鈣液中浸泡3周,包埋,制成石蠟切片,常規(guī)脫蠟至水,HE染色,在光鏡下觀察股骨組形態(tài)結(jié)構(gòu)變化。
1.7統(tǒng)計學(xué)處理采用SPSS 13.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,兩組間比較采用t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2結(jié)果
2.1各組大鼠存活情況及Scr、BUN、ALP檢測結(jié)果 第8周末健康組、模型組、補腎低劑量組、補腎高劑量組、骨化三醇對照組分別存活10、7、9、8、7只。檢測結(jié)果見表1。
組別鼠數(shù)(只)BUN(mmol/L)Scr(μmol/L)ALP(U/L)健康組105.31±1.5428.14±5.20121.50±14.94模型組718.77±4.42183.55±17.33192.35±17.82補腎低劑量組912.49±3.76ab104.30±11.29cd152.33±13.70a補腎高劑量組812.18±3.35ab107.01±12.84cd154.66±15.80a骨化三醇對照組718.05±4.63178.62±16.71147.44±16.69a
注: 與模型組比較,aP<0.05,cP<0.01;與骨化三醇對照組比較,bP<0.05,dP<0.01
2.2各組大鼠血清Ca2+、P3-、iPTH的比較補腎高劑量組及骨化三醇對照組血清Ca2+水平高于模型組(P<0.01),骨化三醇對照組高于補腎高劑量組(P>0.05);補腎低劑量組、高劑量組血清P3-水平低于模型組(P<0.01),且低于骨化三醇對照組(P<0.01);補腎低劑量組、高劑量組及骨化三醇對照組iPTH水平低于模型組(P<0.01),組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見表2。
組別鼠數(shù)(只)Ca2+(mmol/L)P3-(mmol/L)iPTH(pg/ml)健康組102.86±0.132.17±0.227.74±2.50模型組71.63±0.253.90±0.4918.25±3.92補腎低劑量組91.70±0.332.56±0.34ac11.73±1.55a補腎高劑量組82.28±0.26ab2.68±0.51ac10.86±1.33a骨化三醇對照組72.62±0.30a3.24±0.36a10.67±1.01a
注: 與模型組比較,aP<0.01;與骨化三醇對照組比較,bP<0.05,cP<0.01
2.3各組大鼠股骨密度檢測結(jié)果比較補腎低劑量組、高劑量組及骨化三醇對照組W-BMD、C-BMD水平高于模型組(P<0.01),補腎高劑量組、骨化三醇對照組T-BMD水平低于模型組(P<0.01),組間比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),見表3。
2.4各組大鼠股骨組織形態(tài)變化健康組骨皮質(zhì)及骨髓腔無明顯變化,骨細胞分布均勻。模型組大鼠股骨皮質(zhì)厚度變薄,骨髓腔變大,骨陷窩增大,骨小梁數(shù)增多,脂肪空泡數(shù)減少,骨細胞數(shù)量增多,呈條束狀堆積分布。骨化三醇對照組骨皮質(zhì)可見纖維細胞增生,骨陷窩較大,骨小梁數(shù)增多。補腎低劑量組、高劑量組骨細胞數(shù)量、排列接近正常,骨陷窩較小,骨小梁數(shù)增多。
組別鼠數(shù)(只)W-BMDC-BMDT-BMD健康組100.1627±0.00290.1610±0.00320.1404±0.0031模型組70.1349±0.00150.1308±0.00440.1585±0.0029補腎低劑量組90.1563±0.0020a0.1477±0.0024a0.1573±0.0045ab補腎高劑量組80.1578±0.0026a0.1483±0.0031a0.1502±0.0032ab骨化三醇對照組70.1552±0.0022a0.1464±0.0036a0.1496±0.0025
注: 與模型組比較,aP<0.01;與骨化三醇對照組比較,bP<0.01
3討論
CKD已成為威脅全球人類健康的一類重大疾病。在CKD這一患者群體中,礦物質(zhì)和骨代謝紊亂十分常見,隨著腎功能的不斷減退,該紊亂逐漸加重最終導(dǎo)致嚴重的后果[4-5]。隨著腎臟替代治療技術(shù)的發(fā)展,CKD甚至終末期腎病患者的生存時間顯著延長,腎性骨病的發(fā)病率也隨之上升[6-7]。近年研究發(fā)現(xiàn),腎性骨病不但會導(dǎo)致骨鈣減少、骨質(zhì)疏松,還與CKD患者的心血管鈣化和透析患者死亡率密切相關(guān)[8]。因此,加強對CKD患者鈣磷代謝紊亂的防控,積極治療腎性骨病具有比較重要的現(xiàn)實意義。
腎性骨病是由臟腑內(nèi)傷導(dǎo)致的骨病,故在病因病機上與一般骨病有所不同。根據(jù)中醫(yī)學(xué)臟腑相關(guān)理論,“肝腎同源”,肝藏血,主筋,腎藏精,主骨,精血互生,筋骨相連,密不可分。又如《素問·五臟生成篇》言:“腎之合骨也,其榮發(fā)也,其主脾也”。故腎性骨病雖病位在骨,但其本在腎,又與肝脾相關(guān),因此在治療上不應(yīng)局限于補腎填精,還應(yīng)注意調(diào)補肝腎以強筋骨,同時助脾氣運化,以氣血充養(yǎng)腎精。此外,慢性腎臟病患者多兼有濕濁、瘀血、痰飲等,還需針對上述病理因素輔以通腑泄?jié)?、清利濕熱、活血化瘀等治療方法、才能取得較好的治療效果。補腎健骨方中鹽杜仲補肝腎、強筋骨,是治療骨質(zhì)疏松的常用藥物。有研究顯示,單味杜仲可抑制骨吸收,提高骨的強度,對去勢大鼠的骨質(zhì)疏松具有一定的防治作用[9]。酒大黃活血化瘀,排毒泄?jié)?;煅牡蠣軟堅散結(jié),澀腸收斂,與酒大黃同用有利于磷及尿毒癥毒素的排出?,F(xiàn)有的研究表明,高磷血癥不但與腎性骨病密切相關(guān),而且CKD患者的血磷水平與冠狀動脈鈣化程度呈正相關(guān),是心血管事件與死亡的獨立影響因素[10]。土鱉蟲破血逐瘀、續(xù)筋接骨,合大黃取大黃蟅蟲丸祛瘀生新之意。該方經(jīng)長期臨床使用,具有比較滿意的療效。
本研究采用腺嘌呤聯(lián)合高磷飲食成功建立腎性骨病大鼠模型,其造模方法較5/6腎切除法鈣磷代謝紊亂更為突出,因高磷飲食可以對骨代謝產(chǎn)生直接影響,與人類腎性骨病特點比較接近。有研究表明,腺嘌呤能較快地制造大鼠腎性骨病模型,對骨組織沒有直接影響[1]。其腎臟損傷與大量腺嘌呤形成的-2,8-二羥腺嘌呤有關(guān),后者系一難溶晶體,沉積于腎小管可造成小管損傷[11]。本研究觀察到,成模后,各組大鼠Scr、BUN上升,補腎健骨方2個劑量組均能降低大鼠血清Scr、BUN水平,骨化三醇對照組對大鼠血清Scr、BUN沒有明顯作用,提示骨化三醇不能抑制腺嘌呤對腎小管的損傷,而補腎健骨方具有腎小管保護作用。ALP為骨代謝產(chǎn)物,對腎性骨病的診斷有一定參考價值。本研究中,造模大鼠ALP水平上升,補腎健骨方與骨化三醇均能降低ALP水平,提示兩者均可對腎性骨病的骨代謝異常產(chǎn)生影響。高磷血癥是血管鈣化的獨立危險因素,與CKD患者的病死率呈正相關(guān),以往多采用含鈣的磷結(jié)合劑治療,但與不含鈣的磷結(jié)合劑相比,其引起血管鈣化的危險性更高[12]。在糾正鈣磷代謝紊亂方面,補腎2個劑量組均展現(xiàn)了較好的降低血磷的作用,且優(yōu)于骨化三醇,可能與大黃、牡蠣直接從腸道排除血磷的作用有關(guān),杜仲、土鱉蟲是否也通過其他機制降低了血磷水平,有待于在后續(xù)研究中探討。補腎低劑量組對血鈣水平無明顯影響,高劑量組具有升高血鈣的作用,但不及骨化三醇組。分析方中含鈣藥物為牡蠣,但在煎煮后其吸鈣收能力有限,故在升高血鈣方面與骨化三醇比較不具有優(yōu)勢,同時表明補腎健骨方降低血磷的作用并非依賴于補充鈣質(zhì),值得進一步探究。在降低iPTH水平方面,補腎組與骨化三醇的作用相當。對骨組織形態(tài)學(xué)的觀察結(jié)果顯示,腺嘌呤聯(lián)合高磷飲食可導(dǎo)致大鼠皮質(zhì)骨BMD下降,厚度變薄,松質(zhì)骨BMD上升,因該方法導(dǎo)致的骨病為骨高轉(zhuǎn)換模型[2],松質(zhì)骨與皮質(zhì)骨的骨形成、吸收速率不同。補腎健骨方可以改善骨組織形態(tài)學(xué)變化,其作用機制可能與改善腎功、降低血磷及iPTH有關(guān)。
本研究對補腎健骨方干預(yù)腎性骨病的作用進行了初步研究,該方在保護腎功、降低血磷方面具有一定作用,同時有助于提高皮質(zhì)骨骨密度,其作用機制有待于后續(xù)研究。
參考文獻
[1]吳志良,陽惠林,趙波,等.大鼠腎性骨病模型的建立[J].江蘇醫(yī)藥,2013,39(9):1012-1014.
[2]張豪,孟彥,金小冬,等.高磷聯(lián)合腺嘌呤飲食誘導(dǎo)大鼠高轉(zhuǎn)化型腎性骨病模型的建立與分析[J].中國骨質(zhì)疏松雜志,2014,20(5):485-489.
[3]白亞玲,徐金升,韓佩桐,等.慢性腎衰竭大鼠股骨cbfal表達與骨密度關(guān)系的研究[J].中國骨質(zhì)疏松雜志,2014,20(6):653-657.
[4]Dempster DW,Compston JE,Dreznet Mk,et al.Standardized nomenclature,symbols,and units for bone histomorhometry:a 2012 update of the report of the ASBMR Histomorphometry Nomenclature Committee[J].J Bone Miner Res,2013,28(1):2-17.
[5]陳孜瑾,陳楠.從KDOQI到KDIGO指南解讀慢性腎臟病礦物質(zhì)和骨異常[J].中國實用內(nèi)科雜志,2011,31(12):927-929.
[6]周蓉,張蕓,蔣更如,等.慢性腎臟病非透析患者營養(yǎng)狀況的評價及分析[J].中國臨床保健雜志,2010,13(4):360-363.
[7]黃業(yè)華,任偉,楊沐,等.慢性腎臟病患者血清同型半胱氨酸的變化及影響因素[J].中國臨床保健雜志,2011,14(1):11-13.
[8]Roman-Garcia P,Carrillo-Lopez N,F(xiàn)ernandez-Martin JL,et al.High phosphorus diet induces vascular calcification,a related decrease in bone mass and in the aortic gene expression[J].Bone,2010,46(1):121-128.
[9]蔡建平,張賢,夏樹林,等.杜仲對去勢大鼠股骨重、礦物含量、脛骨抗彎力及血清堿性磷酸酶的影響[J].時珍國醫(yī)國藥,2009,20(8):1967-1969.
[10] 印獲,章旭,劉必成.慢性腎臟病血管鈣化治療新進展[J].中國血液凈化,2014,13(9):650-653.
[11] Zhao YY,liu J,Cheng XL,et,al.Urnary metabonomics study on biochemical changes in an experimental model of chronic renal failure by adenine based on UPLC Q-TOF/MS[J].Clin Chim Acta,2012,413(5/6):642-649.
[12] 生杰,趙久陽.慢性腎臟病患者的血管鈣化[J].中國血液凈化,2012,11(1):49-50.
Effects of Bushen Jiangu Decoction on calcium and phosphorus metabolism and femoral density of renal osteodystrophy ratsYuSiming*,PeiChunpeng,DaiLijuan,GuoDandan(*DepartmentofNephrologytheFirstAffiliatedHospitalofHeilongjiangCollegeofTraditionChineseMedicine,Harbin150040,China)
[Abstract]ObjectiveTo investigate the effect of Bushen Jiangu Decoction on calcium and phosphorus metabolism and femoral density of renal osteodystrophy rats. MethodsTo establish the rat model of renal osteodystrophy by 0.75% adenine combined with high phosphorus diet feeding method.Rats were numbered according to the weight from light to heavy. All rats randomly divided into normal control group, model group, low dose group, high dose group,and calcitriol group in accordance with the random number table, the corresponding medicine were gavaged for 8 weeks. The levels of iPTH, BUN, P3-, ALP, Ca2+and Scr of rats were detected; and bone mineral density, cancellous bone mineral density and cortical bone mineral density were measured. ResultsThe serum BUN and Scr level of low dose and high dose group were lower than those in model group and calcitriol control group (P<0.05). The serum Ca2 +level of high dose group was higher than model group (P<0.01), and lower than calcitriol group (P<0.01).There was no statistically significant difference between low dose group and model group (P>0.05). The serum level of P3 of low dose group and high dose group were less than that of model group and calcitriol group (P<0.01). The ALP and iPTH levels of low dose group, high dose group and calcitriol group were lower than those of model group (P<0.01), but the differences among three groups had no statistical significance (P>0.05). ConclusionBushen Jiangu Decoction can protect renal function and reduce blood phosphorus for renal osteodystrophy rats, while can help to improve the rat femur overall bone density and cortical bone mineral density.
[Key words]Renal osteodystrophy;Phosphorus metabolism disorders;Bone density;Kidney disease therapeutic methods; Rats, wistar
(收稿日期:2015-10-10)
Corresponding author:Guo Dandan,Email:guodan9634@sohu.com
中圖分類號:R681.1
文獻標識碼:A
DOI:10.3969/J.issn.1672-6790.2016.01.025
作者簡介:于思明,博士,副主任醫(yī)師,碩士生導(dǎo)師,Email:simingyu1978@sina.com通信作者:郭丹丹,副主任醫(yī)師,Email:guodan9634@sohu.com
基金項目:黑龍江省教育廳科學(xué)技術(shù)研究項目(12541771)