趙 紅,宋玉竹
(1.昆明理工大學生命科學學院,云南昆明 650500;2.中國科學院昆明動物研究所,云南昆明 650500)
醋酸鉛對人和小鼠瞬時受體電位A1離子通道的抑制作用
趙 紅1,2,宋玉竹1
(1.昆明理工大學生命科學學院,云南昆明 650500;2.中國科學院昆明動物研究所,云南昆明 650500)
目的 研究醋酸鉛對瞬時受體電位A1(TRPA1)通道的影響。方法 應用細胞內鈣熒光成像系統(tǒng)檢測原代培養(yǎng)的小鼠背根神經節(jié)(DRG)神經元上TRPA1(mTRPA1)通道和外源性表達在HEK293細胞上的人源TRPA1(hTRPA1)和mTRPA1通道介導的細胞外鈣內流;應用雙電極電壓鉗技術記錄外源性表達在爪蟾卵母細胞上的hTRPA1通道介導的電流。結果 醋酸鉛3.0和10.0 μmol·L-1對TRPA1介導的小鼠DRG神經元外鈣內流的抑制率分別為(36.7±4.1)%和(79.4±3.1)%;醋酸鉛濃度依賴性地抑制爪蟾卵母細胞上hTRPA1通道介導的電流,醋酸鉛0.3,1.0,3.0,10.0和30.0 μmol·L-1對+80 mV處電流的抑制率分別為(1.0±0.7)%,(11.6±0.8)%,(57.7±3.2)%,(93.6±2.6)%和(93.2±2.7)%,其IC50為2.4 μmol·L-1。結論 TRPA1通道是鉛的內源性作用靶點,低濃度醋酸鉛可抑制TRPA1通道。
醋酸鉛;背根神經節(jié);神經元;瞬時受體電位A1通道;電壓鉗技術;鈣成像
鉛作為一種常見的工業(yè)毒物和環(huán)境污染物,對人體健康危害很大。人長期接觸低濃度鉛造成體內蓄積,會導致造血、泌尿、生殖、免疫、神經、心血管和消化等系統(tǒng)長期慢性的損傷。血鉛水平1 mg·L-1時即可表現(xiàn)出行為改變。鉛的神經毒性可導致包括感覺功能、運動能力、注意力、視聽記憶和情感狀態(tài)等在內的神經功能變化[1-2]。鉛主要影響中樞神經系統(tǒng)[3],而外周神經系統(tǒng)是慢性鉛中毒最主要的靶器官之一[4]。鉛中毒性外周神經疾病的臨床研究也較多,在臨床鉛中毒案例中,有很大比例的患者出現(xiàn)了觸痛覺障礙[5]。
瞬時受體電位(transient receptor potential,TRP)A1通道是位于外周神經系統(tǒng)上的離子通道,屬于TRP通道中的一種。TRPA1通道可被多種刺激性化學物質所激活,如異硫氰酸丙酯(propyl iso?thiocyanate,AITC)和甲醛等[6],被認為是人體的一個化學感受器[7]。環(huán)境污染物中也有多種成分能激活TRPA1通道,如丙烯醛、直徑≤2.5 μm的可入肺顆粒物和某些重金屬離子等[8]。作為一個組織傷害感受器的通道,敲除TRPA1通道基因小鼠對傷害性化學刺激的感受顯著降低[9-10],表明此通道與痛覺感受相關。此外,TRPA1通道還與溫度感受和機械感受相關,參與多種重要的生理和病理過程[11]。
鉛的神經毒性涉及到多種信號傳導系統(tǒng)和離子通道。鉛作用于神經元細胞上多種離子通道,如鉀、鈉和鈣通道等,但是關于鉛對TRPA1通道的作用國內外未見報道。本研究集體已觀察到鉛對小鼠背根神經節(jié)(dorsal root ganglion,DRG)神經元上TRPA1通道的抑制作用。本研究進一步將小鼠TRPA1(mTRPA1)和人TRPA1(hTRPA1)通道在HEK293細胞和爪蟾卵母細胞中表達,研究醋酸鉛對TRPA1通道的作用。
1.1 動物、細胞、試劑和主要儀器
C57BL/6新生小鼠,中國科學院昆明動物研究所,動物許可證號:11401300006046;非州爪蟾,中國科學院上海生命科學學院贈送。HEK293細胞:中國科學院昆明動物研究所。mTRPA1和hTRPA1重組質粒,中國科學院昆明動物研究所楊建研究員實驗室。醋酸鉛(西隴化工股份有限公司);DMEM和DMEM/F12(美國Corning公司);膠原蛋白酶P(瑞士Roche公司);Hanks平衡鹽溶液(HBSS,北京索萊寶科技有限公司);胰蛋白酶和青/鏈霉素(德國BI公司);小牛血清和胎牛血清(美國Gibco公司);NaCl,KCl,MgCl2,HEPES和CaCl2(中國生工生物公司);Fura-2,F(xiàn)-127和G418(美國Invitrogen公司);轉染試劑LipofectamineTM2000(美國Life Technology公司);AITC(美國Sigma公司);辣椒素和三卡因(中國阿拉丁公司)。CSMZ-168型解剖鏡(德國Motic公司);5702型水平離心機和5424R型超速離心機(德國Eppendorf公司);IX71型鈣熒光成像系統(tǒng)(日本Olympus公司);230V細胞培養(yǎng)箱(美國Thermo公司);LS-172細菌培養(yǎng)箱(菲律賓LabServ公司);鈣離子熒光激發(fā)顯微系統(tǒng)(Flexstation3,美國Molecular Devices公司);1440A雙電極電壓鉗(美國Axon公司)。
1.2 醋酸鉛溶液配制
稱取3.25 g醋酸鉛,溶于100 mL超純水中,配制成醋酸鉛100 mmol·L-1儲存液,室溫保存。臨用時用含鈣的生理溶液(mmol·L-1:NaCl 140,KCl 4.25,MgCl21.7,HEPES 8.5,CaCl22)進行相應的濃度梯度稀釋。
1.3 小鼠DRG神經元和HEK293細胞培養(yǎng)
分離C57BL/6新生小鼠DRG置于HBSS中,用膠原蛋白酶P 0.5 μg·L-1于37℃消化20 min;用胰蛋白酶2 g·L-1于37℃消化2 min;終止酶消化吹打分散后,按109L-1密度將神經元分入96孔板培養(yǎng),48 h后進行鈣成像實驗。
HEK293細胞培養(yǎng)于含有10%小牛血清、青霉素100 kU·L-1和鏈霉素100 mg·L-1的DMEM,置于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)。穩(wěn)轉系細胞在培養(yǎng)基中另外加入的抗生素G418 0.2 μg·L-1。
1.4 瞬時轉染[6]
采用脂質體瞬時轉染的方法。HEK293細胞傳代24 h之內,細胞密度為80%進行轉染。將hTRPA1和mTRPA1重組質粒1.5 μg與脂質體轉染試劑混合在DMEM中,靜置15~20 min后加入HEK293細胞中開始轉染,質粒轉染48 h后將細胞酶解后進行鈣熒光成像實驗。
1.5 細胞鈣熒光成像實驗[6]
DRG神經元和表達外源性通道的HEK293細胞在含有10 μmol·L-1Fura-2和0.04%F-127的無鈣生理溶液(mmol·L-1:NaCl 140,KCl 4.25,MgCl21.7,HEPES 8.5)中37℃染色1 h,無鈣生理溶液洗滌2次,加入上述含鈣生理溶液。DRG神經元在加入醋酸鉛3和10 μmol·L-12 min之后加入AITC 100 μmol·L-1,進行熒光檢測;陽性對照組為無醋酸鉛處理、直接加入AITC 100 μmol·L-1灌流。HEK293細胞直接進行熒光檢測。使用IX71型鈣熒光成像系統(tǒng)進行細胞鈣熒光采集,Metafluor軟件進行數(shù)據(jù)分析。通過檢測DRG神經元和HEK293細胞加入相應的離子通道特異性激動劑后熒光值的變化,確定醋酸鉛對特定離子通道的作用。
1.6 RNA制備
將hTRPA1重組質粒載體用限制性內切酶將其線性化;然后用PCR試劑盒將DNA進行純化;使用T7 RNA聚合酶體系(5×T7聚合酶緩沖液20 μL+0.1 mol·L-1二硫蘇糖醇10 μL+RNA酶重組核糖核酸酶抑制劑2 μL+25 mmol·L-1rNTPs 10 μL+ 40 U·μL-1T7 RNA聚合酶1 μL+m7G帽子10 μL+水47 μL,共100 μL)體外合成2 h,然后進行mRNA純化;最后用水將RNA溶解,置于-80℃保存。
1.7 卵母細胞制備和TRPA1通道表達及電流記錄
非洲爪蟾用3%三卡因麻醉,腹部取卵母細胞放入生理溶液OR2(mmol·L-1:NaCl 82.4,KCl 2.5,MgCl21,HEPES 5),加入0.15 μg·L-1膠原蛋白酶A振蕩消化1.5 h,OR2振蕩洗滌2次,每次15 min,放入含有青霉素100 kU·L-1和鏈霉素100 mg·L-1的生理溶液ND96(mmol·L-1:NaCl 96,KCl22.5,MgCl21,HEPES 5,CaCl21.8)中進行培養(yǎng),顯微注射hTRPA1的RNA,每個卵母細胞50.6nL,表達后進行電流記錄。
雙電極電壓鉗電流記錄:記錄時電極電阻為2~ 10 MΩ,采樣頻率為5 kHz。鉗位電壓為-80 mV,給予指令電位從-100持續(xù)至+100 mV,時程為100 ms,用pClamp 10.2軟件處理資料。記錄液(mmol·L-1:NaCl 100,KCl 2.5,MgCl21,HEPES 5)。電極內液:KCl 3 mol·L-1。
1.8 統(tǒng)計學分析
實驗結果數(shù)據(jù)均以x±s表示,統(tǒng)計學處理用方差分析和配對t檢驗,P<0.05表示差異具有統(tǒng)計學意義。劑量效應曲線的擬合采用Logistic方程。
2.1 醋酸鉛抑制小鼠DRG神經元TRPA1通道激動劑AITC引起的鈣離子內流
小鼠DRG神經元用Fura-2染色后進行鈣熒光檢測。據(jù)文獻報道,97%表達TRPA1通道的DRG神經元同時表達TRPV1[6]。在本研究條件下,給神經元依次灌流TRPA1通道特異性激動劑AITC和TRPV1激動劑辣椒素。結果發(fā)現(xiàn),加入AITC后部分神經元的鈣熒光信號增強(圖1);隨后加入辣椒素,這些對AITC起反應的神經元均對辣椒素有反應,對AITC有反應的神經元占到對辣椒素有反應神經元的(14.0±1.0)%。加入醋酸鉛后,對辣椒素有反應的神經元數(shù)量穩(wěn)定,而對AITC有反應的神經元數(shù)量明顯降低(P< 0.01)。加入醋酸鉛3和10 μmol·L-1后,對AITC有反應的神經元所占的比例由(14.0±1.0)%分別降至(8.9±1.12)%和(3.0±0.2)%,與陽性對照組之間存在顯著差異(P<0.01,n=5)。由此可見,醋酸鉛抑制了TRPA1通道特異性激動劑AITC引起的鈣熒光信號的增加,醋酸鉛濃度越高,抑制作用越強,提示DRG神經元上的TRPA1通道可能被醋酸鉛抑制。
Fig.1 Propyl isothiocyanate(AITC)induced external calcium influx in dorsal root ganglion(DRG)neurons inhibited by lead acetate(×200).The representative ratio?metric calcium images of DRG neurons activated by AITC 100 μmol·L-1in the presence(lead acetate 10 μmol·L-1for 2 min)or absence(control)of lead acetate,the duration of AITC perfusion was 1 min.
2.2 醋酸鉛抑制外源性表達在HEK293細胞的TRPA1通道介導的鈣離子內流
mTRPA1通道基因在HEK293細胞過表達后進行活細胞鈣成像實驗。TRPA1通道特異性激動劑AITC 100 μmol·L-1可引起過表達mTRPA1通道的HEK293細胞內鈣熒光信號增加,醋酸鉛3 μmol·L-1可抑制mTRPA1通道介導的鈣信號(圖2A),抑制比例為(47.2±2.8)%。在過表達hTRPA1通道的HEK293細胞中得到類似結果。醋酸鉛對hTRPA1通道介導的鈣熒光信號具有濃度依賴性抑制作用(圖2B),醋酸鉛3.0,5.0,10.0和30.0 μmol·L-1對鈣熒光信號的抑制分別為(30.6±6.0)%,(34.9±4.6)%,(60.2±0.9)%和(62±1.1)%(n=5,P<0.01)。由此可見,醋酸鉛能抑制外源性表達在HEK293細胞上mTRPA1和hTRPA1通道介導的鈣離子內流,此結果與醋酸鉛對神經元的作用一致。
Fig.2 Inhibitory effect of lead acetate on mouse and human transient receptor potential A1(mTRPA1 and hTRPA1)mediated calcium influx,which was expressed in HEK293 cells.A:lead acetate 3 μmol·L-1on mTRPA1 mediated calcium influx(n=8);B:lead acetate 10 μmol·L-1on hTRPA1 mediated calcium influx(n=6).HEK293 cells were perfused with AITC 100 μmol·L-1for 1 min,and then perfused with AITC 100 μmol·L-1and lead acetate 10 μmol·L-1for 100 s.
2.3 醋酸鉛抑制外源性表達在爪蟾卵母細胞中的hTRPA1通道介導的電流
為了進一步定量分析醋酸鉛對hTRPA1通道的抑制作用,將hTRPA1通道過表達在爪蟾卵母細胞后運用雙電極電壓鉗技術進行電流記錄。AITC 30 μmol·L-1可引起hTRPA1通道介導的全細胞電流,加入醋酸鉛可抑制hTRPA1通道介導該電流。醋酸鉛抑制hTRPA1通道介導的電流呈濃度依賴性,濃度越高抑制比例越大。醋酸鉛10 μmol·L-1可將AITC 30 μmol·L-1引起的電流抑制85.9%(圖3A)。醋酸鉛0.3,1.0,3.0,10.0和30.0 μmol·L-1對+80 mV處電流的抑制率分別為(1.0±0.7)%,(11.6±0.8)%,(57.7±3.2)%,(93.6±2.6)%和(91.2±2.0)%(n≥4)。分析不同濃度醋酸鉛對hTRPA1介導的電流的抑制率,以Logistic方程擬合,得出醋酸鉛引起電流抑制的濃度效應曲線關系,其IC50為2.4 μmol·L-1(圖3 B)。
Fig.3 Inhibitory effect of lead acetate on hTRPA1-mediated current,which was exogenously expressed inXenopusoocytes.A:inhibitory effect of lead acetate 10 μmol·L-1on hTRPA1-mediated current in the presence of 30 μmol·L-1AITC,the duration of AITC and lead acetate perfusion were 50 s and 90 s,respectively,currents were recorded with the protocol(top).After treatment with lead acetate 10.0 μmol·L-1,currents were decreased by 85.9%at+80 mV(medium).B:concentrationresponse curve of lead acetate on hTRPA1-mediated current at+80 mV.The smooth curves were generated from fit of the data using a Logistic equation,and IC50is 2.4 μmol·L-1.x±s,n≥4.
本研究發(fā)現(xiàn),醋酸鉛對于外周神經系統(tǒng)的TRPA1通道具有抑制作用。據(jù)報道,包括Cr2+和Hg2+在內的多種二價重金屬離子對TRPA1通道有激活作用[12-14]。與這些重金屬離子作用不同的是,本研究結果則表明,醋酸鉛對TRPA1通道有抑制作用。首先,利用鈣熒光成像技術發(fā)現(xiàn)醋酸鉛抑制TRPA1通道的特異性激動劑AITC可引起的DRG神經元細胞外鈣內流產生鈣熒光。細胞鈣熒光是由于細胞外鈣離子流入細胞內與染料Fura-2結合所發(fā)出的熒光,鈣熒光被抑制表明小鼠DRG神經元上的TRPA1通道可能被醋酸鉛所抑制。為證明醋酸鉛對TRPA1通道的作用,在HEK293細胞中外源性表達mTRPA1和hTRPA1通道基因,檢測醋酸鉛對TRPA1通道介導的HEK293細胞鈣熒光的影響。結果表明,醋酸鉛的確能抑制mTRPA1和hTRPA1通道介導的HEK293細胞鈣熒光,該熒光被抑制表明醋酸鉛抑制了mTRPA1和hTRPA1通道介導的鈣離子內流。進一步在爪蟾卵母細胞中外源性過表達hTRPA1通道,對醋酸鉛抑制hTRPA1的作用進行進一步的定量分析。結果表明,醋酸鉛濃度依賴性地抑制hTRPA1通道介導的電流。以上結果均表明,醋酸鉛對TRPA1通道具有抑制作用。
TRPA1通道廣泛分布于DRG、三叉神經節(jié)和結狀神經節(jié),這些神經廣泛支配著皮膚、呼吸道和胃腸道等組織器官。TRPA1通道的生理功能與疼痛和機械感受相關,其受到抑制可使皮膚對外界的機械感受能力下降。鉛是一種親神經性毒物,體內蓄積到一定水平可引起神經組織損害,鉛中毒重癥病例導致鉛麻痹,出現(xiàn)垂腕、垂足等癥狀。李穎等[5]臨床研究表明,在124例鉛中毒患者中,92例出現(xiàn)了觸痛覺障礙,比例高達74.2%。觸痛覺障礙表明外周神經系統(tǒng)與觸痛覺感受相關的途徑出現(xiàn)了障礙,TRPA1通道是外周神經系統(tǒng)與觸痛覺相關的離子通道。本研究結果表明,醋酸鉛對TRPA1通道具有抑制作用,提示醋酸鉛對TRPA1通道的抑制作用可能是其外周神經系統(tǒng)毒性的重要組成部分。
日常生活中接觸到的大氣、土壤、塵埃、水、裝飾材料、日用品、玩具和學習用品都可能含有鉛。鉛在人體內長期積累對人體危害極大,鉛抑制hTRPA1通道介導的電流的IC50僅為2.4 μmol·L-1,而人體內血鉛濃度>100 μg·L-1(約0.5 μmol·L-1),即視為鉛中毒,這個濃度接近鉛抑制TRPA1通道的濃度。
研究表明,我國人口的鉛中毒比例約10%。杜靜等[15]研究大慶地區(qū)兒童鉛中毒的比例,城區(qū)兒童血鉛濃度≥100 μg·L-1的比例高達21.1%,農村兒童則為18.4%,且隨著年齡的增長,鉛中毒的比例逐漸增高。隨著現(xiàn)代化工業(yè)、交通、運輸業(yè)的快速發(fā)展,鉛污染的危害可能會日益加重,研究鉛中毒機制從而尋求有效的治療方法已成為重要的課題。本研究發(fā)現(xiàn),醋酸鉛對TRPA1通道有抑制作用,為醋酸鉛對TRPA1通道的抑制作用機制及其外周神經系統(tǒng)毒性作用的研究提供了實驗依據(jù)。
[1]Ruan SY,Gu ZW,Xiang CQ,Qin YQ,Zhang YY,Shen H.Effect of lead exposure on permeability,calcium distribution,microtubules and filaments of neurons[J].Occup Health Emerg Rescue(職業(yè)衛(wèi)生與應急救援),2000,18(1):9-11.
[2]Winneke G,Collet W,Lilienthal H.The effects of lead in laboratory animals and environmentallyexposed children[J].Toxicology,1988,49(2-3):291-298.
[3]Waldmann R,Lazdunski MH.H(+)-gated cation channels:neuronal acid sensors in the NaC/DEG family of ion channels[J].Curr Opin Neurobiol,1998,8(3):418-424.
[4] Yang Z.Non-linear regression analysis on inci?dence of legal contagious diseases[J].Pract Prev Med(實用預防醫(yī)學),2003,10(5):716-718.
[5]Li Y,Luo GM,Xiao XB,Zhang XH,Huang L,Yu YX,et al.Analysis of clinical curative effects of nerve growth factor in treating peripheral nerve disease induced by lead poisoning[J].Pract Prev Med(實用預防醫(yī)學),2012,19(8):1144-1145.
[6]Jordt SE,Bautista DM,Chuang HH,Mckemy DD,Zygmunt PM,Hogestatt ED,et al.Mustard oils and cannabinoids excite sensory nerve fibres through the TRP channel ANKTM1[J].Nature,2004,427(6971):260-265.
[7]Tai C,Zhu SS,Zhou N.TRPA1:the central mole?cule for chemical sensing in pain pathway?[J].J Neurosci,2008,28(5):1019-1021.
[8]Bautista DM,Jordt SE,Nikai T,Tsuruda PR,Read AA,Yamoah EN,et al.TRPA1 mediates the inflammatory actions of environmental irritants and proalgesic agents[J].Cell,2006,124(6):1269-1282.
[9]Macpherson LJ,Dubin AE,Evans MJ,Schultz PG,Cravatt BF.Noxious compounds activate TRPA1 ion channels through covalentmodification of cysteines[J].Nature,2007,445(7127):541-545.
[10]McNamara CR,Mandel-Brehm J,Bautista DM,Siemens J,Deranian KL,Zhao M,et al.TRPA1 mediates formalin-induced pain[J].Proc Natl Acad Sci,2007,104(33):13525-13530.
[11]Zygmunt PM,H?gest?tt ED.TRPA1[J].Handb Exp Pharmacol,2014,222:583-630.
[12]Yuan Y,Lu YP.The research progress of effects of lead on neuronal ion channels[J].Biol Teach(生物學教學),2009,34(9):5-6.
[13]Dai XQ,Ruan DY.Inhibitory effect of Pb2+on slowinactivating K+current inacutely isolated rat dorsal root ganglion neurons[J].Chin J Pharmacol Toxicol(中國藥理學與毒理學雜志),2002,16(3):176-181.
[14]Jang HO,Kim JS,Kwon WC,Kim JK,Kim DH,Kim WI,et al.The effect of lead on calcium release activated calcium influx in primary cultures of human osteoblast-like cells[J].Arch Pharm Res,2008,31(2):188-194.
[15]Du J,Yu XF,Zhang Y,Rong JM,Li BX.The investigation and analysis on 2087 cases of children′s blood lead level in Daqing area[J].Chin J Birth Health Hered(中國優(yōu)生與遺傳雜志),2010,18(5):134.
Inhibitory effect of lead acetate on TRPA1 channel in mice and humans
ZHAO Hong1,2,SONG Yu-zhu1
(1.Academy of Life and Science,Kunming University of Science and Technology,Kunming 650500,China;2.Kunming Institute of Zoology,Chinese Academy of Sciences,Kunming 650500,China)
OBJECTIVE To investigate the inhibitory effect of lead acetate on transient receptor potential A1(TRPA1)channel.METHODS TRPA1-mediated calcium influx in mice dorsal root ganglion(DRG)neurons and HEK293 cells expressing nouse TRP1(mTRPA1)and human TRPA1(hTRPA1)wasrecorded by intracellular calcium imaging.TRPA1-mediated currents were detected by two-electrode voltage clamp.RESULTS Lead acetate 3.0 and 10.0 μmol·L-1inhibited external calcium influx in DRG neurons by(36.7±4.1)%and(79.4±3.1)%(n=5),respectively.The inhibitory effect of lead acetate on hTRPA1-mediated current was concentration-dependent.Lead acetate 0.3,1.0,3.0,10.0 and 30.0 μmol·L-1inhibited the amplitudes of currents by(1.0±0.7)%,(11.6±0.8)%,(57.7±3.2)%,(93.6± 2.6)%and(91.2±2.0)%(n≥4),respectively,with the IC502.4 μmol·L-1.CONCLUSION TRPA1 channel may be an endogenous target of lead.Lead acetate inhibits TRPA1 channel at a very low concentration.
lead acetate;dorsal root ganglion;neuron;transient receptor potential A1 channel;two-electrode voltage clamp;calcium imaging
SONG Yu-zhu,E-mail:yuzhusong@kmust.edu.cn
R995
A
1000-3002-(2016)09-0949-06
10.3867/j.issn.1000-3002.2016.09.007
2015-11-07接受日期:2016-07-15)
(本文編輯:齊春會)
趙 紅,碩士研究生,主要從事神經毒理學研究。
宋玉竹,E-mail:yuzhusong@kmust.edu.cn