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        TMV和CMV病毒外殼蛋白基因雙靶向的RNA干涉載體構(gòu)建

        2016-01-01 00:00:00尹蕾唐凱悅張躍新李猷律鳳霞
        湖北農(nóng)業(yè)科學 2016年3期

        摘要:依據(jù)RNA干擾機制構(gòu)建多病毒基因靶向的RNA干涉雙元載體系統(tǒng),為培育抗病毒復合侵染的番茄品種提供遺傳轉(zhuǎn)化載體。以煙草病毒?。═MV)、黃瓜花葉病毒(CMV)病毒外殼蛋白基因作為RNA干擾靶標基因,針對病毒株系間外殼蛋白基因同源區(qū)域設計靶序列引物,經(jīng)RT-PCR獲得兩段靶標基因的DNA靶序列。借助T載體將兩段靶序列連接成一條DNA序列。酶切后正向、反向錨定連接到pUCCRNAi中間載體的克隆位點,形成靶序列在載體中的雙向重復結(jié)構(gòu);重復結(jié)構(gòu)酶切后插入含超強啟動子的pC2300-35s-OCS表達載體,重組的表達載體質(zhì)粒電擊轉(zhuǎn)化到只含輔助質(zhì)粒的根癌農(nóng)桿菌中,完成RNAi雙元載體系統(tǒng)的構(gòu)建。

        關(guān)鍵詞:煙草病毒?。═MV);黃瓜花葉病毒(CMV);番茄;RNA干涉;載體構(gòu)建

        中圖分類號:Q789 文獻標識碼:A 文章編號:0439-8114(2016)03-0759-05

        DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2016.03.054

        Construction of RNA Interference Vectoer in TWO-Gene-Targeted of TMV and CMV

        YIN Lei,TANG Kai-yue,ZHANG Yue-xin,LI You,LV Feng-xia

        (College of Life Science and Technology, Mudanjiang Normal University, Mudanjiang 157012,Heilongjiang, China)

        Abstract: On the basis of the RNA interference-mechanism,RNAi binary-vector system targeting virus gene was constructed, offering genetic transformation vector to tomato disease-resistance breeding. The coat protein gene of TMV and CMV was regarded as target-gene for RNA interference, designing the primers sequence according to the-homologous region of virus coat protein gene, cloning two sequences of TMV and CMV through RT-PCR and connecting into a sequence by T-vector. After enzyme digestion, bidirectional inserted into cloning sites of pUCCRNAi middle vector. After enzyme digestion, the repetitive structure inserted into pC2300-35s-OCS expression vector which containing super promoter. The recombinant expression vector plasmid electroporating into the Agrobacterium which containing the helper-plasmid. The binary vector system for RNAi has been constructed.

        Key words: tobacco mosaic virus; cucumber mosaic virus; tomato;RNA interference; vectoer construction

        番茄病毒病是由多種病毒單獨或復合侵染引起的病害[1],以煙草病毒?。═MV)和黃瓜花葉病毒(CMV)為主要病源。病原物隨病殘體在土壤、種子中或其他宿根植物上越冬,生長階段通過蚜蟲、田間操作造成的傷口傳病。番茄病毒病是番茄上發(fā)生最普遍、最難防治、為害最嚴重的病害之一,一般減產(chǎn)20%~30%,影響番茄果實的食用價值,嚴重時甚至造成絕收[2]。目前,生產(chǎn)栽培中防治番茄病毒病常采取的方法有選育抗病毒番茄品種、接種弱毒株系誘導抗性、完善栽培技術(shù)、隔離傳毒蚜蟲等方法[3]。但抗病毒品種面對品種繁多且隨時突變的病毒存在抗性喪失的可能,其他措施屬規(guī)避病害發(fā)生,難以持久、有效地抵抗病毒侵染,病毒一旦發(fā)生,則無藥可治。生產(chǎn)中防治植物病毒病最有效的方法仍是培育抗病品種[4]。然而傳統(tǒng)的育種周期長,隨機性強,存在抗性資源單一,抗病譜系狹窄等局限。與傳統(tǒng)育種手段相比,采用分子手段育種能突破種間種質(zhì)資源限制,具有目的性強、周期短等優(yōu)點,為培育抗病毒新品種拓寬了途徑[5-8]。

        RNA干涉(RNA interference,RNAi)是在研究線蟲時發(fā)現(xiàn)的一種現(xiàn)象[9],其原理是外源或內(nèi)源生成的dsRNA被生物體內(nèi)某核酸酶切割成19~21個核苷酸的短雙鏈RNA(siRNA),與其他蛋白質(zhì)結(jié)合形成RNA誘導的沉默復合體(RNA-induced silencing complex, RISC)。RISC輔助siRNA反義鏈搜索靶基因mRNA上互補區(qū)域與之結(jié)合,定位切割引起降解,轉(zhuǎn)錄后基因沉默。載體構(gòu)建是RNAi技術(shù)應用的關(guān)鍵之一[10-13]。

        本試驗依據(jù)RNAi原理,同時以TMV、CMV病毒外殼蛋白基因作為RNA干擾靶標基因,針對病毒株系間外殼蛋白基因同源區(qū)域[14]設計靶序列引物,經(jīng)RT-PCR獲得靶序列。介助T載體將兩段靶序列連成一條DNA序列做為RNAi的靶序列。酶切后正向、反向定位連接到pUCCRNAi中間載體的克隆位點上,構(gòu)建靶序列的反向重復結(jié)構(gòu);重復結(jié)構(gòu)酶切后嵌入含超強啟動子的pC2300-35s-OCS表達載體,重組的表達載體質(zhì)粒電擊轉(zhuǎn)化到只含輔助質(zhì)粒的根癌農(nóng)桿菌中,完成雙元載體系統(tǒng)的構(gòu)建,為培育抗病毒復合侵染的番茄品種提供遺傳轉(zhuǎn)化載體。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        感染TMV和CMV病毒的煙草葉片、大腸桿菌DH5α菌液和農(nóng)桿菌LBA4404菌液由黑龍江省煙草科學研究所提供;pC2300-35s-OCS表達載體和pUCCRNAi中間載體由中國科學院遺傳與發(fā)育生物學研究所提供;RNA提取試劑盒為QIAGEN公司產(chǎn)品;反轉(zhuǎn)錄試劑盒、pMD18-T Vectoer、DNA回收試劑盒、限制性內(nèi)切酶、DNA聚合酶及連接酶為寶生物工程(大連)有限公司產(chǎn)品;瓊脂糖為Sigma公司產(chǎn)品;其他常用試劑為國產(chǎn)分析純。

        1.2 方法

        1.2.1 目的基因的靶序列克隆及連接 Genbank中查找TMV病毒和CMV外殼蛋白基因序列,分析高度同源區(qū)域后設計靶序列引物,TMV病毒靶序列為267 bp,CMV病毒靶序列為219 bp,TMV-cp1引物5′端添加XhoⅠ酶切位點(用下劃線表示)。TMV-cp1:5′-ACTCGAGGCCCAACCCCTTCCAGC-3′;TMV-cp2:3′-CCCATTCAGGTCCTGCGTCTCG-5′;CMV-cp1:5′-GGAATCGGTATGGAGGAAAG-3′;CMV-cp2:5′-ACCCAAACAAGGGGAACAAC-3′。

        田間采集感染TMV和CMV病毒的煙草葉片,提取樣品總RNA,反轉(zhuǎn)錄制備cDNA第一鏈;再以兩個靶序列特異引物分別進行PCR擴增,獲得目的基因靶序列,PCR產(chǎn)物分別連接到pMD18-T Vector 的EcoR V克隆位點(圖1),重組子轉(zhuǎn)化到大腸桿菌感受態(tài)細胞,經(jīng)LB液體培養(yǎng)基(Amp+)選擇擴繁提質(zhì)粒,特異引物PCR驗證連接正確,菌液送測序公司測序,所得序列經(jīng)NCBI網(wǎng)站BLAST比對,同源率達99%,產(chǎn)物命名為pMD18-T-TMV、pMD18-T-CMV。pMD18-T-TMV質(zhì)粒用BamHⅠ和XhoⅠ雙酶切,在TMV靶序列左側(cè)切開,回收大于2 000 bp的片段,pMD18-T-CMV質(zhì)粒用BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,切下CMV靶序列,回收近200 bp片段,回收產(chǎn)物連接后轉(zhuǎn)化,經(jīng)LB液體培養(yǎng)基(Amp+)選擇擴繁提質(zhì)粒,以組合引物CMV-cp1/TMV-cp2 PCR驗證,產(chǎn)物命名為pMD18-T-TC,提取質(zhì)粒備用,完成兩個靶序列的連接。

        1.2.2 RNAi中間載體構(gòu)建 采用BamHⅠ和SalⅠ雙酶切pUCCRNAi載體和pMD18-T-TC重組子質(zhì)粒,pUCCRNAi載體回收大于2 000 bp片段,pMD18-T-TC重組子質(zhì)?;厥战?00 bp片段;連接轉(zhuǎn)化后LB選擇培養(yǎng)基(Kan+)選擇擴繁并提質(zhì)粒,PstⅠ單酶切驗證,連接產(chǎn)物命名為pUCCRNAi -TC1;pMD18-T-TC重組質(zhì)粒DNA再經(jīng)BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,回收近500 bp片段;pUCCRNAi-TC1載體重組質(zhì)粒經(jīng)XhoⅠ和BglⅡ雙酶切,回收大于2 000 bp片段,利用同尾酶相同的粘性末端反向連接后轉(zhuǎn)化,LB選擇培養(yǎng)基(Kan+)選擇擴繁并提質(zhì)粒,PstⅠ單酶切驗證,連接產(chǎn)物命名為pUCCRNAi-TC2。

        1.2.3 含靶序列反向重復結(jié)構(gòu)的表達載體構(gòu)建 重組子pUCCRNAi-TC2質(zhì)粒DNA經(jīng)PstⅠ單酶切回收近1 200 bp片段,pC2300-35s-OCS表達載體質(zhì)粒經(jīng)PstⅠ酶切回收大于2 000 bp的片段,連接后轉(zhuǎn)化,LB選擇培養(yǎng)基(Kan+)選擇擴繁提質(zhì)粒,經(jīng)PstⅠ單酶切驗證,產(chǎn)物命名為pC2300-35s-OCS-TC,表達載體構(gòu)建完成,提取質(zhì)粒保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.4 雙元載體系統(tǒng)構(gòu)建 重組子pC2300-35s-OCS-TC表達載體質(zhì)粒,經(jīng)電擊法轉(zhuǎn)化到只含輔助質(zhì)粒的根癌農(nóng)桿菌中,經(jīng)YEB液體培養(yǎng)基(Kan+)選擇擴繁,以組合引物CMV-cp1/TMV-cp2 進行菌液PCR驗證,有特異條帶的菌液擴繁后液氮速凍-80 ℃保存?zhèn)溆?,完成雙元載體系統(tǒng)的構(gòu)建。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 TMV-cp和CMV-cp基因靶序列PCR驗證

        pMD18-T Vector載體克隆位點如圖1所示。pMD18-T-TMV、pMD18-T-CMV特異引物PCR擴增后電泳分離結(jié)果如圖2所示。圖2結(jié)果表明,TMV的8個菌落PCR產(chǎn)物出現(xiàn)5條特異條帶,6號泳道最亮,CMV的PCR產(chǎn)物出現(xiàn)6條特異條帶,15號泳道最亮,6號和15號菌液測序結(jié)果證實序列正確。

        pMD18-T-TMV和pMD18-T-CMV酶切后電泳分離結(jié)果如圖3所示,pMD18-T-CMV經(jīng)BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,切下CMV靶序列,pMD18-T-TMV經(jīng)BamHⅠ和XhoⅠ(TMV-cp1引物5′端添加)雙酶切,在TMV靶序列的左側(cè)切出斷口,SalⅠ和XhoⅠ屬同尾酶,CMV靶序列片段定位嵌入pMD18-T-TMV載體中TMV靶序列左側(cè)(圖1),連接后菌液經(jīng)組合引物(CMV-cp1/TMV-cp2)PCR,出現(xiàn)對應條帶(圖4),證實2個靶序列成功連接。

        2.2 靶序列正向及反向嵌入RNAi載體酶切驗證

        對pUCCRNAi載體質(zhì)粒和pMD18-T-TC重組子質(zhì)粒分別進行雙酶切,產(chǎn)物電泳分離結(jié)果如圖5所示?;厥债a(chǎn)物連接,pMD18-T-TC重組子經(jīng)BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,切下的CMV和TMV雙靶序列正向嵌入pUCCRNAi載體LB側(cè)的BamHⅠ和SalⅠ克隆位點(圖6),pMD18-T-TC重組子再次經(jīng)BamHⅠ和SalⅠ雙酶切,CMV和TMV雙靶序列嵌入pUCCRNAi載體RB側(cè)的XhoⅠ和BglⅡ克隆位點,因為SalⅠ和XhoⅠ是一對同尾酶,BamHⅠ和BglⅡ是一對同尾酶,因此第二次嵌入是反向連接(圖6)。

        第一次連接菌液質(zhì)粒經(jīng)PstⅠ酶切驗證,結(jié)果擴增出700 bp特異條帶(圖7),證明正向定位連接正確;第二次連接菌液質(zhì)粒經(jīng)PstⅠ酶切驗證,有1 200 bp特異條帶出現(xiàn),證明反向定位連接正確(圖8)。

        2.3 重組pC2300-35S-OCS-TMV表達載體PCR驗證、酶切驗證

        pC2300-35S-OCS表達載體結(jié)構(gòu)如圖9所示。pUCCRNAi-TC2重組子和pC2300-35S-OCS表達載體質(zhì)粒PstⅠ酶切產(chǎn)物電泳結(jié)果如圖10所示。膠回收后連接,重組子pC2300-35S-OCS-TC質(zhì)粒經(jīng)PstⅠ單酶切驗證(圖11),4個質(zhì)粒酶切產(chǎn)物存在1 200 bp特異條帶,試驗證明表達載體構(gòu)建完成。

        2.4 農(nóng)桿菌中靶序列重復結(jié)構(gòu)的檢測

        電擊轉(zhuǎn)化的農(nóng)桿菌,以CMV-cp1/TMV-cp2 組合引物進行菌液PCR驗證(圖12)。圖12表明,16個菌液中有9個菌液出現(xiàn)大于1 000 ~1 200 bp的特異條帶,條帶不是很亮,但足以說明靶序列重復結(jié)構(gòu)已轉(zhuǎn)化到農(nóng)桿菌中。7號菌液擴繁后液氮速凍-80 ℃保存?zhèn)溆?,完成雙元載體系統(tǒng)的構(gòu)建。

        3 小結(jié)與討論

        本試驗多次應用了同尾酶,同尾酶是一類識別序列不同但產(chǎn)生相同黏性末端的限制性內(nèi)切酶,依靠同尾酶的特性,可以根據(jù)需要將不同的DNA片段進行靈活組合,拓寬了不同載體間酶切位點的應用。試驗過程中驗證農(nóng)桿菌中靶序列重復結(jié)構(gòu)時PCR特異條帶不是很亮。分析認為是靶序列DNA重復結(jié)構(gòu)在PCR反應時,變性后自身配對結(jié)合成穩(wěn)定的雙鏈,影響引物與模板結(jié)合。鑒于這種可能,試驗中利用克隆區(qū)域兩側(cè)相同的單酶切位點,采取質(zhì)粒DNA酶切驗證,最終證實了反向序列的存在。

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