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        重組大腸桿菌產(chǎn)普魯蘭酶發(fā)酵條件優(yōu)化*

        2015-12-16 08:06:46王小蘭穆曉清徐巖聶堯
        食品與發(fā)酵工業(yè) 2015年7期
        關(guān)鍵詞:生長

        王小蘭,穆曉清,2,徐巖,2,3,聶堯,2

        1(江南大學(xué)生物工程學(xué)院,江蘇 無錫,214122)

        2(江南大學(xué)工業(yè)生物技術(shù)教育部重點實驗室,江蘇無錫,214122)

        3(中國食品科技與技術(shù)重點實驗室,江蘇無錫,214122)

        普魯蘭酶 (Pullulanase,EC 3.2.1.41)是能夠?qū)R恍缘淖饔糜谄蒸斕m糖、支鏈淀粉、糖原及相關(guān)低聚糖中的 ɑ-1,6-糖苷鍵,切下整個側(cè)枝的脫支酶,能提高淀粉糖化過程的效率,已廣泛應(yīng)用于以淀粉為原料的各種工業(yè)生產(chǎn)中[1-2]。但是國內(nèi)普魯蘭酶的工業(yè)化生產(chǎn)規(guī)模較小,不能供應(yīng)國內(nèi)市場需求。高效生產(chǎn)普魯蘭酶的問題需要繼續(xù)解決。在重組大腸桿菌(Escherichia coli)中表達(dá)的來自長野芽胞桿菌(Bacillus naganoensis)的普魯蘭酶,酶的熱穩(wěn)定性更優(yōu)越,其最適溫度和pH更適合用于淀粉糖化過程[3]。

        在利用乳糖操縱子誘導(dǎo)表達(dá)異源蛋白的表達(dá)系統(tǒng)中,由于IPTG有潛在的毒性,對菌體生長有抑制作用,且價格昂貴,目前國內(nèi)外已有很多研究用乳糖代替 IPTG作為乳糖啟動子的誘導(dǎo)劑[4-5]。2005 年,Studier研究出自誘導(dǎo)表達(dá)系統(tǒng)[6],葡萄糖耗盡后乳糖被利用,目的蛋白才開始表達(dá),自誘導(dǎo)發(fā)酵的最終菌體密度大,蛋白產(chǎn)量高,被廣泛應(yīng)用研究;但各菌株所需的生長條件不同,自誘導(dǎo)培養(yǎng)基會進(jìn)行部分改造。

        為了實現(xiàn)重組大腸桿菌中自誘導(dǎo)高效表達(dá)普魯蘭酶,本研究在7 L發(fā)酵罐規(guī)模考察了溶氧、pH和甘油及乳糖的流加的方式對重組菌生長和產(chǎn)酶的影響,提高了普魯蘭酶的產(chǎn)量。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 菌種

        重組大腸桿菌E.coli BL21/pET-20b-pul,本實驗室保存。

        1.1.2 培養(yǎng)基

        種子培養(yǎng)基(LB培養(yǎng)基):蛋白胨10 g/L,酵母粉5 g/L,NaCl 10 g/L,1000×卡那霉素溶液體積分?jǐn)?shù)為5%,pH 7.2。

        發(fā)酵培養(yǎng)基:α-乳糖15 g/L,無水葡萄糖0.5 g/L,甘油 10 g/L,KH2PO46.8 g/L,MgSO42mmol/L,Na2HPO47.1 g/L,Na2SO40.71 g/L,NH4Cl 2.67 g/L,胰蛋白胨10 g/L,酵母提取物5 g/L,1 000×卡那霉素溶液體積分?jǐn)?shù)為5%;pH 7.60。

        1.1.3 主要儀器與設(shè)備

        普魯蘭購自東京化成工業(yè)株式會社(TCI),其余試劑都是國產(chǎn)分析純。

        超聲破碎VCX75,購自Sonic公司;恒溫水浴鍋,購自上海華連醫(yī)療器械有限公司;7 L發(fā)酵罐,購自美國NBS公司;酶標(biāo)儀,購自Thermo公司;高效液相色譜儀,購自美國安捷倫公司;高壓蒸汽滅菌鍋,購自日本Tomy公司。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 種子培養(yǎng)

        一級種子培養(yǎng):將菌株從甘油保存液中接到含有4 ml種子培養(yǎng)基的試管中,37℃,200 r/min(下同)振蕩培養(yǎng)10 h。

        二級種子培養(yǎng):在250 ml三角瓶中,接種量10%,37℃振蕩培養(yǎng)10h。

        1.2.2 發(fā)酵培養(yǎng)

        分批發(fā)酵培養(yǎng):7 L發(fā)酵罐,最終裝液量3 L,接種量10%,攪拌速率300 r/min;于37℃條件下培養(yǎng)2 h,使菌體生長至一定濃度,再轉(zhuǎn)入20℃中培養(yǎng),同時一次性添加終濃度為15 g/L的乳糖。(下同)

        恒溶氧分批發(fā)酵培養(yǎng):調(diào)整空氣和純氧氣的通入量比例,盡量使溶氧量保持在20%~30%。

        恒速流加甘油溶液分批發(fā)酵培養(yǎng):溶氧量保持在20%~30%;發(fā)酵9 h后,以0.8 g/(L·h)的速度流加濃度200 g/L的甘油溶液。

        恒pH和變速流加甘油溶液培養(yǎng)分批發(fā)酵培養(yǎng):溶氧量保持在20%~30%;發(fā)酵罐自動調(diào)整氨水的流加速度,使發(fā)酵液中的pH保持在7.60;當(dāng)溶解氧濃度低于5%時,流加濃度200 g/L的甘油溶液;溶氧升高時,停止流加甘油。

        恒速流加甘油和乳糖溶液分批發(fā)酵培養(yǎng):溶氧量保持在20%~30%,pH保持在7.60;發(fā)酵9 h后,以0.8 g/(L·h)的速度流加濃度200 g/L的甘油溶液;發(fā)酵20 h后,以0.2 g/(L·h)的速度流加濃度300 g/L的乳糖溶液,繼續(xù)發(fā)酵。

        1.3 分析方法

        1.3.1 菌體生物量的測定

        菌體濃度測定采用濁度法,測定波長600 nm處的光密度(OD600nm),采用此值表示細(xì)胞濃度。

        1.3.2 溶氧及pH測定

        在線檢測。

        1.3.2 普魯蘭酶酶活力的測定

        發(fā)酵液破碎后12 000 r/min離心10 min,取上清為粗酶液。酶活測定方法根據(jù)Jinho等的方法修改[7]。反應(yīng)溫度為60℃,緩沖體系為0.1 mol/L pH 4.50的乙酸-乙酸鈉緩沖液。1個單位的普魯蘭酶酶活力定義為在測定條件下,每分鐘釋放1 μmol還原糖所需的酶的量。

        1.3.3 發(fā)酵液中葡萄糖、甘油和乳糖濃度的測定

        液相色譜法具有操作簡單,靈敏度高,重復(fù)性好和準(zhǔn)確度更高等特點,選擇液相色譜的方法測定發(fā)酵液中甘油、葡萄糖和乳糖的含量,高效液相色譜條件:La Chrom NH2色譜柱(4.6 mm ×250 mm ×5.0 μm),V(乙腈)∶V(水)=75∶25,流速 0.8 mL/min,柱溫 40℃,示差折光檢測器溫度40℃,進(jìn)樣量10 μL。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 7L罐中普魯蘭酶分批發(fā)酵過程

        如圖1所示,重組大腸桿菌快速進(jìn)入對數(shù)生長期,溶氧迅速下降;變溫誘導(dǎo)后停止生長2 h,繼續(xù)對數(shù)生長期;第7 h開始菌體處于缺氧的條件下生長;13h后溶解氧濃度迅速增長,菌體生長進(jìn)入穩(wěn)定期,菌濃達(dá)到最大值,OD600nm為12.58。第2 h加入乳糖降溫誘導(dǎo)表達(dá)普魯蘭酶,第4 h菌體開始快速生產(chǎn)普魯蘭酶,13 h時停止;最終普魯蘭酶酶活力為356 U/mL;比在250 mL三角瓶中的自誘導(dǎo)培養(yǎng)重組大腸桿菌的酶活力降低了63%。

        圖1 重組大腸桿菌分批發(fā)酵結(jié)果Fig.1 Batch fermentation of recombinant E.coli

        發(fā)酵過程中的動力學(xué)參數(shù)(見圖2)可以看出,第7 h,細(xì)胞處于缺氧的環(huán)境中,同時細(xì)胞的生長速率、甘油的消耗速率和普魯蘭酶的合成速率都開始下降,說明缺氧不利于重組菌的生長和產(chǎn)酶。隨著細(xì)胞的快速生長,甘油的消耗速度從0 g/(L·h)上升到0.90 g/(L·h);但甘油消耗速度降低,細(xì)胞的生長速度也降低,考慮發(fā)酵液中的甘油對細(xì)胞生長和產(chǎn)酶有影響是需要的。在發(fā)酵過程中,乳糖以0.3 g/(L·h)的速度緩慢消耗,后期可以及時補加乳糖。

        2.2 溶氧控制對菌體生長和產(chǎn)酶的影響

        重組大腸桿菌發(fā)酵過程中溶解氧濃度過低會抑制菌體的生長代謝,不利于產(chǎn)酶;研究報道,溶氧濃度維持在20%~30%[8]有利于重組大腸桿菌的生長和外源蛋白的高效表達(dá);在發(fā)酵罐中,通過控制純氧和空氣的混合比例可以有效控制發(fā)酵液中的溶氧濃度。在7 L發(fā)酵罐中培養(yǎng),控制氧氣濃度在20%~30%,結(jié)果如圖3所示,發(fā)現(xiàn)重組大腸桿菌在17 h出現(xiàn)二次生長現(xiàn)象,25 h出現(xiàn)菌體濃度最大值,OD600nm為38.25;重組大腸桿菌產(chǎn)酶也出現(xiàn)階段性,25 h普魯蘭酶酶活力達(dá)到最大值698 U/mL,酶活力增長96%。結(jié)果表明,通過控制發(fā)酵液中的溶解氧濃度,可以有效提高重組大腸桿菌發(fā)酵生物量和普魯蘭酶的表達(dá)。

        圖2 重組大腸桿菌分批發(fā)酵動力學(xué)研究Fig.2 Study the kinetics of batch fermentation of recombinant E.coli

        圖3 恒定溶氧濃度下重組大腸桿菌的發(fā)酵結(jié)果Fig.3 Batch fermentation of recombinant E.coli on constant dissolved oxygen

        在自誘導(dǎo)培養(yǎng)過程中,重組大腸桿菌先利用葡萄糖;葡萄糖消耗完后,利用甘油生長和產(chǎn)酶;乳糖是重組菌的誘導(dǎo)劑,作用到乳糖操從子,開始表達(dá)普魯蘭酶,但甘油耗盡,乳糖被用為碳源;進(jìn)而產(chǎn)生重組大腸桿菌明顯的二次生長現(xiàn)象。葡萄糖在2 h內(nèi)快速用完;降溫誘導(dǎo)表達(dá)普魯蘭酶,甘油被快速消耗;12 h后,乳糖被用作碳源,34 h后被消耗完(見圖4)。34h后,重組菌體處于營養(yǎng)缺失時期,菌體生長和產(chǎn)酶都停止。

        圖4 發(fā)酵過程中葡萄糖、甘油和乳糖殘留量的濃度變化Fig.4 Variation tendency of residual glucose,glycerol and lactose concentration during the fermentation

        2.3 恒速流加甘油對菌體生長和產(chǎn)酶的影響

        要獲得普魯蘭酶的高效表達(dá),則需要高的菌體濃度,流加碳源是一個好的選擇[9]。在恒溶氧發(fā)酵過程中,根據(jù)重組菌細(xì)胞的生長情況計算,甘油做碳源時,細(xì)胞的平均生長速率為2.3/h;乳糖做碳源時,細(xì)胞的平均生長速率僅為1.2/h,所以及時補加甘油可以有效增加菌濃。恒速流加補料方式滿足了菌體對甘油的需要[10]。在恒溶氧發(fā)酵過程中,甘油在2 h~12 h被大量消耗,根據(jù)甘油的消耗曲線計算,甘油在此階段的平均消耗速率為0.8 g/(L·h);因此在9 h時,以0.8 g/(L·h)的速度流加甘油。結(jié)果如圖5所示,隨著甘油的積累,菌體開始遲緩生長,產(chǎn)生了底物抑制現(xiàn)象;60h后,菌濃達(dá)到最大值,OD600nm為41.76;普魯蘭酶酶活力同樣達(dá)到最高值1 099 U/mL;通過恒速流加甘油,普魯蘭酶酶活力增加了57%。

        圖5 恒速流加甘油的重組大腸桿菌的補料發(fā)酵結(jié)果Fig.5 Fed-batch fermentation of recombinant E.coli with supplementation of glycerol on constant concentration

        重組菌生長過程中分泌一些代謝產(chǎn)物,影響發(fā)酵液中的pH值,進(jìn)而抑制重組菌的生長和產(chǎn)酶[11]。如圖6所示,重組菌體快速生長,發(fā)酵液的pH會慢慢降低,在60 h時pH降低到5.0,重組停止生長和產(chǎn)酶。

        2.4 恒pH和DO-stat對菌體生長和產(chǎn)酶的影響

        為了消除甘油的抑制作用,采用DO-stat的發(fā)酵模式-用溶氧濃度作為反饋指標(biāo)來流加營養(yǎng)物質(zhì)的發(fā)酵方式[13]。細(xì)胞由于營養(yǎng)缺失導(dǎo)致溶氧濃度上升,通過補加甘油來降低溶氧濃度,可以有效的控制甘油的濃度,防止甘油積累和有害代謝產(chǎn)物的生成[14]。pH低于5.0時,重組菌的蛋白質(zhì)和DNA不可逆降解會導(dǎo)致細(xì)胞裂解[12],發(fā)酵液中流加氨水保持發(fā)酵液中的pH 7.60不變。研究結(jié)果如圖7所示,第3 h開始根據(jù)溶氧控制甘油流加,64 h后菌體停止生長,達(dá)到最大值,OD600nm為40.80;71h后酶活力停止增加,最大值為944 U/mL。與恒速流加甘油的結(jié)果相比,普魯蘭酶酶活力降低16%。上述結(jié)果說明恒速流加甘油更加有利于重組菌的生長和產(chǎn)酶。

        圖6 發(fā)酵過程中pH和溶氧的變化曲線Fig.6 Variation tendency of pH and oxygen concentration during the fermentation

        圖7 恒pH的重組大腸桿菌的發(fā)酵結(jié)果Fig.7 Fed-batch fermentation of recombinant E.coli on constant pH

        2.5 恒速流加乳糖和甘油對菌體生長和產(chǎn)酶的影響

        在自誘導(dǎo)發(fā)酵培養(yǎng)過程中,乳糖是誘導(dǎo)表達(dá)普魯蘭酶基因的誘導(dǎo)劑,從圖4和圖5可知,發(fā)酵過程中乳糖會被消耗,并且發(fā)酵后期乳糖會缺失,適當(dāng)時機補加甘油和乳糖,可以提高普魯蘭酶的產(chǎn)量。根據(jù)圖4中的甘油和乳糖的消耗曲線顯示,乳糖在0~20 h被用作誘導(dǎo)劑消耗,計算的平均消耗速率為0.2 g/(L·h)。因此發(fā)酵過程中,第9 h,以0.8 g/(L·h)的速度流加200 g/L的甘油,第20 h,以0.2 g/(L·h)的速度流加300 g/L的乳糖;根據(jù)恒速流加甘油的發(fā)酵結(jié)果,在82 h結(jié)束流加甘油和乳糖。重組菌在79h停止生長和產(chǎn)酶,細(xì)胞濃度達(dá)到最大值,OD600nm為42.45,比初始的菌濃約增加了3.4倍;普魯蘭酶最高值為1 200 U/mL,比初始的酶活也約增加了3.4倍(見圖8)。

        圖8 恒速流加乳糖和甘油的重組大腸桿菌的發(fā)酵結(jié)果Fig.8 Fed-batch fermentation of recombinant E.coli with supplementation of glycerol and lactose on constant concentration

        3 結(jié)論

        本文在7L發(fā)酵罐內(nèi)對產(chǎn)普魯蘭酶的重組大腸桿菌的發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,根據(jù)動力學(xué)參數(shù)改善了分批補料培養(yǎng)工藝??疾炝丝刂迫苎鹾蚿H對重組菌生長和產(chǎn)酶的影響,確定了甘油和乳糖的補料工藝。優(yōu)化后的最佳發(fā)酵產(chǎn)酶的工藝條件:溶氧濃度保持在20%~30%;pH保持在7.60;第9 h時,以0.8 g/(L·h)的速度流加甘油;在20 h,以0.2 g/(L·h)的速度流加乳糖。此條件下,重組菌的細(xì)胞濃度從12.58上升到42.25,提高了3.36倍;普魯蘭酶酶活力從356 U/mL上升到1 200 U/mL,提高了3.37倍,實現(xiàn)了重組菌E.coli生產(chǎn)的普魯蘭酶的高效表達(dá),為普魯蘭酶進(jìn)一步發(fā)酵罐放大生產(chǎn)提供依據(jù)。

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