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        微囊藻毒素ELISA檢測方法的建立與評估

        2015-10-20 01:58:35胡樂琴等
        江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2015年9期
        關(guān)鍵詞:單克隆抗體檢測

        胡樂琴等

        摘要:采用制備的微囊藻毒素(MC-LR)單克隆抗體制備包被抗原,建立MC-LR的ELISA檢測方法。該方法定量檢測區(qū)間LQD為0.20~4.00 μg/L,最低檢測限LOD為0.10 μg/L,最高檢測限HOD為8.00 μg/L,最佳包被抗原濃度為0.5 μg/mL,對應(yīng)抗體稀釋度為1 ∶20 000左右,酶標(biāo)二抗工作稀釋度選擇為1 ∶6 000;應(yīng)用該方法對加標(biāo)水樣進(jìn)行檢測,綜合回收率為(98.0±10.7)%,各樣品檢測結(jié)果變異系數(shù)均小于10%。該ELISA方法準(zhǔn)確度良好,精密度優(yōu)良。

        關(guān)鍵詞:微囊藻毒素;單克隆抗體;間接競爭ELISA;檢測

        中圖分類號: X17文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號:1002-1302(2015)09-0340-04

        我國是世界上藻災(zāi)最為嚴(yán)重的國家之一,藻毒素嚴(yán)重威脅居民飲水安全和食品安全。我國主要的淡水藻毒素是微囊藻毒素(microcystin,MC),微囊藻毒素是淡水藍(lán)藻產(chǎn)生的一類生物活性物質(zhì),能夠?qū)θ梭w多個器官產(chǎn)生危害,危害最嚴(yán)重的靶器官是肝臟,長時間低劑量接觸MCs會導(dǎo)致肝損傷和誘發(fā)癌癥[1-2]。有研究表明,我國肝癌多發(fā)區(qū)與當(dāng)?shù)厮懈吆康奈⒛叶舅赜嘘P(guān)[3-4],MCs引發(fā)的急性肝中毒癥狀表現(xiàn)為肝細(xì)胞損傷、肝出血[5]。

        預(yù)防藻毒素侵害最主要是保持水體清潔,防止藻類過量生長;同時,能夠精確及時地檢測毒素也是預(yù)防毒素污染的有效方法。我國淡水微囊藻毒素污染嚴(yán)重,但迄今為止尚沒有一種較合適于現(xiàn)場使用的藻毒素檢測方法,因此研制我國自主知識產(chǎn)權(quán)的檢測淡水中微囊藻毒素的方法已成為當(dāng)務(wù)之急。

        藻毒檢測方法主要有色譜檢測、生物檢測、細(xì)胞檢測[6-8],這些檢測技術(shù)或是需要昂貴的儀器、或是需要較長的檢測時間、或是準(zhǔn)確率不夠。與其他檢測方法相比,酶聯(lián)免疫法具有靈敏度高、特異性好、重復(fù)性高和檢測準(zhǔn)確快速的優(yōu)點(diǎn),在現(xiàn)場快速檢測上具有開發(fā)前景,近年來在赤潮藻毒素快速檢測方面得到重視和發(fā)展。筆者所在實驗室在成功制備高效價MC-LR單克隆抗體的基礎(chǔ)上,初步建立了檢測 MC-LR 的間接競爭酶免疫學(xué)檢測方法,為研制具有自主知識產(chǎn)權(quán)的相關(guān)檢測試劑盒奠定了基礎(chǔ)。

        1材料與方法

        1.1材料與試劑

        微囊藻毒素單克隆抗體由筆者所在課題組研制;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2包被抗原的制備

        用兔血清白蛋白(rabbit serum albumin,RSA)制備包被抗原MC-LR-RSA[9],冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3抗原、抗體最佳稀釋濃度的確定

        在96孔ELISA板上,檢測抗原按縱向排列,抗體按橫向排列。檢測抗原用包被緩沖液(pH值9.6,0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液)稀釋為1 ∶1 000、1 ∶2 000、1 ∶4 000、1 ∶8 000這4個濃度,每濃度3個重復(fù),每孔100 μL,4 ℃過夜;洗滌液后靜置1 min,重復(fù)洗滌3次;用0.1% BSA(用包被液進(jìn)行稀釋)的封閉液進(jìn)行封閉,每孔120 μL,37 ℃1 h,洗滌3次,拍干。

        MC-LR抗體濃度調(diào)為7.5 mg/mL,用高純水稀釋成如下梯度濃度:0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、4、8、20 μg/L共11個點(diǎn);依次加入酶標(biāo)板上的1號至12號孔中,抗體體積為100 μL/孔,37 ℃溫育后洗滌3次;加入HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG,酶標(biāo)二抗羊抗鼠IgG濃度選擇為1 ∶6 000,每孔加入100 μL,37 ℃溫育1 h,洗滌4次;顯色液為TMB;終止液為 2 mol/L H2SO4。在酶標(biāo)儀上測定D450 nm值,確定最佳包被抗原與抗體濃度。

        1.4標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定

        根據(jù)“1.3”節(jié)所得到的最佳包被抗原濃度和最佳抗體稀釋倍數(shù),以及最佳二抗?jié)舛?,用?biāo)準(zhǔn)系列稀釋的MC-LR(0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、4、8、20 μg/L),按照間接競爭ELISA測定。采用n=3個平行試驗,獲得標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.5一抗最佳反應(yīng)時間的確定

        根據(jù)“1.3”節(jié)試驗選取最佳的抗原、抗體稀釋度,包被抗原濃度為0.5 μg/mL,對應(yīng)的抗體稀釋度為1 ∶20 000,作為ELISA的反應(yīng)條件。將MC-LR標(biāo)準(zhǔn)品用高純水配制成如下梯度濃度:0、0.2、0.5、1、2、4 μg/L,共6個點(diǎn),進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線測定,每孔50 μL標(biāo)準(zhǔn)品;同時加入用PBS配制好的單抗溶液,每孔50 μL,放入37 ℃培養(yǎng)箱中溫育,一抗反應(yīng)時間設(shè)定為30、60、90 min 3個組,每組3個平行;二抗體反應(yīng)時間固定為60 min。每個時間內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)曲線設(shè)置2個平行。反應(yīng)結(jié)束后分別洗滌3次,拍干。

        加二抗:酶標(biāo)二抗采用HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG,采用PBS稀釋,每孔加入100 μL,37 ℃溫育1 h,洗滌4次,拍干。

        顯色:加入新配制的底物液(TMB-H2O2),每孔100 μL,室溫下固定反應(yīng)10 min。測定D450 nm值,選擇最佳一抗反應(yīng)時間。

        1.6實際水樣的檢測(準(zhǔn)確度和精密度驗證)

        1.6.1水樣的采集和預(yù)處理選取上海市不同來源的水樣,包括飲用水、地下水、景觀娛樂用水(游泳池和公園水樣)以及地表水(城市河道水體)14個樣品,每個水樣采集體積為10 mL,對較混濁的樣品采用0.45 μm的濾膜過濾。

        1.6.2水樣的添加-回收測定在14個水樣中添加標(biāo)準(zhǔn)微囊藻毒素,每個樣品毒素的最終濃度分別為0.2、0.5、1.0 μg/L ,共3個不同濃度。采用直接競爭ELISA測定樣品中毒素含量,每個水樣平行測定5次,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算水樣中MC-LR濃度。同時測定原水中的毒素含量,結(jié)果進(jìn)行比較,并計算回收率?;厥章实挠嬎惴椒ㄈ缦拢好總€樣品平行測定5次,計算吸光度的平均值,樣品添加濃度(最終濃度)用X表示,未添加標(biāo)準(zhǔn)品的樣品測定平均值為x1,添加了標(biāo)準(zhǔn)品的樣品測定平均值為x2,則回收率計算如式(1)。當(dāng)原水樣ELISA測定濃度超出本方法的檢測限,即小于0.1 μg/L時,視為未檢出,此時均按照x1=0計算回收率。

        摘要:采用制備的微囊藻毒素(MC-LR)單克隆抗體制備包被抗原,建立MC-LR的ELISA檢測方法。該方法定量檢測區(qū)間LQD為0.20~4.00 μg/L,最低檢測限LOD為0.10 μg/L,最高檢測限HOD為8.00 μg/L,最佳包被抗原濃度為0.5 μg/mL,對應(yīng)抗體稀釋度為1 ∶20 000左右,酶標(biāo)二抗工作稀釋度選擇為1 ∶6 000;應(yīng)用該方法對加標(biāo)水樣進(jìn)行檢測,綜合回收率為(98.0±10.7)%,各樣品檢測結(jié)果變異系數(shù)均小于10%。該ELISA方法準(zhǔn)確度良好,精密度優(yōu)良。

        關(guān)鍵詞:微囊藻毒素;單克隆抗體;間接競爭ELISA;檢測

        中圖分類號: X17文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號:1002-1302(2015)09-0340-04

        我國是世界上藻災(zāi)最為嚴(yán)重的國家之一,藻毒素嚴(yán)重威脅居民飲水安全和食品安全。我國主要的淡水藻毒素是微囊藻毒素(microcystin,MC),微囊藻毒素是淡水藍(lán)藻產(chǎn)生的一類生物活性物質(zhì),能夠?qū)θ梭w多個器官產(chǎn)生危害,危害最嚴(yán)重的靶器官是肝臟,長時間低劑量接觸MCs會導(dǎo)致肝損傷和誘發(fā)癌癥[1-2]。有研究表明,我國肝癌多發(fā)區(qū)與當(dāng)?shù)厮懈吆康奈⒛叶舅赜嘘P(guān)[3-4],MCs引發(fā)的急性肝中毒癥狀表現(xiàn)為肝細(xì)胞損傷、肝出血[5]。

        預(yù)防藻毒素侵害最主要是保持水體清潔,防止藻類過量生長;同時,能夠精確及時地檢測毒素也是預(yù)防毒素污染的有效方法。我國淡水微囊藻毒素污染嚴(yán)重,但迄今為止尚沒有一種較合適于現(xiàn)場使用的藻毒素檢測方法,因此研制我國自主知識產(chǎn)權(quán)的檢測淡水中微囊藻毒素的方法已成為當(dāng)務(wù)之急。

        藻毒檢測方法主要有色譜檢測、生物檢測、細(xì)胞檢測[6-8],這些檢測技術(shù)或是需要昂貴的儀器、或是需要較長的檢測時間、或是準(zhǔn)確率不夠。與其他檢測方法相比,酶聯(lián)免疫法具有靈敏度高、特異性好、重復(fù)性高和檢測準(zhǔn)確快速的優(yōu)點(diǎn),在現(xiàn)場快速檢測上具有開發(fā)前景,近年來在赤潮藻毒素快速檢測方面得到重視和發(fā)展。筆者所在實驗室在成功制備高效價MC-LR單克隆抗體的基礎(chǔ)上,初步建立了檢測 MC-LR 的間接競爭酶免疫學(xué)檢測方法,為研制具有自主知識產(chǎn)權(quán)的相關(guān)檢測試劑盒奠定了基礎(chǔ)。

        1材料與方法

        1.1材料與試劑

        微囊藻毒素單克隆抗體由筆者所在課題組研制;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2包被抗原的制備

        用兔血清白蛋白(rabbit serum albumin,RSA)制備包被抗原MC-LR-RSA[9],冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3抗原、抗體最佳稀釋濃度的確定

        在96孔ELISA板上,檢測抗原按縱向排列,抗體按橫向排列。檢測抗原用包被緩沖液(pH值9.6,0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液)稀釋為1 ∶1 000、1 ∶2 000、1 ∶4 000、1 ∶8 000這4個濃度,每濃度3個重復(fù),每孔100 μL,4 ℃過夜;洗滌液后靜置1 min,重復(fù)洗滌3次;用0.1% BSA(用包被液進(jìn)行稀釋)的封閉液進(jìn)行封閉,每孔120 μL,37 ℃1 h,洗滌3次,拍干。

        MC-LR抗體濃度調(diào)為7.5 mg/mL,用高純水稀釋成如下梯度濃度:0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、4、8、20 μg/L共11個點(diǎn);依次加入酶標(biāo)板上的1號至12號孔中,抗體體積為100 μL/孔,37 ℃溫育后洗滌3次;加入HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG,酶標(biāo)二抗羊抗鼠IgG濃度選擇為1 ∶6 000,每孔加入100 μL,37 ℃溫育1 h,洗滌4次;顯色液為TMB;終止液為 2 mol/L H2SO4。在酶標(biāo)儀上測定D450 nm值,確定最佳包被抗原與抗體濃度。

        1.4標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定

        根據(jù)“1.3”節(jié)所得到的最佳包被抗原濃度和最佳抗體稀釋倍數(shù),以及最佳二抗?jié)舛龋脴?biāo)準(zhǔn)系列稀釋的MC-LR(0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、4、8、20 μg/L),按照間接競爭ELISA測定。采用n=3個平行試驗,獲得標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.5一抗最佳反應(yīng)時間的確定

        根據(jù)“1.3”節(jié)試驗選取最佳的抗原、抗體稀釋度,包被抗原濃度為0.5 μg/mL,對應(yīng)的抗體稀釋度為1 ∶20 000,作為ELISA的反應(yīng)條件。將MC-LR標(biāo)準(zhǔn)品用高純水配制成如下梯度濃度:0、0.2、0.5、1、2、4 μg/L,共6個點(diǎn),進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線測定,每孔50 μL標(biāo)準(zhǔn)品;同時加入用PBS配制好的單抗溶液,每孔50 μL,放入37 ℃培養(yǎng)箱中溫育,一抗反應(yīng)時間設(shè)定為30、60、90 min 3個組,每組3個平行;二抗體反應(yīng)時間固定為60 min。每個時間內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)曲線設(shè)置2個平行。反應(yīng)結(jié)束后分別洗滌3次,拍干。

        加二抗:酶標(biāo)二抗采用HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG,采用PBS稀釋,每孔加入100 μL,37 ℃溫育1 h,洗滌4次,拍干。

        顯色:加入新配制的底物液(TMB-H2O2),每孔100 μL,室溫下固定反應(yīng)10 min。測定D450 nm值,選擇最佳一抗反應(yīng)時間。

        1.6實際水樣的檢測(準(zhǔn)確度和精密度驗證)

        1.6.1水樣的采集和預(yù)處理選取上海市不同來源的水樣,包括飲用水、地下水、景觀娛樂用水(游泳池和公園水樣)以及地表水(城市河道水體)14個樣品,每個水樣采集體積為10 mL,對較混濁的樣品采用0.45 μm的濾膜過濾。

        1.6.2水樣的添加-回收測定在14個水樣中添加標(biāo)準(zhǔn)微囊藻毒素,每個樣品毒素的最終濃度分別為0.2、0.5、1.0 μg/L ,共3個不同濃度。采用直接競爭ELISA測定樣品中毒素含量,每個水樣平行測定5次,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算水樣中MC-LR濃度。同時測定原水中的毒素含量,結(jié)果進(jìn)行比較,并計算回收率?;厥章实挠嬎惴椒ㄈ缦拢好總€樣品平行測定5次,計算吸光度的平均值,樣品添加濃度(最終濃度)用X表示,未添加標(biāo)準(zhǔn)品的樣品測定平均值為x1,添加了標(biāo)準(zhǔn)品的樣品測定平均值為x2,則回收率計算如式(1)。當(dāng)原水樣ELISA測定濃度超出本方法的檢測限,即小于0.1 μg/L時,視為未檢出,此時均按照x1=0計算回收率。

        摘要:采用制備的微囊藻毒素(MC-LR)單克隆抗體制備包被抗原,建立MC-LR的ELISA檢測方法。該方法定量檢測區(qū)間LQD為0.20~4.00 μg/L,最低檢測限LOD為0.10 μg/L,最高檢測限HOD為8.00 μg/L,最佳包被抗原濃度為0.5 μg/mL,對應(yīng)抗體稀釋度為1 ∶20 000左右,酶標(biāo)二抗工作稀釋度選擇為1 ∶6 000;應(yīng)用該方法對加標(biāo)水樣進(jìn)行檢測,綜合回收率為(98.0±10.7)%,各樣品檢測結(jié)果變異系數(shù)均小于10%。該ELISA方法準(zhǔn)確度良好,精密度優(yōu)良。

        關(guān)鍵詞:微囊藻毒素;單克隆抗體;間接競爭ELISA;檢測

        中圖分類號: X17文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A文章編號:1002-1302(2015)09-0340-04

        我國是世界上藻災(zāi)最為嚴(yán)重的國家之一,藻毒素嚴(yán)重威脅居民飲水安全和食品安全。我國主要的淡水藻毒素是微囊藻毒素(microcystin,MC),微囊藻毒素是淡水藍(lán)藻產(chǎn)生的一類生物活性物質(zhì),能夠?qū)θ梭w多個器官產(chǎn)生危害,危害最嚴(yán)重的靶器官是肝臟,長時間低劑量接觸MCs會導(dǎo)致肝損傷和誘發(fā)癌癥[1-2]。有研究表明,我國肝癌多發(fā)區(qū)與當(dāng)?shù)厮懈吆康奈⒛叶舅赜嘘P(guān)[3-4],MCs引發(fā)的急性肝中毒癥狀表現(xiàn)為肝細(xì)胞損傷、肝出血[5]。

        預(yù)防藻毒素侵害最主要是保持水體清潔,防止藻類過量生長;同時,能夠精確及時地檢測毒素也是預(yù)防毒素污染的有效方法。我國淡水微囊藻毒素污染嚴(yán)重,但迄今為止尚沒有一種較合適于現(xiàn)場使用的藻毒素檢測方法,因此研制我國自主知識產(chǎn)權(quán)的檢測淡水中微囊藻毒素的方法已成為當(dāng)務(wù)之急。

        藻毒檢測方法主要有色譜檢測、生物檢測、細(xì)胞檢測[6-8],這些檢測技術(shù)或是需要昂貴的儀器、或是需要較長的檢測時間、或是準(zhǔn)確率不夠。與其他檢測方法相比,酶聯(lián)免疫法具有靈敏度高、特異性好、重復(fù)性高和檢測準(zhǔn)確快速的優(yōu)點(diǎn),在現(xiàn)場快速檢測上具有開發(fā)前景,近年來在赤潮藻毒素快速檢測方面得到重視和發(fā)展。筆者所在實驗室在成功制備高效價MC-LR單克隆抗體的基礎(chǔ)上,初步建立了檢測 MC-LR 的間接競爭酶免疫學(xué)檢測方法,為研制具有自主知識產(chǎn)權(quán)的相關(guān)檢測試劑盒奠定了基礎(chǔ)。

        1材料與方法

        1.1材料與試劑

        微囊藻毒素單克隆抗體由筆者所在課題組研制;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

        1.2包被抗原的制備

        用兔血清白蛋白(rabbit serum albumin,RSA)制備包被抗原MC-LR-RSA[9],冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.3抗原、抗體最佳稀釋濃度的確定

        在96孔ELISA板上,檢測抗原按縱向排列,抗體按橫向排列。檢測抗原用包被緩沖液(pH值9.6,0.05 mol/L碳酸鹽緩沖液)稀釋為1 ∶1 000、1 ∶2 000、1 ∶4 000、1 ∶8 000這4個濃度,每濃度3個重復(fù),每孔100 μL,4 ℃過夜;洗滌液后靜置1 min,重復(fù)洗滌3次;用0.1% BSA(用包被液進(jìn)行稀釋)的封閉液進(jìn)行封閉,每孔120 μL,37 ℃1 h,洗滌3次,拍干。

        MC-LR抗體濃度調(diào)為7.5 mg/mL,用高純水稀釋成如下梯度濃度:0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、4、8、20 μg/L共11個點(diǎn);依次加入酶標(biāo)板上的1號至12號孔中,抗體體積為100 μL/孔,37 ℃溫育后洗滌3次;加入HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG,酶標(biāo)二抗羊抗鼠IgG濃度選擇為1 ∶6 000,每孔加入100 μL,37 ℃溫育1 h,洗滌4次;顯色液為TMB;終止液為 2 mol/L H2SO4。在酶標(biāo)儀上測定D450 nm值,確定最佳包被抗原與抗體濃度。

        1.4標(biāo)準(zhǔn)曲線的測定

        根據(jù)“1.3”節(jié)所得到的最佳包被抗原濃度和最佳抗體稀釋倍數(shù),以及最佳二抗?jié)舛龋脴?biāo)準(zhǔn)系列稀釋的MC-LR(0、0.025、0.05、0.1、0.2、0.5、1、2、4、8、20 μg/L),按照間接競爭ELISA測定。采用n=3個平行試驗,獲得標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.5一抗最佳反應(yīng)時間的確定

        根據(jù)“1.3”節(jié)試驗選取最佳的抗原、抗體稀釋度,包被抗原濃度為0.5 μg/mL,對應(yīng)的抗體稀釋度為1 ∶20 000,作為ELISA的反應(yīng)條件。將MC-LR標(biāo)準(zhǔn)品用高純水配制成如下梯度濃度:0、0.2、0.5、1、2、4 μg/L,共6個點(diǎn),進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)曲線測定,每孔50 μL標(biāo)準(zhǔn)品;同時加入用PBS配制好的單抗溶液,每孔50 μL,放入37 ℃培養(yǎng)箱中溫育,一抗反應(yīng)時間設(shè)定為30、60、90 min 3個組,每組3個平行;二抗體反應(yīng)時間固定為60 min。每個時間內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)曲線設(shè)置2個平行。反應(yīng)結(jié)束后分別洗滌3次,拍干。

        加二抗:酶標(biāo)二抗采用HRP標(biāo)記的羊抗鼠IgG,采用PBS稀釋,每孔加入100 μL,37 ℃溫育1 h,洗滌4次,拍干。

        顯色:加入新配制的底物液(TMB-H2O2),每孔100 μL,室溫下固定反應(yīng)10 min。測定D450 nm值,選擇最佳一抗反應(yīng)時間。

        1.6實際水樣的檢測(準(zhǔn)確度和精密度驗證)

        1.6.1水樣的采集和預(yù)處理選取上海市不同來源的水樣,包括飲用水、地下水、景觀娛樂用水(游泳池和公園水樣)以及地表水(城市河道水體)14個樣品,每個水樣采集體積為10 mL,對較混濁的樣品采用0.45 μm的濾膜過濾。

        1.6.2水樣的添加-回收測定在14個水樣中添加標(biāo)準(zhǔn)微囊藻毒素,每個樣品毒素的最終濃度分別為0.2、0.5、1.0 μg/L ,共3個不同濃度。采用直接競爭ELISA測定樣品中毒素含量,每個水樣平行測定5次,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計算水樣中MC-LR濃度。同時測定原水中的毒素含量,結(jié)果進(jìn)行比較,并計算回收率?;厥章实挠嬎惴椒ㄈ缦拢好總€樣品平行測定5次,計算吸光度的平均值,樣品添加濃度(最終濃度)用X表示,未添加標(biāo)準(zhǔn)品的樣品測定平均值為x1,添加了標(biāo)準(zhǔn)品的樣品測定平均值為x2,則回收率計算如式(1)。當(dāng)原水樣ELISA測定濃度超出本方法的檢測限,即小于0.1 μg/L時,視為未檢出,此時均按照x1=0計算回收率。

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