何大偉, 倪程佩, 王禹斌, 王 婧, 周正宇
(蘇州大學實驗動物中心, 蘇州 215123)
1,25-二羥基維生素D3對鏈脲佐菌素致胰島素瘤細胞損傷的保護與修復作用
何大偉, 倪程佩, 王禹斌, 王婧, 周正宇
(蘇州大學實驗動物中心, 蘇州 215123)
目的 初步探討1,25-二羥基維生素D3(1,25-(OH)2D3)對鏈脲佐菌素(STZ)所致大鼠胰島素瘤(INS-1)細胞損傷的保護與修復作用。方法 將INS-1細胞接種于培養(yǎng)板中,置于CO2培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),藥物干預后,應用細胞計數(shù)試劑盒(CCK8)檢測細胞增殖活力,ELISA法分別檢測培養(yǎng)液中的胰島素濃度、丙二醛(MDA)濃度和總抗氧化能力(T-AOC)。結果 1,25-(OH)2D3可以促進INS-1細胞的活力和胰島素的分泌(P<0.01)。STZ所致模型組的細胞活力降低(P<0.001),胰島素分泌量減少(P<0.01),MDA含量明顯升高(P<0.01),T-AOC能力下降(P<0.01)。與STZ組比較,1, 25-(OH)2D3保護組與修復組在不同程度上改善了上述指標(P<0.01)。結論 1,25-(OH)2D3可以促進INS-1細胞分泌胰島素,對STZ損傷的胰島細胞具有一定的保護與修復作用。
1, 25-二羥基維生素D3(1, 25-(OH)2D3); 胰島素瘤(INS-1)細胞; 鏈脲佐菌素(STZ); 胰島素
隨著世界人口老齡化,糖尿病已成為一種常見病和多發(fā)病,嚴重危害人類健康。近年來,隨著人們對維生素D的不斷深入研究,發(fā)現(xiàn)維生素D缺乏與Ⅰ型糖尿病及Ⅱ型糖尿病有一定聯(lián)系, 長期補充維生素D可以降低這些疾病發(fā)生的風險[1-3],但具體作用機制尚未闡明。大鼠胰島素瘤(INS-1)細胞是一種來自大鼠胰島素瘤的細胞株,可以穩(wěn)定地分泌胰島素,是研究胰島細胞功能的理想細胞[4]。本實驗應用維生素D的活性形式1, 25-二羥基維生素D3(1, 25-(OH)2D3),觀察其對鏈脲佐菌素(STZ)致INS-1細胞損傷的保護和修復作用,并初步探討其作用機制,為維生素D預防和治療糖尿病提供一定的實驗依據。
1.1材料
INS-1細胞, 購自上海拜利生物科技有限公司;1, 25-(OH)2D3、鏈脲佐菌素(STZ)和β-巰基乙醇均購自Sigma公司,RPMI 1640培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)和胰蛋白酶均購自Gibco公司,大鼠胰島素檢測試劑盒、丙二醇(MDA)和總抗氧化(T-AOC)試劑盒均購自上海滬尚生物科技有限公司,細胞計數(shù)試劑盒(CCK8)購自DOJINDO公司。
1.2方法
1.2.1細胞培養(yǎng)使用含體積分數(shù)為10%的胎牛血清,2 mmol/L L-谷氨酰胺,1 mmol/L丙酮酸鈉,50 μmol/L β-巰基乙醇, 1×105IU/L青霉素和100 mg/L 鏈霉素的RPMI 1640培養(yǎng)基培養(yǎng)INS-1細胞。從液氮取出凍存的細胞迅速放入37 ℃恒溫水浴鍋,快速搖晃凍存管使之在2 min內融化。然后,用酒精棉球擦拭凍存管外周后拿進超凈臺,將細胞懸液轉至含有4 mL 1640完全培養(yǎng)基的15 mL離心管中,1 000 r/min,離心5 min后,棄上清,加入10 mL 1640完全培養(yǎng)基混勻后,轉移到直徑為10 cm的培養(yǎng)皿中, 并置于37℃, 5% CO2飽和濕度的恒溫箱中培養(yǎng)。觀察細胞狀態(tài), 每2 d換液一次,待細胞長至60%~80%時,棄去培養(yǎng)基,PBS 洗2次, 加入1 mL 0.25%胰蛋白酶消化1 min后, 加完全培養(yǎng)基終止消化, 將細胞懸液以1 000 r/min,離心5 min后,按1∶3進行傳代。
1.2.2CCK8檢測細胞活力將濃度7×105個/mL 的INS-1細胞接種至96孔板,100 μL/孔,每組6個重復孔,在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)18 h后進行藥物干預,待藥物干預結束后,每孔加入10 μL CCK8,孵育1~3 h后,用全自動酶標儀測450 nm波長時各孔的D值。
1.2.3葡萄糖刺激的胰島素分泌(GSIS)棄去培養(yǎng)液, 用PBS洗滌各組細胞2次, 加入含2.8 mmol/L葡萄糖的克-林二氏重碳酸鹽(KRB)緩沖液孵育1 h,再更換為含有20 mmol/L葡萄糖的KRB緩沖液孵育1 h后,收集上清。胰島素分泌水平的測定根據ELISA檢測試劑盒說明書進行操作,最后計算出胰島素在高糖刺激后的分泌水平與基礎狀態(tài)分泌水平的比值。
1.2.4不同濃度的1,25-(OH)2D3對INS-1細胞的胰島素分泌和細胞活性的影響將濃度7×105個/mL 的INS-1細胞隨機分為正常對照組、1,25-(OH)2D3組(包含10-6mmol/L組、10-7mmol/L組、10-8mmol/L組、10-9mmol/L組)分別接種于24孔板和96孔板,每組6個重復孔,待細胞完全貼壁后,加入不同濃度的1,25-(OH)2D3,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,分別測定GSIS和細胞活力。
1.2.51,25-(OH)2D3對STZ致INS-1細胞損傷的影響使用上述方法將INS-1接種培養(yǎng)板, 并隨機分為正常對照組、STZ 5 mmol/L組、保護組[1,25-(OH)2D3 10-7mmol/L+STZ 5 mmol/L]、修復組(STZ 5 mmol/L+ 1,25-(OH)2D310-7mmol/L), 每組6個重復孔。待細胞完全貼壁后, 保護組先加入濃度為10-7mmol/L 1,25-(OH)2D3培養(yǎng)24 h,再加入5 mmol/L的STZ培養(yǎng)3 h; 修復組先加入5 mmol/L的STZ作用3 h后,再加入濃度為10-7mmol/L 1, 25-(OH)2D3培養(yǎng)24 h; STZ組加入5 mmol/L的STZ作用3 h。干預結束后,分別測定各組胰島素的分泌水平和細胞活力, MDA的生成和T-AOC能力的檢測根據ELISA檢測試劑盒說明書進行操作。
1.3統(tǒng)計學分析
所有數(shù)據均采用SPSS 17.0軟件進行統(tǒng)計分析,t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。每組實驗都獨立重復3次。
2.1不同濃度的1,25-(OH)2D3對INS-1細胞胰島素分泌和細胞活性的影響
基礎葡萄糖狀態(tài)下, 各組細胞分泌的胰島素水平和細胞活性無顯著差異, 高糖狀態(tài)下, 10-7mmol/L 的1,25-(OH)2D3處理組的INS-1細胞分泌的胰島素水平明顯增加(P<0.01)(表1); 且10-7mmol/L組的INS-1細胞活性最高(P<0.01)(表2)。
2.21,25-(OH)2D3對STZ致INS-1細胞損傷的影響
基礎和高糖狀態(tài)下, STZ組的INS-1細胞分泌的胰島素水平和細胞活性明顯低于正常對照組;而保護組和修復組的INS-1細胞分泌的胰島素水平和細胞活性較STZ組有明顯的增加(表3, 表4)。與正常對照組相比, STZ組的MDA生成量升高, T-AOC能力下降; 而與STZ組相比, 保護組和修復組的MDA生成量明顯下降,T-AOC能力顯著升高(表5)。
表1 不同濃度的1,25-(OH)2D3對INS-1細胞胰島素分泌的影響Table 1 Effects of different concentrations of 1,25-(OH)2D3 on insulin secretion of INS-1 cells
表2 不同濃度的1,25-(OH)2D3對INS-1細胞活性的影響Table 2 Effects of different concentrations of 1,25-(OH)2D3 on cell viability of INS-1 cells
表3 1,25-(OH)2D3對STZ致INS-1細胞損傷的胰島素分泌的影響Table 3 Effects of 1,25-(OH)2D3 on insulin secretion of INS-1 cells damaged by STZ
表4 1, 25-(OH)2D3對STZ致INS-1細胞損傷的細胞活性的影響Table 4 Effects of 1, 25-(OH)2D3 on cell viability of INS-1 cells damaged by STZ
表5 1,25-(OH)2D3對INS-1細胞MDA生成和T-AOC能力的影響Table 5 Effects of 1,25-(OH)2D3 on the production of MDA and capacity of T-AOC of INS-1 cells
維生素D除其傳統(tǒng)作用外,越來越多的新功能已被人們認知。缺乏維生素D不僅影響免疫系統(tǒng),還可以導致胰島細胞功能紊亂; 重度佝僂病患者體內的胰島素合成明顯減少,表現(xiàn)為明顯的胰島素缺乏癥[5]。維生素D在葡萄糖/胰島素代謝中發(fā)揮著重要作用[6],是維持胰島結構和功能正常所必不可少的因素[7], 本實驗結果進一步證實了此觀點。
氧化應激(oxidative stress)是指機體組織或細胞內氧自由基生成增加或清除能力下降,導致活性氧(reactive oxygen species,ROS)在體內或細胞內蓄積而引起的氧化損傷過程[8]。ROS會攻擊生物膜不飽和脂肪酸形成脂質過氧化物,其產物MDA是一種有害物質,可作為評價脂質過氧化反應強弱的指標[9]; T-AOC是反應組織抗氧化能力的重要指標之一。與其他組織細胞相比,胰島細胞缺乏抗氧化酶類,易受氧化應激損傷[10,11],抗氧化能力較弱,對活性氧更加敏感。胰島細胞損傷和功能異常是糖尿病發(fā)生的主要原因。ROS可以損傷胰島細胞的細胞核和線粒體,導致胰島素分泌水平下降,細胞凋亡增加[12]。而STZ可以直接產生ROS,被廣泛用于制作糖尿病模型[13]。越來越多的研究結果顯示,氧化應激與糖尿病及其并發(fā)癥的發(fā)生發(fā)展關系密切。本實驗結果顯示,STZ損傷組的細胞活力和胰島素分泌都明顯受到抑制,同時MDA顯著上升,T-AOC明顯下降; 與STZ組比較,保護組和修復組的細胞活力和胰島素分泌水平均上升,細胞活性升高,而MDA水平下降,T-AOC水平上升,結果表明1,25-(OH)2D3能有效的保護和修復STZ引起的胰島細胞損傷,恢復胰島細胞的功能,其機制可能是通過抑制脂質過氧化物的生成,提高細胞的總抗氧化能力。
維生素D對于糖尿病的影響機制目前尚未完全闡明,本實驗結果表明1,25-(OH)2D3可以在體外試驗中提高胰島細胞的活力、促進胰島素分泌和改善氧化應激作用,但仍需要更多的動物體內實驗和相關的臨床研究進行驗證。
[1]張黎明, 龍艷, 蘇珂. 維生素D與糖尿?。跩]. 廣東醫(yī)學, 2013,34(8):1300-1302.
[2]Wolden-Kirk H, Overbergh L, Christen HT, et al. Vitamin Dand diabetes: its importance for beta cell and immune function [J]. Mol Cell Endocrinol, 2011, 347(1/2):106-120.
[3]Kurt O, Balta S, Cakar M, et al. The protectiveness of the treatment of vitamin D insufficiency in the development of diabetes[J]. Arq Bras Endocrinol Metabol, 2013, 57:157-8.
[4]Xu GL, Chen JQ, Gu J, et al. Preventing β-Cell Loss and Diabetes With Calcium Channel Blockers[J]. Diabetes, 2012,61(4):848-856.
[5]Giulietti A, Gysemans C, Stoffels K, et al. Vitamin D deficiency in early life accelerates Type 1 diabetesin non-obese diabetic mice[J]. Diabetologia, 2004, 47(3):451-462.
[6]Holick MF. The D-lightful vitamin D for child health[J]. JPEN J Parenter Enterai Nutr, 2012, 36(1 suppl):9S-19S.
[7]Afzal S, Brondum-Jacobsen P, Bojesen SE, et al. Vitamin D concentration, obesity, and risk of diabetes: a mendelian randomisation study[J]. Lancet Diabetes Endocrinol, 2014,2(4): 298-306.
[8]宋影芳, 賴國祥, 戚好文, 等. 1,25-二羥基維生素D3減輕哮喘小鼠的氣道重塑[J]. 基礎醫(yī)學與臨床, 2011, 31(9):1021-1025.
[9]Kaneto H, Nakatani Y, Kawamori D, et al. Role of oxidative stress, endoplasmic reticulum stress, and c-Jun N-terminal kinase in pancreatic beta-cell dysfunction and insulin resistance [J]. Int J Biochem Cell Biol, 2006, 38(5-6):782-793.
[10] Maiese K, Morhan SD, Chong ZZ. Oxidative stress biology and cell injury during type 1 and type 2 diabetes mellitus[J]. Curr Neurovasc Res, 2007, 4(1):63-71.
[11] Du SC, Ge QM, Lin N, et al. ROS-mediated lipopolysaccharide-induced apoptosis in INS-1 cells by modulation of Bcl-2 and Bax[J]. Cell Mol Biol (Noisy-le-grand), 2012, 58 Suppl:OL1654-1659.
[12] Miyazaki Y, Kawano H, Yoshida T, et al. Pancreatic B-cell function is altered by oxidative stress induced by acute hyperglycaemia[J]. Diabet Med, 2007, 24(2):154-160.
[13] 金經, 羅佐杰. 氧化應激對胰島β細胞影響的研究進展[J]. 山東醫(yī)藥, 2009, 49(37):108-109.
Protective and Repairing Effects of 1,25 - dihydroxy Vitamin D3 on STZ induced INS-1 Cells Damage
HE Da-wei, NI Cheng-pei, WANG Yu-bin, WANG Jing, ZHOU Zheng-yu
(Laboratory Animal Center of Soochow University, Suzhou 215123, China)
Objective To explore the protection and repair effects of 1,25-dihydroxyvitamin D3 on STZ-induced INS-1 cells damage. Methods After inoculating the INS-1 cells into the culture plates,the proliferation activity of the cells was measured by CCK8 method. Secreted insulin and malondialdehyde (MDA) concentration, total anti-oxidation capability (T-AOC) in the culture medium were measured by ELISA. Results 1,25-dihydroxyvitamin D3 improved the viability and insulin secretion of the INS-1 cells(P<0.01). The cell proliferation (P<0.001), insulin secretion (P<0.01) and T-AOC (P<0.01) of the STZ group decreased, and the MDA content (P<0.01) significantly increased Compared with the STZ group, the protection and repairation group of 1,25-dihydroxyvitamin D3 can improve the above index in different degrees(P<0.01). Conclusions 1,25-dihydroxy vitamin D3 improved the insulin secretion of the INS-1 cells and had significantly protection and repair effects on the INS-1 cells damaged by STZ.
1,25-dihydroxyvitamin D3; Insulinoma (INS-1) cells; Streptozotocin (STZ); Insulin
Q95-33
A
1674-5817(2015)06-0458-04
10.3969/j.issn.1674-5817.2015.06.006
2015-03-15
江蘇省自然科學基金(BK20151217)
何大偉(1987-), 男, 蘇州大學醫(yī)學部2012級碩士研究生。E-mail: 645836427@qq.com
周正宇(1973-), 男, 副教授, 主要從事比較醫(yī)學研究。E-mail: zacharyzhou@suda.edu.cn