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        富G 寡核苷酸-N-甲基卟啉二丙酸熒光法測定鈾

        2015-07-13 03:12:00李名慧王永生
        應(yīng)用化工 2015年2期
        關(guān)鍵詞:鈾酰寡核苷酸緩沖溶液

        李名慧,王永生

        (南華大學(xué) 公共衛(wèi)生學(xué)院,湖南 衡陽 421001)

        鈾是一種無處不在的放射性元素。在工業(yè)廢棄物中,鈾主要呈陽離子復(fù)合物如氟化鈾酰、碳酸鈾酰、磷酸鈾?;蛄蛩徕欟5刃问酱嬖?在水溶液中,六價鈾最為穩(wěn)定[1]。隨著經(jīng)濟(jì)社會發(fā)展,鈾在軍事和核能方面的應(yīng)用日益增加,人們有更多的機(jī)會暴露于這種有害金屬。因此,建立一種經(jīng)濟(jì)、快捷測鈾的新方法也就勢在必行。本文基于富G 寡核苷酸形成的G-四聚體能與NMM 作用導(dǎo)致熒光顯著增強(qiáng)[2-4],而UO2+2與NMM 在酸性環(huán)境下作用導(dǎo)致熒光猝滅,并抑制NMM 與G-四聚體的作用,且熒光強(qiáng)度變化值與UO2+2濃度在一定范圍內(nèi)線性相關(guān)的原理,建立了富G 寡核苷酸-N-甲基卟啉二丙酸熒光法測定鈾的新方法。

        1 實(shí)驗(yàn)部分

        1.1 試劑與儀器

        醋酸雙氧鈾、NMM、HEPES、MES、Tris-HCl 等均為分析純;DNA 制品:5’-AGGAAGATGGGAGGGAGGGAGGGTACTAT-3’;實(shí)驗(yàn)用水均為滅菌超純水(電阻為18.26 MΩ);NMM 按照文獻(xiàn)[4-5]配制。

        UV-2550 紫外-可見分光光度計;F-4500 熒光分光光度計;AB204-S 電子分析天平;PB-21 型精密酸度計。

        1.2 實(shí)驗(yàn)方法

        取35 μL 2.16 ×10-6mol/L NMM 溶液,不同體積1.0 ×10-5mol/L UO2+2 標(biāo)準(zhǔn)溶液,40 μL pH 5.5的HEPES 緩沖溶液,40 μL 1. 0 mol/L KCl 溶液,40 μL 1.0 mol/L NaCl 溶液,依次加入2 mL EP 管中,用蒸餾水定容至450 μL,搖勻,常溫下反應(yīng)20 min,加入50 μL 1.0 ×10-6mol/L DNA,室溫反應(yīng)20 min,在熒光分光光度計進(jìn)行560 ~700 nm 波長范圍內(nèi)掃描,設(shè)置λex= 399 nm,在λmax= 609 nm處記錄空白組F0和實(shí)驗(yàn)組F,得ΔF=F0-F。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 熒光光譜特征

        熒光光譜分析見圖1。

        圖1 NMM--G-四聚體體系熒光光譜圖Fig.1 Fluorescence spectra of the NMM--Gquadruplex system

        NMM 本身具有微弱的熒光。NMM 能夠特異性地識別G-四聚體[5],導(dǎo)致體系的熒光強(qiáng)度顯著增強(qiáng)(圖1,曲線1)。在酸性環(huán)境中,可與之發(fā)生反應(yīng)猝滅熒光。應(yīng)用不同濃度的在酸性環(huán)境下與一定量的NMM 作用后,再加入適量的G 四聚體,此時溶液中剩余的NMM 可與G 四聚體結(jié)合,使熒光增強(qiáng)。濃度越高,則剩余的NMM 量就越少,體系相應(yīng)的熒光值也就越低,即濃度與體系的熒光值大小成反比(圖1,曲線2 ~10)。由此說明,在實(shí)驗(yàn)條件下,NMM 可能與作用形成復(fù)合物。與游離的NMM 不同,可能形成的NMM-復(fù)合物不能通過π-π 堆積作用而結(jié)合到G-四聚體表面,導(dǎo)致體系的熒光猝滅,且與濃度線性相關(guān)。

        2.2 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化

        2.2.1 緩沖溶液和pH 的選擇 分別在pH 5.5 的MES、HEPES、Tris-HCl 3 種緩沖體系中進(jìn)行實(shí)驗(yàn),見圖2。

        圖2 pH 值對熒光值的影響Fig.2 Effect of pH value on the fluorescence cDNA =0.1 ×10 -6 mol/L;cNMM =0.15 ×10 -6 mol/L;cUO22+ =0.4 ×10 -6 mol/L

        由圖2 可知,該反應(yīng)體系在HEPES 緩沖溶液中變化最明顯。在HEPES 緩沖溶液中,在pH 5.5 處ΔF 值最大;當(dāng)pH 接近中性時,反應(yīng)趨于終止。故本實(shí)驗(yàn)選擇pH 5.5 的HEPES 緩沖溶液控制體系的酸度。

        2.2.2 KCl 和NaCl 濃度對反應(yīng)體系的影響 研究了不同濃度KCl 和NaCl 對熒光值的影響,結(jié)果表明,當(dāng)KCl 和NaCl 的濃度均為80 mmol/L 時,體系熒光值變化最明顯。所以本實(shí)驗(yàn)采用80 mmol/L 作為KCl 和NaCl 的最優(yōu)濃度。

        2.2.3 反應(yīng)溫度對體系的影響 將反應(yīng)體系分別在10,20,30,40,50,60,70,80,90 ℃的溫度下進(jìn)行反應(yīng)。結(jié)果顯示,反應(yīng)在30 ℃時效果最好。溫度過低,分子運(yùn)動速度慢;溫度過高時,形成的G-四聚體不穩(wěn)定,NMM 無法與G-四聚體結(jié)合,從而影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

        2.3 干擾物質(zhì)的影響

        為了評價本實(shí)驗(yàn)對待測物的選擇性,根據(jù)環(huán)境樣品中其它金屬離子可能共存的情況,進(jìn)行了干擾實(shí)驗(yàn)。在相對標(biāo)準(zhǔn)偏差不超過10%的情況下,5 倍的Cu2+;10 倍的Ca2+;25 倍的Mg2+、Ni2+、Co2+、Pb2+;100 倍的Fe3+、Mn2+、Cr3+;200 倍的Hg2+、Cd2+均不會干擾實(shí)驗(yàn)測定。由此可看出,各金屬離子對本方法的干擾較小,用本方法測選擇性高。

        2.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線、檢出限及精密度

        依照實(shí)驗(yàn)方法,加入不同濃度的鈾標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行實(shí)驗(yàn),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線見圖3。

        由圖3 可知,在1.29 ×10-7~7.0 ×10-6mol/L范圍內(nèi),濃度與ΔF 呈線性關(guān)系,其回歸方程為:ΔF=4.91 +3.91 c(×10-7mol/L),r=0.999 4。

        根據(jù)CL= 3sb/k(sb為11 次空白值標(biāo)準(zhǔn)偏差,k為直線回歸方程的斜率)公式計算檢測限為3.86 ×10-8mol/L。平行配制11 管濃度分別為2. 0 ×10-7mol/L,1.6 ×10-6mol/L,5.0 ×10-6mol/L 的鈾標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行精密度的測定,其相對標(biāo)準(zhǔn)偏差分別為2.7%,3.9%和2.3%。

        2.5 樣品分析

        表1 樣品中測定結(jié)果(n=6)Table 1 Determination results ofin the samples

        表1 樣品中測定結(jié)果(n=6)Table 1 Determination results ofin the samples

        樣品 測定方法 測定值/(mol·L -1) RSD/% 加標(biāo)量/(mol·L -1) 測定總值/(mol·L -1) 回收率/% t 1 a 7.97 ×10 -7 0.70 5.0 ×10 -7 12.96 ×10 -7 99.8 1.06 b 7.93 ×10 -7 0.56 5.0 ×10 -7 12.75 ×10 -7 96.3 2 9.93 ×10 -7 2.15 5.0 ×10 -7 14.86 ×10 -7 98.5 2.07 b 10.16 ×10 -7 2.70 5.0 ×10 -7 15.01 ×10 -7 a 97.1

        3 結(jié)論

        [1] Solgy M,Taghizadeh M,Ghoddocynejad D. Adsorption of uranium(VI)from sulphate solutions using Amberlite IRA-402 resin:Equilibrium,kinetics and thermodynamics study[J].Annals of Nuclear Energy,2015,75:132-138.

        [2] Hu D,Pu F,Huang Z,et al. A quadruplex-based,labelfree,and real-time fluorescence assay for RNase H activity and inhibition[J]. Chemistry,2010,16(8):2605-2610.

        [3] Qin H,Ren J,Wang J,et al. G-quadruplex facilitated turn-off fluorescent chemosensor for selective detection of cupric ion[J]. Chem Commun(Camb),2010,46(39):7385-7387.

        [4] Zhao C,Wu L,Ren J,et al.A label-free fluorescent turnon enzymatic amplification assay for DNA detection using ligand-responsive G-quadruplex formation[J]. Chem Commun (Camb),2011,47(19):5461-5463.

        [5] Guo L,Nie D,Qiu C,et al. A G-quadruplex based labelfree fluorescent biosensor for lead ion[J].Biosens Bioelectron,2012,35(1):123-127.

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