付少彬,文福來，閆 松，張 蕓，李 義，岳昌武

(1.遵義醫(yī)學院 藥學院，貴州 遵義 563099；2. 遵義醫(yī)學院 醫(yī)學與生物學研究中心暨貴州省特色微生物資源及藥物開發(fā)重點實驗室，貴州 遵義 563099)

技術與方法

微生物轉化氧化槐定堿活性菌株的篩選

付少彬1,文福來1，閆 松1，張 蕓1，李 義1，岳昌武2

(1.遵義醫(yī)學院 藥學院，貴州 遵義 563099；2. 遵義醫(yī)學院 醫(yī)學與生物學研究中心暨貴州省特色微生物資源及藥物開發(fā)重點實驗室，貴州 遵義 563099)

目的 通過微生物轉化方法對氧化槐定堿進行結構修飾和改造，以期得到結構新穎或活性更強的衍生物，從中篩選出對氧化槐定堿有催化活性的微生物菌株。方法 采用稀釋法分離土壤微生物菌株，表面消毒法分離植物內生菌，通過薄層色譜法(TLC)對轉化反應進行篩選；通過表型和基因型鑒定活性菌株。結果 從遵義醫(yī)學院土壤分離得到土壤微生物菌株26株，從植物分離得到內生真菌60株；17株土壤微生物具有催化活性，其中菌株T003表現(xiàn)出強的選擇性，經顯微結構和16S rDNA 序列分析，鑒定其為Escherichiacoli。結論 微生物轉化法為氧化槐定堿的結構修飾和改造提供了一個很好的選擇方法。

生物轉化；生物堿；土壤微生物；選擇性

氧化槐定堿 (OSR) 和槐定堿 (SR) 是從豆科槐屬植物苦豆子(SophoraalopecuroidesL)中提取到的重要的生物堿。 研究表明槐定堿在興奮中樞神經系統(tǒng)、抗青霉素誘發(fā)的癲癇、免疫調節(jié)、抗腫瘤、抗病毒等方面表現(xiàn)出顯著的藥理活性[1-4]。氧化槐定堿和槐定堿在化學結構上非常相似，其差別在于N(氮)原子，氧化槐定堿是槐定堿的氮氧化物形式，近年來關于氧化槐定堿的研究也受到越來越多的關注。多項研究表明氧化槐定堿顯示出良好的鎮(zhèn)痛、消炎、鎮(zhèn)靜、抗心律失常、免疫調節(jié)活性、保護腦缺血等藥理活性[5-6]。

氧化槐定堿由于環(huán)系穩(wěn)定，所以可改造的位點較少，利用傳統(tǒng)的有機催化的方式對該類化合物的化學活潑位點進行結構修飾有很大的局限性，對于不活潑的位點用傳統(tǒng)的有機化學的方法進行修飾和改造相對較難，而微生物轉化反應卻可以催化非活潑的C-H或 N-H位點，其作為化學合成的有效補充正廣泛應用于合成反應中，進而可以為新藥研發(fā)提供更具價值的先導化合物[7-8]。此外，被稱之為“綠色化學”的微生物轉化法具有反應選擇性強(區(qū)域選擇性和立體選擇性)、反應條件溫和、副產物少、不造成環(huán)境污染和后處理簡單等優(yōu)點，所以近年來通過微生物轉化方法對結構復雜的天然產物進行結構修飾研究受到越來越多的關注[9-10]。但是，通過微生物轉化法對氧化槐定堿進行結構修飾的文獻少見報道。本文從土壤中分離土壤細菌及放線菌26株，植物內生菌60株來篩選具有對氧化槐定堿有催化活性的微生物酶催化劑，為尋找更具價值的先導化合物奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1 .1 底物 底物氧化槐定堿購自北京元寶山色譜科技有限公司(純度≥98%)。

1.1.2 培養(yǎng)基 富集、分離及篩選培養(yǎng)基：PDA培養(yǎng)基(去皮土豆200 g， 煮沸20 min；葡萄糖 20 g; 蛋白胨 10 g，加自來水定容至1 L)；LB 培養(yǎng)基 (蛋白胨10 g、酵母提取物5 g； 氯化鈉 10 g, 自來水定容至1 L, 用5 mol/L NaOH調節(jié) pH至7)。 固體培養(yǎng)基則在相應的液體培養(yǎng)基中1 L加入20 g 瓊脂。所有培養(yǎng)基均在121 ℃滅菌25 min備用。

1.2 方法

1.2.1 微生物菌株的分離與純化 土壤微生物的分離與純化：選取遵義醫(yī)學院三宿舍前和學校后兩處的土壤，距離地面10～20 cm，裝入已滅菌的三角瓶，置于4℃冰箱待用。稱取5 g土壤樣品于250 mL三角瓶(內裝50 mL無菌水以及玻璃珠)中，震蕩混勻30 min。靜止后量取1 mL上清液至于100 mL三角瓶中(內裝40 mL LB液體培養(yǎng)基)，在37 ℃，140 rpm黑暗下震蕩富集培養(yǎng)12 h，加入底物氧化槐定堿，繼續(xù)在相同條件下共培養(yǎng)2 d，用等體積乙酸乙酯萃取1次，減壓濃縮后經薄層色譜(TLC)檢測轉化結果。TLC條件：展開劑：三氯甲烷-甲醇=5：1，顯色劑：碘以及改良碘化鉍鉀。經TLC鑒定有陽性轉化反應的土壤樣品進行濃度梯度稀釋(10-1，10-2，10-3，10-4，10-5，10-6，10-7)，挑取單菌落，進行劃線純化3次，得到純培養(yǎng)物，于4℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

植物內生真菌的分離與純化：選取采自遵義市金鼎山的藥用植物松穗卷柏SelaginellalaxistrobilaK. H. Shing的健康組織通過常規(guī)的表面消毒的方法進行內生真菌的分離與純化[11]。

1.2.2 活性菌株的篩選 對分離得到的26株土壤微生物通過LB培養(yǎng)基進行氧化槐定堿轉化反應的篩選而植物內生真菌則采用PDA培養(yǎng)基進行篩選。土壤微生物在37 ℃，140 rpm條件下培養(yǎng)4～8 h后加入0.5 g/mL底物(乙醇溶解)，相同條件下繼續(xù)共培養(yǎng)2～3 d后用等體積乙酸乙酯萃取1次，減壓蒸發(fā)溶劑。經TLC檢測轉化反應。展開劑：三氯甲烷-甲醇=5：1，改良碘化必鉀顯色。植物內生真菌在28 ℃，140 rpm條件下培養(yǎng)2～3 d，加入底物氧化槐定堿0.5 g/mL(乙醇溶解)，相同條件下共培養(yǎng)5 d后萃取培養(yǎng)物。萃取方法與檢測方法同上。

1.2.3 活性菌株T003的鑒定 對于篩選的活性菌株采用表型與基因型相結合的方法進行鑒定。表型通過觀察活性菌株的菌落形態(tài)與細胞形狀(革蘭氏染色)來鑒別?；蛐蛣t通過測定16S rDNA序列進行比對分析進行種屬鑒定，DNA 提取與PCR反應條件參考已有文獻[12]。

2 結果

2.1 菌株的分離 從選取的5份土壤樣品中，只有三宿舍前的土壤微生物顯示陽性轉化反應。后續(xù)的活性菌株的分離純化也只針對于此處土壤。通過濃度稀釋法共得到土壤微生物26 株。圖1所示，10-5的稀釋濃度得到的單菌落最多，為最優(yōu)稀釋度。從植物松穗卷柏中得到內生真菌60 株。

圖1 10-4 、10-5 、10-6稀釋濃度下的單菌落

2.2 氧化槐定堿轉化反應的篩選 在篩選的86 株微生物菌株中，17 株土壤微生物顯示陽性反應(見圖2)。有趣的是，菌株T003表現(xiàn)出強的選擇性，因為只轉化出一種產物，且在TLC圖譜中底物OSR的點幾乎已看不見(見圖3)。而植物內生真菌均未發(fā)現(xiàn)轉化現(xiàn)象。

對照代表底物(OSR), 1-16 代表活性菌株，依次為T001, T002, T005, T007, T009, T010, T011, T012, T014, T015, y2, y3, T016, T017, T020, T023。

圖3 菌株T003的選擇性轉化

圖4 菌株T003的革蘭氏染色結果

2.3 活性菌株T003的鑒定 從土壤中分離的細菌T003因為選擇性催化生成單產物，所以作為我們后續(xù)研究的重點。其菌落形態(tài)特征為：菌落表面較光滑、透明狀、較濕潤、易挑取、粘稠狀 ，具有細菌的典型菌落特征。在電子顯微鏡下觀察其細胞形態(tài)，如圖4所示，細胞呈短桿狀，革蘭氏染色陰性。

16S rRNA 基因序列見圖5，長1416bp，經NCBI的Blast在線比對，與Escherichiacoli相似度100%。經MEGA 5.1軟件進行聚類分析構建系統(tǒng)發(fā)育樹(見圖6)。綜合表型和基因型分析，活性菌株T003鑒定為Escherichiacoli。

圖5 菌株T003的16S rDNA序列

圖6 菌株T003的系統(tǒng)進化分析

3 討論

土壤是微生物的“大本營”。 土壤具有微生物生長所需要的各種條件。土壤中有豐富的有機質無機礦物質，能為微生物提供碳源、氮源和能量。土壤的良好持水性、多孔性、接近中性的酸堿度、相對穩(wěn)定的溫度等，這些都能滿足微生物生長繁殖的要求。因而土壤事實上是“微生物天然的培養(yǎng)基”。在這里微生物的種類最多，數量也最大。內生真菌普遍存在于各種陸生和水生植物中，具有分布廣、種類多的特點。目前的研究表明，植物內生真菌是一個龐大的特殊真菌類群，幾乎所有的植物組織中都發(fā)現(xiàn)有內生真菌的存在。按地球目前已知的25萬種植物計算，內生真菌的總數可以超過100萬種。由此可見，植物內生菌也是一個巨大的資源。

我們通過富集培養(yǎng)、活性檢測指導下得出采自遵義醫(yī)學院三宿舍前的土壤樣品含有能夠催化OSR的微生物菌株，以此處土壤為樣本分離得到土壤微生物26株。通過常規(guī)表面消毒得到松穗卷柏內生真菌60株。經TLC檢測，在篩選的86株菌株中，17株土壤微生物顯示出陽性反應。由此可見，土壤中蘊藏著豐富的活性菌株。但是所有的植物內生真菌均未見轉化產物。土壤微生物T003因為較高的選擇性催化OSR成單一產物而成為我們研究的重點，經表型和基因型分析將其鑒定為Escherichiacoli。下一步我們將對該菌株進行放大發(fā)酵培養(yǎng)，并對其轉化產物進行結構鑒定，為新藥研發(fā)提供更多的化合物。

[1] Yu J Q, Jiang Y X. Effects of sophoridine on central nervous system in mice[J].Chinese Traditional and Herbal Drugs，2006，37 (11) : 1688．

[2] Lu Z G, Hou Y H, Lu N Q，et al. The Epileptic Seizure-like Effect of Sophora Alkaloid Sophoridine on Experimental Animals[J].Journal of Ningxia Medical University, 2009，31 (6) : 723．

[3] Peng X d, Lu Z G, Mu Q C，et al. Epileptic seizure-like effect of Sophora alkaloid sophoridine on experimental animals[J].China Journal of Chinese Materia Medica, 2010，35 (1) :122．

[4] Bai J, Zhang L N, Hu S T,et al. A Study of Oxymartrine and Sophoridine on Seizure Rats Induced by Penicillin [J].Journal of Ningxia Medical College, 2006，28 (6) : 476．

[5] Yang G, Yan L, Gao J X， et al. Analgesic effect of oxysophoridine with intravenous injection andits influence on central GABA_ARα1 receptor in mice [J].Chinese Pharmacological Bulletin，2009，25(11): 1453-1456.

[6] Zhang K, Zhao J, Liu H Y, et al. Protective effects of oxysophoridine on acute cerebral ischemia injury in mice[J].Pharmacology and Clinics of Chinese Materia Medica, 2011,27(3):26-28.

[7] ChenY Z, Yang M, Zhuo J R，et al. Asymmetric synthesis of chiral 4-chlorobenzhydrol by C-H bonds oxidation with microbial enzymes [J]. J Zunyi Med Univ, 2014, 37(1):67-71.

[8] Chen Y Z, Li K, Shan J. Enantioselective hydroxylation C-H bonds of ethlbenzene to (R )-and (S) -1-phenylethanol[J]. J Zunyi Med Univ,2014,37(4):369-372.

[9] Fu S B, Yang J S, Cui J L, et al. Biotransformation of Ursolic Acid by an Endophytic Fungus from Medicinal PlantHuperziaserrata[J]. Chem Pharm Bull,2011, 59(9) :1180-1182.

[10] Feng X,Li D P,Zhang Z S,et al. Microbial transformation of the anti-diabetic agent corosolic acid[J].Natural Product Research, 2014, 28(21):1879-1886.

[11] Fu S B, Yang J S, Cui J L,et al. Multihydroxylation of ursolic acid byPestalotiopsismicrosporaisolated from the medicinal plantHuperziaserrata[J].Fitoterapia, 2011, 82(7):1057-1061.

[12] Wang M，Li Y Y，Shao M Y,et al.Separation and phylogenetic analysis of actinomycetes with activity of againstCandidaalbicansfrom Chishui danxia soil [J]. J Zunyi Med Univ,2014,37(4):404-408.

[收稿2014-10-20;修回2014-12-10]

(編輯：王福軍)

Strains screening on microbial transformation of oxysophoridine

FuShaobin1,WenFulai1,YanSong1,ZhangYun1,LiYi1,YueChangwu2

(1. School of Pharmacy, Zunyi Medical University, Zunyi Guizhou 563099, China; 2. Research Center for Medicine Biology, Guizhou Key Laboratory of Characteristic Microbial Resources & Drug Development, Zunyi Medical University, Zunyi Guizhou 563099, China)

Objective The structuture of oxysophoridine(ORS) were modified by microbial transformation to obtain derivatives with novel structure or Stronger activity.The strains with catalytic activity of oxysophoridine were screened.Methods Soil microbes were separated and purified by dilution method while plant endophytic fungi were obtained by surface disinfection. Transformation reaction was detected via TLC. Active stains were identified by phenotype and genotype. Results Twenty-six soil microbes were isolated from soil in Zunyi Medical University and 60 endophytic fungi from plant were purified. Seventeen strains of soil microbes exhibited the catalytic activity. Interestingly, strain T003 with high selectivity was identified asEscherichiacolibasedonphenotype and genotype.Conclusion It provides an alternative for structure modification of ORS by microbial transformation.

biotransformation; alkaloids; soil microbes; selectivity

國家自然科學基金資助項目(NO: 21462057)；貴州省普通高等學校微生物資源及藥物開發(fā)特色重點實驗室開放基金(NO: GZMRD-2014-003)；貴州省中醫(yī)藥管理局中醫(yī)藥、民族醫(yī)藥科學技術課題研究資助(NO: QZYY-2014-083)；大學生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)項目(NO: [2014] 5838)。

R284

A

1000-2715(2015)02-0190-03