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        高效液相色譜法測(cè)定藤茶中二氫楊梅素和楊梅素含量

        2015-05-02 02:06:50陳圖鋒高文華
        亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥 2015年1期
        關(guān)鍵詞:藤茶汕頭大學(xué)母液

        陳圖鋒,高文華*,唐 敏

        (1.汕頭大學(xué) 分析測(cè)試中心,廣東 汕頭 515063;2.汕頭大學(xué) 化學(xué)系,廣東 汕頭 515063)

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        高效液相色譜法測(cè)定藤茶中二氫楊梅素和楊梅素含量

        陳圖鋒1,2,高文華1,2*,唐 敏2

        (1.汕頭大學(xué) 分析測(cè)試中心,廣東 汕頭 515063;2.汕頭大學(xué) 化學(xué)系,廣東 汕頭 515063)

        目的:建立以高效液相色譜法同時(shí)測(cè)定藤茶中二氫楊梅素和楊梅素含量的方法。方法:采用高效液相色譜法。色譜柱為SUPELCO Discovery C18HPLC Column (25cm×4.6mm,5μm);流動(dòng)相為甲醇-0.03%磷酸溶液,采用梯度洗脫,流速為0.8mL·min-1,楊梅素和二氫楊梅素檢測(cè)波長分別為373nm和290nm。結(jié)果:藤茶中二氫楊梅素和楊梅素分別在0.15~94.0mg·L-1(R2=1)和0.62~77.50mg · L-1(R2=0.999 7)濃度范圍內(nèi)有良好線性關(guān)系;平均加標(biāo)回收率分別為89.7%、93.5%,RSD<4.5%。結(jié)論:該法簡便、快速、準(zhǔn)確,可用于藤茶的質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)研究及其質(zhì)量控制。

        藤茶;二氫楊梅素;楊梅素;高效液相色譜法;含量測(cè)定

        藤茶(Ampelopsisgrossedentata)又名山甜茶、眉茶、白茶、龍須茶、溪黃草等,屬于葡萄科蛇葡萄屬中的顯齒蛇葡萄,是一種野生藤本植物[1]。研究表明,黃酮類化合物是藤茶的主要活性成分[2-3],含量高達(dá)38%以上,其中二氫楊梅素與楊梅素含量最高[4]。二氫楊梅素具有清除自由基、抗氧化、抗血栓、抗腫瘤、降低血脂和血糖水平,提高SOD活性等特殊功效[5]。楊梅素具有抗腫瘤、降低神經(jīng)毒性、降血糖、保肝護(hù)肝、抗突變、預(yù)防齲齒等多種藥理活性[6-7]。

        目前文獻(xiàn)報(bào)道對(duì)于藤茶的質(zhì)量監(jiān)控僅以測(cè)定二氫楊梅素含量為主,主要有HPLC[8]和紫外-可見分光光度法[9]。紫外-可見分光光度法適于大類成分的含量測(cè)定,如總黃酮、總蒽醌、總生物堿等。本試驗(yàn)采用HPLC-DAD雙波長同時(shí)檢測(cè)二氫楊梅素和楊梅素含量,以期為藤茶質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的建立和進(jìn)一步開發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 儀器

        Agilent1100高效液相色譜儀,G1315B DAD檢測(cè)器,ChemStation for LC 3D Rev.A.10.01[1635]工作站,METTLER TOLEDO AL204電子天平,Millipore Milli-Q50 純水器,上??茖?dǎo)超聲儀器SK2200HP超聲波水浴,上海大普儀器PHS-3CA型精密酸度計(jì)。

        1.2 試劑

        甲醇(TEDIA);乙醇(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);丙酮(廣東西隴化工);石油醚(30~60℃)(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);乙酸(廣州試劑三廠);磷酸(國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);藤茶樣品(恩施綠神(中港合資)生物制品有限公司);楊梅素對(duì)照品(阿拉丁,批號(hào):21487);二氫楊梅素對(duì)照品(中國醫(yī)學(xué)科學(xué)研究院藥物研究所);甲醇為色譜純,其它試劑均為分析純。

        1.3 色譜條件

        色譜柱:SUPELCO Discovery C18HPLC Column (25cm×4.6mm,5μm);流動(dòng)相:甲醇-0.03%磷酸,梯度洗脫(0min,甲醇-0.03%磷酸比例為12∶88,25min比例為65∶35;30~40min,比例為12∶88);流速:0.8 mL·min-1;柱溫:35 ℃;波長:二氫楊梅素(290nm)、楊梅素(373nm);進(jìn)樣量:5μL。在上述色譜條件下進(jìn)行測(cè)定,二氫楊梅素和楊梅素的色譜見圖1。

        圖1 二氫楊梅素、楊梅素對(duì)照品色譜

        1.4 標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制

        精確稱取楊梅素1.55mg,二氫楊梅素1.88mg,分別置于10mL容量瓶中,甲醇定容至刻度,楊梅素標(biāo)準(zhǔn)母液濃度為155mg· L-1,二氫楊梅素標(biāo)準(zhǔn)母液濃度為188mg·L-1,待用。

        分別量取上述配制好的楊梅素標(biāo)準(zhǔn)母液和二氫楊梅素標(biāo)準(zhǔn)母液各5mL,置于10mL容量瓶中,甲醇定容至刻度。得楊梅素77.5mg· L-1、二氫楊梅素94mg·L-1的混合標(biāo)準(zhǔn)母液,待用。

        1.5 樣品處理

        1.5.1 楊梅素待測(cè)液 取樣品藤茶,精確稱量0.500g,置于10mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度。超聲提取30min,過0.45μm的濾膜過濾,此為楊梅素待測(cè)液。

        1.5.2 二氫楊梅素待測(cè)液 取0.5mL“1.5.1”項(xiàng)中制備的楊梅素待測(cè)液于50mL容量瓶中,用甲醇稀釋至刻度,過0.45μm的濾膜過濾,此為二氫楊梅素待測(cè)液(由于藤茶中二氫楊梅素含量較高,所以需要稀釋)。藤茶樣品色譜見圖2。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 樣品處理?xiàng)l件的選擇

        稱取0.5g的藤茶樣品,置于10mL容量瓶中,分別比較了甲醇、乙醇、石油醚、丙酮等提取溶劑,結(jié)果表明,以甲醇作為提取溶劑,超聲提取時(shí)間為30min,可獲得良好的提取效果。

        2.2 色譜條件的優(yōu)化和選擇

        2.2.1 最適波長選擇 對(duì)二氫楊梅素峰和楊梅素峰在200~400nm波長范圍內(nèi)進(jìn)行紫外掃描。結(jié)果表明二氫楊梅素在205nm和290nm 處吸收值高,而楊梅素在208nm和373nm 處吸收值高,考慮到在205nm和208nm處樣品的干擾較大,因此選擇290nm作為二氫楊梅素的檢測(cè)波長,373nm作為楊梅素的檢測(cè)波長。

        圖2 藤茶樣品色譜

        2.2.2 流動(dòng)相的選擇 楊梅素和二氫楊梅素在不同pH值下具有不同的穩(wěn)定性[10-11],當(dāng)pH≥9.0時(shí)二氫楊梅素會(huì)因處于堿性環(huán)境而發(fā)生自動(dòng)氧化作用,生成了其它成分;楊梅素在堿性條件下穩(wěn)定性極差。所以本實(shí)驗(yàn)選用乙酸-甲醇和磷酸-甲醇作為流動(dòng)相,并對(duì)pH=2.0、2.5、3.3、4.4、5.5、6.4時(shí)的譜圖進(jìn)行比較。結(jié)果表明采用甲醇-0.03%磷酸,0.03%磷酸pH值為2.5較好。

        2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線及相關(guān)系數(shù)

        根據(jù)“1.4”項(xiàng)中配制好的混合標(biāo)準(zhǔn)母液濃度,逐級(jí)稀釋配制成楊梅素、二氫楊梅素濃度為(77.5mg· L-1,94.0mg·L-1) (15.5mg·L-1,18.8mg·L-1),(3.1mg·L-1,3.76mg·L-1),(0.62mg·L-1,0.752mg·L-1),(0.124mg·L-1,0.150 4mg·L-1)的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,依次從低濃度到高濃度,按“1.3”項(xiàng)色譜條件進(jìn)行測(cè)定,每一濃度連續(xù)測(cè)定3次,以峰面積平均值Y為縱坐標(biāo),濃度X為橫坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得楊梅素回歸方程:Y=14.104X -10.055(R2=0.999 7),二氫楊梅素回歸方程:Y=15.27X +0.991 4(R2=1),表明楊梅素在0.62~77.50mg·L-1、二氫楊梅素在0.15~94.00mg·L-1范圍內(nèi)具有良好線性關(guān)系。

        2.4 最低檢出限

        2.4.1 楊梅素最低檢出限 取楊梅素濃度為0.62mg·L-1的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液3mL于5mL容量瓶中,按“1.3”項(xiàng)中色譜條件進(jìn)行測(cè)定,測(cè)得信噪比為3時(shí),楊梅素最低檢出限為20mg·kg-1。

        2.4.2 二氫楊梅素最低檢出限 取二氫楊梅素濃度為0.15mg·L-1混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,按“1.3”項(xiàng)中色譜條件進(jìn)行測(cè)定,測(cè)得信噪比為3時(shí),二氫楊梅素的最低檢出限為240mg· kg-1。

        2.5 回收率試驗(yàn)

        向空白樣品中加入3種濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)溶液,按照前述處理方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),每個(gè)水平重復(fù)測(cè)定3次,得到其回收率,見表 1。

        表1 加標(biāo)回收率測(cè)定結(jié)果

        實(shí)驗(yàn)表明,高、中、低濃度的加標(biāo)回收率均在88.00%以上,RSD<4.5%,符合要求。

        2.6 精密度試驗(yàn)

        取“2.3”項(xiàng)中楊梅素、二氫楊梅素分別為(15.5mg·L-1,18.8mg·L-1)的標(biāo)準(zhǔn)混合溶液進(jìn)行精密度檢測(cè),按照上述色譜條件連續(xù)進(jìn)樣10次,測(cè)得峰面積。分別得到楊梅素和二氫楊梅素的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為2.93%、1.17%,符合要求。

        2.7 藤茶中楊梅素和二氫楊梅素含量的測(cè)定

        采用本方法對(duì)藤茶樣品進(jìn)行檢測(cè),最終測(cè)得楊梅素含量為6.73mg·g-1,二氫楊梅素含量為135.2mg·g-1。

        3 結(jié)論

        藤茶中楊梅素和二氫楊梅素分別在0.62~77.50mg·L-1和0.15~94.00mg·L-1濃度范圍內(nèi)有良好的線性關(guān)系;平均加樣回收率分別為93.5%、89.7%,RSD<4.5%。結(jié)果表明該方法操作簡便、快速、準(zhǔn)確,可為藤茶質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)的建立和進(jìn)一步開發(fā)利用提供科學(xué)依據(jù)。

        [1] 中國科學(xué)院植物研究所.中國高等植物圖鑒補(bǔ)編(第二冊(cè))[M].北京:科學(xué)出版社,1979:353.

        [2] 李剛,鄭作文.藤茶總黃酮含藥血清對(duì)2215細(xì)胞分泌乙肝病毒HBsAg和HBeAg的影響研究[J].中國藥房,2008,19(18):1366.

        [3] 李剛,鄭作文,唐云麗.藤茶總黃酮體外抗人肝癌細(xì)胞作用研究[J].中國藥房,2008,19(9):652.

        [4] 覃沽萍,許學(xué)鍵,李劍江.廣西瑤族藤茶化學(xué)成分的研究[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),1997,9(4):41.

        [5] 楊學(xué)敏,陳立峰.二氫楊梅素的生物活性研究進(jìn)展[J].中醫(yī)藥報(bào),2008,14(12):86-89.

        [6] 張秀娟,黃清玲,季宇彬.楊梅素的藥理活性研究進(jìn)展[J].天津藥學(xué),2008,20(5):57-60.

        [7] 臧寶霞,金鳴,吳偉,等.楊梅素對(duì)血小板活化因子拮抗的作用[J].藥學(xué)學(xué)報(bào),2003,38(11):831-833.

        [8] 何桂霞,裴剛,楊偉麗,等.HPLC測(cè)定藤茶不同采收時(shí)期及不同部位的二氫楊酶素含量[J].中成藥,2004,26(3):210-212

        [9] 陳績光,王玫馨,蔡沛祥,等.無刺根中蛇葡萄素和楊梅素的含量測(cè)定[J].中藥材,1997,20(1):23-24.

        [10] 何桂霞,裴剛,李斌,等.二氫楊梅素的穩(wěn)定性研究[J].中國新藥雜志,2007,16(22):1888-1890.

        [11] 王志江.楊梅素的穩(wěn)定性研究[J].廣東微量元素科學(xué),2008,15(10):37-40.

        (責(zé)任編輯:宋勇剛)

        Content Determination of Dihydromyricetin and Myricetin in Leaves ofAmpelopsisGrossedentataby HPLC

        Chen Tufeng1,Gao Wenhua1,2*,Tang Min2

        (1.Analysis & Testing Center,Shantou University,Guangdong 515063, China; 2.Department of Chemistry, Shantou University, Guangdong 515063, China )

        Objective:To develop a method for the content determination of dihydromyricetin(DMY) and myricetin(MY)in leaves ofAmpelopsisgrossedentata.Methods:HPLC method was adopted.The separation was performed on SUPELCO Discovery C18 (25cm×4.6mm,5μm)column with 0.03% phorsphoric acid-methanol as mobile phase at flow rate of 0.8 mL·min-1.The detection wavelength of MY was set at 373 nm,and that of DMY was set at 290 nm. Results:The linear range was 0.15~94mg·L-1(R2=1)for DMY and 0.62~77.50mg·L-1(R2=0.999 7) for MY with average recovery of 89.7% and 93.5%,RSD<4.5%. Conclusion:The method is simple,fast,accurate aprovide the basis for the quality standard of leaves ofA.grossedentata.

        Leaves ofAmpelopsisgrossedentata;Dihydromyricetin;Myricetin;HPLC;Content Determination

        2014-08-20

        廣東省自然科學(xué)基金資助項(xiàng)目(S2011010005208);廣東省教育廳科技創(chuàng)新項(xiàng)目(2013KJCX0078)

        陳圖鋒(1978-),男,廣東省汕頭大學(xué)分析測(cè)試中心助理工程師,研究方向?yàn)榉治龌瘜W(xué)。

        高文華(1968-),男,博士,廣東省汕頭大學(xué)教授,研究方向?yàn)榉治龌瘜W(xué)。E-mail: whgao@stu.edu.cn

        R284.1

        A

        1673-2197(2015)01-0028-02

        10.11954/ytctyy.201501014

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