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        大承氣湯瀉下作用對內(nèi)毒素血癥大鼠腸道菌的影響

        2015-05-02 00:52:52汪德超
        亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥 2015年4期

        謝 斌,汪德超,陳 喬

        (1.江西中醫(yī)藥大學(xué),江西 南昌 330006;2.韶關(guān)市中醫(yī)院,廣東 韶關(guān) 512000)

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        大承氣湯瀉下作用對內(nèi)毒素血癥大鼠腸道菌的影響

        謝 斌1,汪德超2,陳 喬1

        (1.江西中醫(yī)藥大學(xué),江西 南昌 330006;2.韶關(guān)市中醫(yī)院,廣東 韶關(guān) 512000)

        目的:探索大承氣湯瀉下作用對內(nèi)毒素血癥大鼠腸道乳酸桿菌和大腸桿菌的影響。方法:將SD大鼠盲腸結(jié)扎穿孔造成內(nèi)毒素血癥模型,術(shù)后8h分別予以大承氣湯高(5g/kg·q12h)、中(2.5g/kg·q12h)、低(1.25g/kg·q12h)劑量灌胃給藥,每12h 給藥1次,共5次。以實時熒光定量PCR檢測大鼠造模前及造模后8h(給藥前)、2天、7天腸道大腸桿菌及乳酸桿菌數(shù)量。結(jié)果:造模后8h,高、中、低劑量大鼠大腸桿菌數(shù)量LOG值增加大于3;造模后2天,高、中劑量大腸桿菌數(shù)量LOG值減少,乳酸桿菌數(shù)量LOG值增加;造模后7天,高、中劑量乳酸桿菌、大腸桿菌數(shù)量LOG值恢復(fù)至造模前水平。結(jié)論:大承氣湯瀉下作用治療內(nèi)毒素血癥的微生態(tài)機理可能與促進乳酸桿菌增殖并抑制大腸桿菌生長有關(guān)。

        大承氣湯;內(nèi)毒素血癥;乳酸桿菌;大腸桿菌

        內(nèi)毒素血癥(endotoxemia,ETM)屬陽明腑實證,其發(fā)病機理為腸道G-菌過度增殖,內(nèi)毒素入血[1],中醫(yī)治以通腑瀉熱,方用大承氣湯功效卓越。研究表明,大承氣湯瀉熱通腑能驅(qū)除腸道G-菌并促進內(nèi)毒素排出[2],然而,現(xiàn)代微生態(tài)學(xué)理論認(rèn)為,治療疾病是使正常有益菌群充分發(fā)揮生物拮抗作用,從而抑制或驅(qū)除致病菌,但該方瀉下作用對ETM腸道有益菌的影響尚不清楚,闡明瀉下對腸道菌的影響對理解大承氣湯治療ETM的作用機制具有重要意義。

        本文選取典型有益菌乳酸桿菌及條件致病菌大腸桿菌為代表,以QPCR(Real-time Quantitative PCR Detecting System)檢測大承氣湯用藥前后ETM大鼠腸道兩種細(xì)菌數(shù)量的動態(tài)變化,從微生態(tài)菌群相互拮抗的角度探索大承氣湯治療ETM的通腑瀉熱作用機制。

        1 材料

        1.1 菌種

        乳酸桿菌購自中國普通微生物菌種保藏管理中心,編號CGMCC1.1480,大腸桿菌購自中國醫(yī)學(xué)細(xì)菌保藏管理中心,編號CMCC44102。

        1.2 動物

        清潔級SD大鼠,雌雄各半,體重(200±20)g,購自湖南斯萊克曼達(dá)實驗動物有限公司,批號:SCXK(湘)2011-0003。

        1.3 藥物

        大承氣湯:生大黃12g(后下)、芒硝9g(沖)、厚樸15g、枳實12g,購自江西省中醫(yī)院。

        1.4 試劑及儀器

        EZNA stool DNA Kit,OMEGA,lot:00D40 15010 00H30 L017;QPCR Kit,TaKaRa,lot:BK3305;DU730型核酸蛋白分析儀,美國貝克曼;StepOne Real-Time PCR System,Applied Biosystems。

        2 方法

        2.1 藥物制備

        取枳實飲片12g,厚樸飲片15g,加10倍量水360mL浸泡30min后,沸水煎煮20min,濾液熱浸12g大黃10min后過濾,厚樸和枳實藥渣再加8倍量水300mL左右,沸水煎煮20min,濾液再熱浸大黃10min后過濾,合并兩次大黃濾液,趁熱加入芒硝9g,攪拌使溶解后,低溫濃縮至48mL,以上中藥制成濃度為1g生藥/mL的藥液,置于4℃冰箱內(nèi)保存?zhèn)溆谩?/p>

        2.2 造模

        采用目前國際公認(rèn)的盲腸結(jié)扎穿孔術(shù)(CLP)所致大鼠ETM模型[3]。

        2.3 給藥

        大承氣湯高、中、低劑量給藥劑量分別為5g/kg·q12h、2.5g/kg·q12h、1.25g/kg·q12h,藥量計算方法參考陳奇主編《中藥藥理學(xué)》,計算公式為:B種動物的劑量(mg/kg)=W×A種動物的劑量(mg/kg),每12h給藥1次,共5次。

        2.4 樣本采集

        以無菌鑷子采取大鼠造模前、造模后8h(給藥前)、造模后2天、造模后7天時新鮮糞便3粒,貯于無菌1.5mLEP管,記錄時間、組別,并立即于-20℃冰箱保存。

        2.5 引物

        引用國外文獻設(shè)計引物序列:乳酸桿菌(Lactobacillus group,341bp)[4-5],F(xiàn):5'-AGCAGTAGGGAATCTTCCA-3',R:5'-CACCGCTACACATGGAG-3';大腸桿菌(Escherichia coli subgroup 340bp)[6],F(xiàn):5'-GTTAATACCTTTGCTCATTGA-3',R:5'-ACCAGGGTATCTAAT CCTGTT-3',英濰捷基(上海)貿(mào)易公司生產(chǎn)。

        2.6 標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制

        大腸桿菌經(jīng)復(fù)蘇、傳代3次,采用涂板法計算細(xì)菌濃度為5.67×109個/mL。取細(xì)菌1mL,細(xì)菌基因組提取試劑盒提取DNA,將得到的DNA樣品用無菌TE稀釋至1/10倍,DU730型核酸蛋白分析儀測定A260、A280(DNA質(zhì)量應(yīng)滿足A260/280≈1.7~1.9),同時根據(jù)細(xì)菌基因組大小計算相應(yīng)模板數(shù)。將滿足純度質(zhì)量要求的DNA樣品用無菌TE連續(xù)10倍梯度稀釋至10-9,制成系列標(biāo)準(zhǔn)品,將其作為陽性模板進行實時熒光定量PCR反應(yīng)。

        根據(jù)文獻[7],Ct值(每個反應(yīng)體系中熒光信號到達(dá)設(shè)定域值時經(jīng)歷的循環(huán)數(shù))與該模板起始拷貝數(shù)的對數(shù)存在線性關(guān)系,起始拷貝數(shù)的對數(shù)與Ct值成反比,以陽性模板數(shù)的對數(shù)為橫坐標(biāo),以獲取的Ct值為縱坐標(biāo)即可作出標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        2.7 糞便細(xì)菌DNA提取

        按糞便細(xì)菌提取試劑盒說明提取細(xì)菌DNA。

        2.8 QPCR條件優(yōu)化

        以樣本細(xì)菌DNA為模板,普通PCR擴增,擴增條件為95℃預(yù)變性5min;95℃,30s;61℃,30s;72℃,10s;35個循環(huán)后,72℃延伸10min。以1.5%瓊脂糖凝膠電泳分離鑒定PCR產(chǎn)物,與Marker條帶對比,確定DNA片段為目的片段。

        2.9 腸道菌DNA的QPCR

        按試劑盒說明,采用20μL反應(yīng)體系、兩步法PCR反應(yīng)程序,每個樣本重復(fù)檢測3次,加入SYBR Premix Ex TapⅡ 10μL,F(xiàn)orward Primer 0.8μL,Reverse Primer 0.8μL,Rox Reference Dye(50×) 0.4μL, DNA模板2μL,ddH2O6μL,擴增條件為95℃預(yù)變性30s;95℃,5s;61℃,34s;72℃,1min;35個循環(huán)。反應(yīng)結(jié)束后記錄相應(yīng)Ct值。

        2.10 數(shù)據(jù)處理

        3 結(jié)果

        3.1 大腸桿菌(CMCC44102)標(biāo)準(zhǔn)曲線

        大腸桿菌(CMCC44102)DNA經(jīng)QPCR獲取建立標(biāo)準(zhǔn)曲線數(shù)據(jù),見表1。

        表1 大腸桿菌(CMCC44102)標(biāo)準(zhǔn)曲線數(shù)據(jù)

        由此數(shù)據(jù),用Excel作出標(biāo)準(zhǔn)曲線及方程,R2=0.999 1,見圖1。

        圖1 大腸桿菌(CMCC44102)DNA經(jīng)QPCR建立的標(biāo)準(zhǔn)曲線

        3.2 大鼠腸道菌數(shù)量的常用對數(shù)值

        研究結(jié)果表明:造模后8h(給藥前),大腸桿菌數(shù)量增加顯著,乳酸桿菌數(shù)量減少;造模后2d,高、中劑量大鼠腸道內(nèi)過度增殖的大腸桿菌明顯減少,乳酸桿菌數(shù)量迅速增加;造模后7d時,高、中劑量大鼠乳酸桿菌數(shù)量繼續(xù)增殖,而大腸桿菌數(shù)量基本恢復(fù)至造模前水平。見表2。

        表2 大鼠腸道菌數(shù)量的常用對數(shù)值 (±s)

        4 討論

        中醫(yī)理論認(rèn)為,ETM屬外感病極期,其病機為腑實內(nèi)結(jié)、熱甚陰竭,為典型的陽明腑實證,而大承氣湯是《傷寒論》治療陽明腑實證的經(jīng)典方劑,臨床用治ETM功效卓著。研究證實,該方具有瀉熱通腑、驅(qū)除腸道G-菌、促進內(nèi)毒素排出的藥理作用[2],這是本研究選用大承氣湯的理論基礎(chǔ)。

        內(nèi)毒素的主要化學(xué)成分為脂多糖(lipopolysaccharide/endotoxin,LPS),是G-菌(如大腸桿菌、傷寒桿菌、結(jié)核桿菌、痢疾桿菌)細(xì)胞壁的主要成分,而ETM發(fā)病的主要機理是腸道G-菌過度增殖,死亡細(xì)菌釋放內(nèi)毒素入血[1]。

        乳酸桿菌是典型有益菌,現(xiàn)代微生態(tài)學(xué)理論認(rèn)為,該菌能拮抗條件致病菌的生長,具有維護機體健康和調(diào)節(jié)免疫功能[8],抑制致病性有害菌和外源性細(xì)菌的生長,阻止有害菌入侵,糾正腸道菌群失調(diào),重建腸道微生態(tài)的作用[9]。

        因此,除了瀉下驅(qū)除過度繁殖的G-菌外,促進腸道有益菌增殖,以拮抗G-菌增殖,恢復(fù)腸道菌群的平衡是治療ETM的關(guān)鍵。故本文擬引入現(xiàn)代微生態(tài)學(xué)理論,選取乳酸桿菌及大腸桿菌為代表,從腸道菌的調(diào)節(jié)角度探索大承氣湯瀉下治療ETM的作用機制。然而,腸道微生態(tài)系統(tǒng)大約包含有15 000~36 000個菌種[10],如何正確估算研究對象的數(shù)量,是本研究所面臨的主要技術(shù)難題。

        分子生物學(xué)的發(fā)展,催生了QPCR技術(shù),該技術(shù)具有將極微量基因無限擴增并精確計算原始DNA模板數(shù)量的優(yōu)點,為本課題準(zhǔn)確估算腸道兩種細(xì)菌數(shù)量提供了有力的技術(shù)保障。

        研究結(jié)果表明,大承氣湯瀉下后腸道菌的動態(tài)變化分為三個階段: 第一階段,大腸桿菌顯著增加,這是大鼠出現(xiàn)ETM的主要原因;乳酸桿菌數(shù)量遠(yuǎn)不及大腸桿菌數(shù)量,其原因可能與大腸桿菌過度增殖,拮抗了乳酸桿菌的生長。第二階段,大承氣湯瀉下作用是大腸桿菌減少的主要原因,乳酸桿菌的增殖則基于大承氣湯蕩滌腸道糟粕為其提供了“潔凈”的生長空間,乳酸桿菌為拮抗大腸桿菌的生長而“被動”增殖也可能是其原因之一。第三階段,乳酸桿菌增殖占據(jù)優(yōu)勢,與其具有拮抗條件致病菌對腸道的入侵和定植、維持腸道菌群微生態(tài)平衡的作用有關(guān)。

        瀉下前后腸道菌的動態(tài)變化表明,大承氣湯治療ETM的作用不僅是瀉下通腑以驅(qū)除G-菌,減少腸道內(nèi)毒素的吸收,同時,其瀉下通腑以蕩滌腸道環(huán)境,客觀上也為有益菌的增殖及拮抗條件致病菌的生長創(chuàng)造了條件,這可能是大承氣湯瀉下治療ETM起效的機制之一。該方對ETM腸道其它菌群有何影響尚有待深入研究。

        [1] 楊志寅.診斷學(xué)大辭典[M].北京:華夏出版社,2004.

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        [4] WALTER J, HERTEL C, TANNOCK GW, et al. Detection of Lactobacillus, Pediococcus, Leuconostoc, and Weissella species in human feces by using group-specific PCR primers and denaturing gradient gelelectrophoresis[J].Applied and Environmental Microbiology,2001,67(6):2578-2585.

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        (責(zé)任編輯:魏 曉)

        Research on Intestinal Bacterias in Rats with Endotoxemia of Dachengqi Decoction

        Xie Bin1,Wang Dechao2,Chen Qiao1

        (1.Jiangxi University of Traditional Chinese Medicine, Nanchang 330006,China; 2.Shaoguan Hospital of T.C.M, Shaoguan 512000,China)

        Objective:To explore the effect of Dachengqi Decoction urgent purgation on endotoxemia rat intestinal Lactobacillus and Escherichia coli. Methods:Rats with cecal ligation and perforation caused by endotoxemia model, 8h after operation respectively Dachengqi Decoctionhigh (5g/kg·q12h), medium(2.5g/kg·q12h), low (1.25g/kg·q12h) dose, 1 times/q12h,a total of 5 times. Rats by real-time fluorescence quantitative PCR detection before modeling and after modeling 8h (before drug), number of 2d, 7d in Escherichia coli and lactobacillus. Results:After modeling 8h, high, low dose in rats, the number of Escherichia coli LOG was increased more than 3;2d after model establishment, high, middle dose quantity of Escherichia coli LOG value decreased, the amount of Lactobacillus LOG value increased; 7d after model establishment, high, middle dose of Lactobacillus, Escherichia coli LOG value.Return to the level before molding. Conclusion:The micro ecological mechanism of Dachengqi Decoction took effect of treating endotoxemia might promote theproliferation and inhibit the growth of Lactobacillus on Escherichia coli.

        Dachengqi Decoction;Endotoxemia;Lactobacillus;Escherichia coli

        2014-09-24

        江西省教育廳科技項目(GJJ12526);江西中醫(yī)藥大學(xué)校級課題(2012ZR045)

        謝斌(1975-),男,博士,江西中醫(yī)藥大學(xué)副教授,研究方向為中藥抗感染研究。

        R285.5

        A

        1673-2197(2015)04-0010-03

        10.11954/ytctyy.201504006

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