楊 靜(綜述) 李萌萌(審校)
(1.遼寧醫(yī)學院研究生院, 遼寧,錦州 121001;2.解放軍總醫(yī)院第一附屬醫(yī)院麻醉科, 北京100048)
·綜 述·
全身麻醉藥物導致發(fā)育大腦神經(jīng)凋亡的可能機制
楊 靜1,2(綜述) 李萌萌2(審校)
(1.遼寧醫(yī)學院研究生院, 遼寧,錦州 121001;2.解放軍總醫(yī)院第一附屬醫(yī)院麻醉科, 北京100048)
近年來臨床及基礎研究均提示,全身麻醉藥物對于發(fā)育期大腦會產(chǎn)生短暫或長期的影響,稱為麻醉誘導的神經(jīng)發(fā)育毒性(AIDN)[1]。臨床研究難以監(jiān)測中樞神經(jīng)系統(tǒng)的損害,只能通過神經(jīng)心理學測試等手段間接獲得神經(jīng)系統(tǒng)損害的證據(jù)。最初的基礎研究結(jié)果顯示妊娠大鼠接受亞濃度的氟烷會影響新生大鼠大腦神經(jīng)突觸的發(fā)生[2]。后來有報道:給出生7 d后的大鼠注射氯胺酮,會引起廣泛的腦神經(jīng)細胞凋亡,并可能與成年后神經(jīng)發(fā)育紊亂相關[3]。到目前為止,幾乎所有的麻醉與鎮(zhèn)靜藥物對于嚙齒類動物、靈長類動物的幼崽均可引起廣泛的神經(jīng)細胞凋亡[4],如靜脈麻醉藥丙泊酚[5-7]、氯胺酮[8],吸入麻醉藥尤其是異氟醚[9],均可引起發(fā)育期大腦的神經(jīng)凋亡及成年后的認知功能損傷,且具有年齡、接觸時間、劑量依賴和多種藥物協(xié)同性[10-12]。全身麻醉藥物導致發(fā)育期中樞神經(jīng)細胞凋亡的作用機制尚不明確,現(xiàn)將其可能機制綜述如下。
研究顯示,麻醉藥物僅作用其中一條通路,就可能引起發(fā)育大腦廣泛的神經(jīng)凋亡,其損害程度與麻醉作用時間及用藥量相關[11-12]。當麻醉藥物作用于兩條通路時,則更易引起神經(jīng)細胞凋亡。一氧化氮、咪達唑侖、異氟烷三者共同麻醉將導致嚴重的神經(jīng)細胞凋亡,造成神經(jīng)退行性改變[8]。
人類大腦發(fā)育階段主要在出生后2~3歲,而嚙齒類動物則在出生后2~3周。此期間,血腦屏障尚未發(fā)育完全,神經(jīng)突觸的發(fā)生及神經(jīng)遞質(zhì)的作用與成年大腦不同。谷氨酸作用于NMDA受體,釋放神經(jīng)營養(yǎng)因子,調(diào)節(jié)神經(jīng)元的樹突、軸突結(jié)構發(fā)育,并參與突觸可塑性的形成,影響神經(jīng)元存活。發(fā)育期應用麻醉藥物會抑制谷氨酸與NMDA受體的結(jié)合或使GABA受體激活,干擾正常神經(jīng)突觸的發(fā)育,引起大腦神經(jīng)元的結(jié)構改變,加速神經(jīng)元退化和凋亡[8]。GABA受體被激活,選擇性氯離子通過增加,引起神經(jīng)元超極化,神經(jīng)信號傳遞受到抑制,具有激活GABA受體的麻醉藥物增強其表達,氯離子過度內(nèi)流,造成早期神經(jīng)發(fā)育過程中的過度興奮,從而增加神經(jīng)細胞凋亡,使認知功能減退[14]。
在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育和可塑性中,神經(jīng)元內(nèi)鈣離子通過多途徑信號轉(zhuǎn)導,調(diào)節(jié)神經(jīng)元存活及樹突與軸突的結(jié)構和可塑性,進而影響神經(jīng)元回路形成及學習記憶過程[15]。鈣超載將破壞神經(jīng)細胞質(zhì)膜功能,影響神經(jīng)可塑性、蛋白質(zhì)合成及神經(jīng)膠質(zhì)細胞的作用,干擾神經(jīng)發(fā)育和抑制線粒體功能。細胞內(nèi)鈣超載、鈣穩(wěn)態(tài)失衡是神經(jīng)系統(tǒng)中細胞壞死的共同通路。細胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)通過內(nèi)質(zhì)網(wǎng)攝入與釋放鈣離子來維持。攝入通道只有內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣泵,而釋放鈣離子通道有兩種:Ryano dine受體(RYR)和肌醇-1,4,5-三磷酸受體(IP3R)。RYR存在于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)/肌漿網(wǎng) (ER/SR)上的鈣釋放通道,能迅速將鈣離子從ER/SR中釋放出來, 發(fā)揮其生理功能。IP3R誘發(fā)鈣離子從胞內(nèi)儲庫中釋放出來,瞬間增加胞液中鈣濃度[16]。
Zhao等[17]研究證明,異氟醚的神經(jīng)毒性與細胞內(nèi)鈣穩(wěn)態(tài)失衡有關,在足夠藥量、充分麻醉維持下,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)IP3R被激活,導致細胞質(zhì)內(nèi)鈣離子過量,引起神經(jīng)細胞凋亡。Sinner
等[18]在研究氯胺酮對神經(jīng)發(fā)育的影響時,也發(fā)現(xiàn)神經(jīng)細胞內(nèi)鈣離子的平衡發(fā)生改變。Joseph等[16]應用電生理膜片鉗進行研究,再次證明臨床濃度異氟醚直接作用于IP3R,增強了雞淋巴細胞內(nèi)的鈣離子濃度,引起Caspase酶加倍激活,觸發(fā)神經(jīng)毒性作用。Chen等[19]將果蠅蛹暴露于不同濃度七氟烷下,發(fā)現(xiàn)鈣離子通道發(fā)生調(diào)整,興奮性突觸后電流下降,影響突觸可塑性,引起神經(jīng)細胞凋亡。
麻醉藥物引起鈣穩(wěn)態(tài)失衡促發(fā)神經(jīng)細胞凋亡的機制可能為:麻醉藥物通過激活IP3R,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)釋放鈣離子,使細胞質(zhì)及線粒體內(nèi)鈣離子水平升高,線粒體內(nèi)的鈣離子被其膜上鈣蛋白攝取,并促進細胞色素C(CytC)及凋亡蛋白酶活化因子釋放,引起凋亡級聯(lián)反應,Caspase酶激活,誘發(fā)細胞凋亡。同時,CytC抑制細胞質(zhì)內(nèi)鈣離子含量對IP3R的負反饋作用,使內(nèi)質(zhì)網(wǎng)過度釋放鈣離子,形成惡性循環(huán)。Caspase-3作為凋亡蛋白,也可活化IP3R。這些反應的疊加,均造成鈣穩(wěn)態(tài)失衡,導致神經(jīng)細胞凋亡[17]。
NT是一類主要由神經(jīng)所支配的組織(如肌肉)和星形膠質(zhì)細胞產(chǎn)生的,為神經(jīng)元生長與存活所必需的蛋白質(zhì)分子。以受體介導式入胞的方式進入神經(jīng)末梢,再經(jīng)逆向軸漿運輸?shù)诌_胞體,促進胞體合成有關的蛋白質(zhì),從而發(fā)揮其支持神經(jīng)元生長、發(fā)育和功能完整性的作用。NT包括神經(jīng)生長因子(NGF),腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(BDNF)及神經(jīng)營養(yǎng)因子3、4/5(NT-3、NT-4/5)等。在神經(jīng)末梢上有兩類受體,高親和力的酪氨酸激酶受體(Trk A、Trk B和Trk C)及低親和力的75 kD的膜蛋白,稱為 P75受體(P75 NTR)。越來越多的實驗表明,NT與其受體,尤其是P75 受體,在神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育及神經(jīng)病理狀態(tài)中有誘導神經(jīng)細胞凋亡的作用[20-21]。
Pearn等[20]發(fā)現(xiàn),無論試管內(nèi)還是體內(nèi)試驗,在丙泊酚誘導發(fā)育期大腦神經(jīng)細胞凋亡的過程中,出現(xiàn)P75受體激活,下游效應器RhoA激酶活化。Head 等[21]研究發(fā)現(xiàn),以組織纖溶酶原激活劑(tPA)、血纖維蛋白溶酶(plasmin)、P75受體抑制劑 (TAT-Pep5)預處理可以減少吸入異氟烷引起的神經(jīng)細胞凋亡。以上研究提示,P75受體參與全麻藥物影響發(fā)育中神經(jīng)細胞凋亡這一過程。
全麻藥物導致神經(jīng)細胞凋亡的機制可能與BDNF前體-P75受體通路相關。BDNF參與大腦神經(jīng)細胞存活與凋亡,BDNF以前體BDNF(proBDNF)形式存儲于神經(jīng)突觸囊泡內(nèi)。正常狀態(tài)下,proBDNF接受信號被釋放至突觸間隙,被tPA激活的plasmin溶解proBDNF,將其轉(zhuǎn)化為成熟BDNF(mBDNF),mBDNF激活后,作用于突觸前依賴鈣離子的原肌球蛋白相關激酶B受體,提高膜泡融合,增加興奮性突觸后電流頻率,誘導神經(jīng)存活通路,神經(jīng)突增生、突觸成熟,神經(jīng)元穩(wěn)定。當proBDNF因麻醉藥物或缺氧等影響,無法裂解生成mBDNF時,過多的proBDNF作用于P75受體激活下游效應器RhoA激酶,RhoA激酶作為三磷酸鳥苷酶,主要影響肌動蛋白細胞骨架聚合,從而造成抑制軸突生長,誘發(fā)神經(jīng)凋亡[21]。
細胞周期是指真核細胞有絲分裂進行細胞增殖的循環(huán)過程,由G1、S、G2和M期組成,依賴于細胞周期蛋白(Cyclin A~ Cycling H)及周期蛋白依賴激酶(CDK) 來調(diào)控;細胞周期蛋白及CDK還參與細胞的凋亡過程。細胞依賴細胞周期進行增殖,若增殖細胞已達到高度分化,則增殖停止;若繼續(xù)增殖,則稱為病理性增殖,將造成不受控制的增殖或腫瘤。因此,高度分化的神經(jīng)細胞若再次進入細胞周期循環(huán)過程而開始增殖(細胞周期再入),將會啟動神經(jīng)細胞凋亡系統(tǒng),造成神經(jīng)細胞變性凋亡。在細胞周期變化引起的凋亡系統(tǒng)中,細胞周期關鍵蛋白Cyclin D1作為整個過程的啟動因子,被激活后與CDK4形成復合物,再磷酸化其底物蛋白細胞活化轉(zhuǎn)錄因子(E2F1)。在高度分化的神經(jīng)細胞中,活化的轉(zhuǎn)錄因子E2F1可調(diào)節(jié)細胞死亡調(diào)節(jié)子抗體BIM的轉(zhuǎn)錄,BIM可激活caspase-3導致細胞走向凋亡[22]。
Herrup等[23]發(fā)現(xiàn)神經(jīng)凋亡細胞中出現(xiàn)細胞周期相關蛋白,推測神經(jīng)細胞周期異常改變是神經(jīng)凋亡的潛在機制。Soriano 等[24]研究氯胺酮致神經(jīng)細胞凋亡機制時發(fā)現(xiàn)神經(jīng)細胞周期再入;基因敲除Cyclin D1,凋亡有所衰弱??梢?,神經(jīng)細胞周期再入可能參與麻醉藥物致神經(jīng)細胞凋亡過程。
線粒體介導的凋亡途徑又稱為內(nèi)源性細胞凋亡途徑,與線粒體跨膜電位和通透性改變相關。線粒體對細胞凋亡的啟動和調(diào)控具有重要意義, 也是凋亡執(zhí)行的關鍵環(huán)節(jié)。各種因素誘使線粒體通透性轉(zhuǎn)換孔開啟,凋亡相關活性物質(zhì)釋放, 繼而激活Caspase酶系,是細胞凋亡實現(xiàn)的最基本生物化學途徑[25]。
褪黑激素通過抑制線粒體介導的凋亡途徑,可發(fā)揮抗凋亡效應[26]。維他命C、葡萄糖[27]也可抑制異氟醚引起的線粒體凋亡途徑,減少活性氧產(chǎn)生、使ATP量減少,從而進一步抑制caspase酶引起的凋亡活動,防止認知功能受損。麻醉藥物作用下,線粒體釋放CytC。進入胞質(zhì)的CytC與凋亡蛋白酶活化因子1(Apaf-1)結(jié)合并將其激活,然后結(jié)合輔助因子dATP/ATP,Apaf-1募集pro-caspase-9自身活化,引起下游的效應者caspase酶系級聯(lián)反應,使細胞凋亡。由此可見,該途徑在麻醉誘導細胞凋亡中有一定作用[26]。
綜上所述,全身麻醉藥物使早期暴露于麻醉藥物下的發(fā)育期神經(jīng)細胞凋亡,隨后的認知損害可能與神經(jīng)干細胞及神經(jīng)細胞形成數(shù)量的降低或發(fā)育期神經(jīng)炎癥相關[28-29]。其作用機制的探討,為尋找預防措施減少神經(jīng)損害提供了理論依據(jù)。例如,應用IP3R拮抗劑光溜海綿素(xestospongin C)可抑制鈣穩(wěn)態(tài)失衡引起的細胞凋亡[17];通過tPA、plasmin及TAT-Pep5斬斷P75受體激活途徑而減少細胞退化[21];抗氧化劑維他命C、葡萄糖[27]及褪黑激素[26]穩(wěn)定線粒體,抑制線粒體介導的細胞凋亡等。在目前尚無明確結(jié)論的情況下,對于發(fā)育期兒童的手術麻醉,宜選用對神經(jīng)系統(tǒng)影響較小的麻醉藥物,避免多次及長時間的手術麻醉。對于擇期手術患兒,建議盡可能在4歲以后實施,以降低發(fā)生神經(jīng)系統(tǒng)及認知損害的幾率。
[1] Wang M, Zhang JH,Applegate RL. Adverse effect of inhalation anesthetics on the developing brain[J]. Medical Gas Research,2014,4:2-7.
[2] Uemura E, Levin E D, Bowman R E. Effect of halothane on synaptogensis and learning behavior in rats[J].Exp Neunal,1985,89:520-529.
[3] Ikonomidou C, Bosch F, Miksa M, Bittigau P, V?ckler J, Dikranian K, Tenkova TI, Stefovska V, Turski L, Olney JW. Blockade of NMDA receptors and apoptotic neurodegeneration in the developing brain[J]. Science,1999,283:70-74.
[4] Jevtovic-Todorovic V. Developmental synaptogenesis and general anesthesia:a kiss of death?[J]Curr Pharm Des,2012,18:6225-6231.[5] Yu D, Jiang Y, Gao J,Liu B, Chen P. Repeated exposure to propofol potentiates neuroapoptosis and long-term behavioral deficits in neonatal rats[J].Neurosci Lett,2013,534:41-46.
[6] 丁玉美,安敏,邱頤.異丙酚對創(chuàng)傷后全身炎癥反應綜合征患者炎性細胞因子的影響[J].感染、炎癥、修復,2012,13(1):32-35.[7] 費翔,孫雪峰,李萌萌,郝建華,米衛(wèi)東.Paedfusor模型異丙酚靶控輸注用于1~3歲小兒燒傷換藥麻醉的研究[J].感染、炎癥、修復,2014,15:1672-8521.
[8] Young C, Jevtovic-Todorovic V, Qin YQ,Tenkova T, Wang H, Labruyere J, Olney JW. Potential of ketamine and midazolam, individually or in combination to induce apoptotic neurodegeneration in the infant mouse brain[J]. Brit J Pharmacol,2005,146:189-197.
[9] Brambrink AM, Back SA, Riddle A,Gong X, Moravec MD, Dissen GA, Creeley CE, Dikranian KT, Olney JW. Isoflurane-induced apoptosis of oligodendrocytes in the neonatal primate brain[J].Ann Neurol,2012,72:525-535.
[10] Xie Z. Neuronal vulnerability to anesthesia neurotoxicity depends on age of neurons[J]. Ann Neurol,2013,73:686-687.
[11] Xu Z, Dong Y,Wu X, Zhang J, McAuliffe S, Pan C, Zhang Y, Ichinose F, Yue Y, Xie Z. The potential dual effects of anesthetic isoflurane on Aβ-induced apoptosis[J].Curr Alzheimer Res,2011,8:741-752.
[12] Zou X, Liu F, Zhang X,Patterson TA, Callicott R, Liu S, Hanig JP, Paule MG, Slikker W Jr, Wang C. Inhalation anesthetic-induced neuronal damage in the developing rhesus monkey[J]. Neurotoxicol Teratol,2011,33: 592-597.
[13] Peng S,ZhangY,Sun DP, Zhang DX, Fang Q, Li GJ. The effect of sevoflurane anesthesia on cognitive function and the expression of insulin-like growth factor-1 in CA1 region of hippocampus in old rats[J]. Mol Biol Rep,2011,38:1195-1199.[14] Nunez JL, Alt JJ, McCarthy MM. A new model for prenatal brain damage(I):GABAA receptor activation induces cell death in developing rat hippocampus[J]. Exp Neurol,2003,181:258-269.
[15] Cavazzini M, Bliss T, Emptage N. Ca2+and synaptic plasticity[J]. Cell Calcium,2005,38:355-367.
[16] Joseph JD,PengY,Mak DO,Cheung KH, Vais H, Foskett JK, Wei H. General anesthetic isoflurane modulates inositol 1,4,5-trisphosphate receptor calcium channel opening[J]. Anesthesiology,2014,121:528-37.
[17] Zhao Y, Liang G, Chen Q,Joseph DJ, Meng Q, Eckenhoff RG, Eckenhoff MF, Wei H. Anesthetic-induced neurodegeneration mediated via inositol 1,4,5-trisphosphate receptors[J].J Pharmacol Exp Ther,2010,333: 14-22.
[18] Sinner B, Friedrich O, Zink W,Zausig Y, Graf BM. The toxic effects of s(+)-ketamine on differentiating neurons in vitro as a consequence of suppressed neuronal Ca2+oscillations[J].Anesth Analg,2011,113:1161-1169.
[19] Chen R, Zhang T, Kuang L, Chen Z, Ran D, Niu Y, Xu K, Gu H. Cholinergic synaptic transmissions were altered after single sevoflurane exposure in drosophila pupa[J]. Biomed Res int,2015:485709. PMID: 25705662
[20] Pearn ML, Hu Y, Niesman IR,Patel HH, Drummond JC, Roth DM, Akassoglou K, Patel PM, Head BP. Propofol neurotoxicity is mediated by p75 neurotrophin receptor activation[J]. Anesthesiology,2012,116:352-361.
[21] Head BP, Patel HH, Niesman IR,Drummond JC, Roth DM, Patel PM. Inhibition of p75 neurotrophin receptor attenuates isoflurane-mediated neuronalapoptosis in the neonatal central nervous system[J]. Anesthesiology,2009,110:813-825.
[22] Amaral MD, Pozzo-Miller L. Intracellular Ca2+stores and Ca2+influx are both required for BDNF to rapidly increase quantal vesicular transmitter release[J]. Neural Plasticity. 2012,2012:10.
[23] Herrup K, Busser JC.The induction of multiple cell cycle events precedes target-related neuronal death[J]. Development,1995,121:2385-2395.
[24] Soriano SG, Liu Q, Li J,Liu JR, Han XH, Kanter JL, Bajic D, Ibla JC. Ketamine activates cell cycle signaling and apoptosis in the neonatal rat brain[J]. Anesthesiology,2010,112:1155-1163.
[25] Frade JM,Michaelidis TM[J]. Bio Essay,1997,19:827-832.
[26] Yon JH, Carter LB, Reiter RJ,Jevtovic-Todorovic V. Melatonin reduces the severity of anesthesia-induced apoptotic neurodegeneration in the developing rat brain[J]. Neurobiol Dis,2006,21:522-530.
[27] Sun Y, Zhang Y, Cheng B,Dong Y, Pan C, Li T, Xie Z. Glucose may attenuate isoflurane-induced caspase-3 activation in H4 human neurgliomacells[J].Anesth Analq,2014,119:1373-1380.
[28] Kathy L, Murphy, Mark G, Baxter. Long-term effects of neonatal single or multiple isoflurane exposures on spatial memory in rats[J].Frontiers in neurology,2013,4:1-7.
[29] Shen X, Dong Y, Xu Z,Wang H, Miao C, Soriano SG, Sun D, Baxter MG, Zhang Y, Xie Z. Selective anesthesia induced neuroinflammation in developing mouse brain and cognitive impairment[J].Anesthesiology,2013,118: 502-515.
10.3969/j.issn.1672-8521.2015.01.017
吳階平醫(yī)學基金會臨床科研專項基金資助(320.6750.13220)通訊作者:李萌萌,副主任醫(yī)師(E-mail:mmli2@yahoo.com)
2014-12-12)