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        粗毛栓菌原生質(zhì)體UV誘變漆酶高產(chǎn)菌株的選育*

        2015-03-25 05:29:32孫崇然王宇飛王曉麗朱友雙
        關(guān)鍵詞:原生質(zhì)葡聚糖蝸牛

        趙 穎 孫崇然 王宇飛 張 瑩 王曉麗 朱友雙

        (濟(jì)寧醫(yī)學(xué)院生物科學(xué)學(xué)院,山東 日照276826)

        漆酶作為一種環(huán)保型酵素,在有機(jī)物合成、造紙業(yè)廢液的處理及紙漿的漂白等方面具有很高的應(yīng)用價(jià)值[1]。在自然界中,粗毛栓菌是重要的產(chǎn)漆酶 菌 株[2-3]。 前 期 研 究 表 明 粗 毛 栓 菌 Trametes hirsuta lg-9能夠高效合成非典型漆酶,該漆酶表現(xiàn)出比普通漆酶應(yīng)用前景更好的特征,如熱穩(wěn)定性高,最適pH值偏低,能夠在不存在介體的情況下氧化甲基紅和茜素紅等[4-6]。然而,該菌漆酶產(chǎn)量較低,遠(yuǎn)達(dá)不到工業(yè)要求,因此,對(duì)其進(jìn)行基因突變改良成為一種必然要求。然而,該菌無(wú)性階段為多核菌絲體,不能形成分生孢子,有性孢子的獲得條件高、周期長(zhǎng)[7],因此,為單基因型細(xì)胞進(jìn)行菌株的基因突變改良則宜選擇單核的原生質(zhì)體。本文以粗毛栓菌Trametes hirsuta lg-9為出發(fā)菌株,對(duì)原生質(zhì)體的制備方法進(jìn)行優(yōu)化,并通過(guò)國(guó)內(nèi)外廣泛采用的紫外誘變方法獲得漆酶高產(chǎn)菌株,為進(jìn)一步構(gòu)建非典型漆酶工程菌提供出發(fā)菌株。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        本實(shí)驗(yàn)所用 Trametes hirsuta lg-9(CGMCC No.2422)為山東大學(xué)微生物國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室惠贈(zèng)。

        培養(yǎng)基:PDA固體培養(yǎng)基;PDA液體培養(yǎng)基;液體菌絲生長(zhǎng)培養(yǎng)基(液體PDA另加數(shù)十顆直徑為5mm的玻璃球);上層軟洋菜培養(yǎng)基(馬鈴薯汁20%,葡萄糖0.5%,瓊脂2%,pH自然值)。

        試劑:0.8MMgSO4溶液(由pH7.4磷酸緩沖液制備 );0.8mol/L Sorbitol溶液(Sorbitol 1.2M,CaCl20.05M,Tris.CC pH 7.5 0.01M);β-葡聚糖酶(Glucanase solarbio公司);蝸牛酶(上海源葉生物科技有限公司);ABTS(成都艾科達(dá)化學(xué)試劑有限公司 )。

        1.2 方法

        1.2.1 原生質(zhì)體的制備 將新鮮活化的菌株轉(zhuǎn)接液體菌絲生長(zhǎng)培養(yǎng)基,30℃,120rpm培養(yǎng)58~60h,用無(wú)菌紗布過(guò)濾,收集菌絲體,先無(wú)菌水洗滌3次,后0.8M的MgSO4溶液洗滌1次。將菌體均分于6個(gè)無(wú)菌三角瓶中,分別加入以MgSO4溶液為溶劑配置的6種酶解液(1%蝸牛酶溶液;0.5%蝸牛酶+0.5%β-葡聚糖酶溶液;1%β-葡聚糖酶溶液;2%蝸牛酶溶液;1%蝸牛酶+1%β-葡聚糖酶溶液;2%β-葡聚糖酶溶液)。酶解液震蕩30℃,120rpm,×40顯微鏡下間斷性觀察原生質(zhì)體的釋放情況。待酶解充分后,加入等體積的Sorbitol溶液。8層紗布過(guò)濾即可得到去除菌絲片段的純化原生質(zhì)體。

        1.2.2 原生質(zhì)體的再生及紫外誘變 血球計(jì)數(shù)板計(jì)算原生質(zhì)體數(shù)量,并用Sorbitol溶液將原生質(zhì)體稀釋到一定濃度,將稀釋的溶液分成6份,以其中以一份進(jìn)行原生質(zhì)體再生實(shí)驗(yàn),不進(jìn)行紫外照射;其它5份分別進(jìn)行40、50、60、70、80s紫外照射,照射后進(jìn)行10min暗處理。分別取400μL原生質(zhì)體溶液與1ml的上層軟洋菜培養(yǎng)基混合均勻,平鋪于固體PDA平板上,30℃培養(yǎng)5d。根據(jù)PDA平板上單菌落的生成情況計(jì)算原生質(zhì)體再生率及原生質(zhì)體紫外誘變致死率。

        再生率(%)=A/α×100% 致死率(%)=(A-B)/A×100%

        注:A-每份400μL稀釋后原生質(zhì)體溶液在再生培養(yǎng)基上生長(zhǎng)的菌落數(shù);α-血球計(jì)數(shù)板計(jì)算求得的每份400μL稀釋后溶液中原生質(zhì)體數(shù);B-每份樣品經(jīng)紫外照射后在再生培養(yǎng)基上生長(zhǎng)的菌落數(shù)。

        1.2.3 UV誘變菌株漆酶活性和胞外總蛋白的測(cè)定 選取紫外誘變平板單菌落至PDA固體平板,30℃,培養(yǎng)5d后用無(wú)菌打孔器轉(zhuǎn)接至100ml液體PDA培養(yǎng)基,30℃,120rpm,培養(yǎng)3d后,每隔24h,離心取上清。以Trametes hirsutalg-9為對(duì)照,進(jìn)行粗酶液漆酶活力和總蛋白的測(cè)定,連續(xù)測(cè)定5d。每個(gè)菌株各做3個(gè)重復(fù),共完成3次平行實(shí)驗(yàn)。上清總蛋白的測(cè)定使用Folin酚法:取300μL上清,加入4ml 4%NaCO3和0.5ml folin酚溶液37℃靜置60min后測(cè)OD500。漆酶活性測(cè)定是采用ABTS法:將上清適當(dāng)稀釋后取30μL加入2.9ml 0.1M 醋酸緩沖液和75μL 20MABTS溶液,37℃靜置30min后測(cè) OD420[8]。

        2 結(jié)果

        2.1 原生質(zhì)體制備的酶解條件

        酶解液的濃度、配比和酶解時(shí)間是影響原生質(zhì)體制備的重要因素。白腐真菌以混合酶液(1%蝸牛酶+0.5%β-葡聚糖酶)酶解效果最好,2%蝸牛酶次之,以酶解4h為最佳酶解時(shí)間,結(jié)果見(jiàn)表1、圖1。

        表1 酶解液的濃度及配比對(duì)原生質(zhì)體形成數(shù)的影響

        圖1 酶解時(shí)間對(duì)原生質(zhì)體形成數(shù)和再生率的影響

        2.2 原生質(zhì)體的紫外誘變

        將稀釋一定濃度的原生質(zhì)體在發(fā)光穩(wěn)定波長(zhǎng)254nm,15W紫外燈下距離30cm處對(duì)原生質(zhì)體分別進(jìn)行了40、50、60、70、80s的紫外燈照射,照射后分別進(jìn)行10min暗處理,30℃培養(yǎng)5d。根據(jù)PDA平板上單菌落的生成情況計(jì)算原生質(zhì)體紫外誘變致死率。結(jié)果見(jiàn)表2。

        表2 不同紫外照射時(shí)間對(duì)原生質(zhì)體致死率的影響

        2.3 誘變菌株的功能檢測(cè)

        挑取70s誘變平板上的18個(gè)分離、生長(zhǎng)狀態(tài)良好的單菌落,培養(yǎng)發(fā)酵。發(fā)酵3d后,每隔24h測(cè)定各菌株漆酶活力,同時(shí),為檢測(cè)誘變對(duì)菌體生長(zhǎng)情況的影響,我們同時(shí)檢測(cè)了上清發(fā)酵液的總蛋白活力,用以監(jiān)測(cè)菌株的生長(zhǎng)狀況。最終以出發(fā)菌株Trametes hirsuta lg-9為對(duì)照從中挑選5株漆酶活力有明顯變化的菌株。對(duì)于誘變的菌株,其遺傳穩(wěn)定性有極其重要的作用,為此將篩選到的誘變菌株進(jìn)行3次連續(xù)傳代培養(yǎng)并進(jìn)行發(fā)酵檢測(cè)。由表3與圖2結(jié)果最終確定誘變菌株JM-70S3和JM-70S8為漆酶活力提高穩(wěn)定菌株。

        表3 誘變菌株漆酶的分泌活性和上清中總蛋白分析

        圖2 不同菌株培養(yǎng)第7天漆酶與上清總蛋白的OD值

        3 討論

        3.1 酶解條件對(duì)原生質(zhì)體的影響

        酶解液的濃度及配比是影響原生質(zhì)體制備的重要因素,若酶濃度過(guò)大,酶中常常會(huì)含有對(duì)原生質(zhì)體有害的酶類(例如過(guò)氧化物酶、核糖核酸酶等),伴隨著酶量的持續(xù)增加,雜酶的濃度也會(huì)緊隨之而增加,若酶量達(dá)到一定濃度,勢(shì)必將會(huì)影響原生質(zhì)體的活性。此外,在酶濃度過(guò)大時(shí),菌體易發(fā)生凝集,使得原生質(zhì)體的生成變得困難[9]。本文結(jié)果顯示:白腐真菌是以混合酶液(1%蝸牛酶+1%β-葡聚糖酶)酶解效果最好,2%蝸牛酶次之。

        隨著酶解時(shí)間延長(zhǎng),粗毛栓菌Trametes hirsuta lg-9細(xì)胞脫壁會(huì)愈加完全,而原生質(zhì)體的再生是以細(xì)胞壁的酶解殘余物作引物,所以酶解時(shí)間過(guò)長(zhǎng),必然影響到原生質(zhì)體的再生率。由不同的酶解時(shí)間的單因素實(shí)驗(yàn)可得,粗毛栓菌Trametes hirsuta lg-9以混合酶液(1%蝸牛酶+1%β-葡聚糖酶)酶解時(shí),原生質(zhì)體數(shù)量在前4個(gè)小時(shí)里,隨著時(shí)間線性增加,第5個(gè)小時(shí)原生質(zhì)體數(shù)量增加速率放緩,酶解4h時(shí)的原生質(zhì)體數(shù)量8×105個(gè)/ml,5h時(shí)為8.2×105個(gè)/ml,而原生質(zhì)體再生率4h時(shí)最高為1.44%,5h時(shí)僅為0.86%,因此,粗毛栓菌Trametes hirsuta lg-9以混合酶液(1%蝸牛酶+1%β-葡聚糖酶)酶解4h為最佳的酶解時(shí)間。

        3.2 原生質(zhì)體紫外誘變條件的確定

        通過(guò)表2可得在紫外照射時(shí)間為70s時(shí),致死率為78.26%,據(jù)有關(guān)報(bào)道可知,誘變的最佳致死率在70%~80%之間[10],而紫外誘變70s符合實(shí)驗(yàn)要求,因此,本實(shí)驗(yàn)選擇70s為粗毛栓菌Trametes hirsuta lg-9的紫外誘變時(shí)間。

        3.3 漆酶高產(chǎn)誘變菌株的確定

        由表3中數(shù)據(jù)可知:出發(fā)菌株lg-9上清總蛋白和JM-70S8與JM-70S3在第3天和第4天時(shí)很接近,而在第5天以后,特別是在第7天時(shí)JM-70S8與JM-70S3的總蛋白比lg-9明顯小很多;第7天時(shí)漆酶的產(chǎn)量JM-70S8為出發(fā)菌株的80.38倍,JM-70S3是39.52倍;而JM-70S8第7天漆酶OD值與上清總蛋白OD值比是出發(fā)菌株的257.24倍,JM-70S3菌株是93.57倍。所以,無(wú)論是單純從漆酶活力比較,還是從漆酶與上清總蛋白比值來(lái)比較,都能很明顯地看出JM-70S8與JM-70S3是經(jīng)過(guò)紫外誘變后突變的漆酶高產(chǎn)白腐真菌菌株。

        綜上所述,粗毛栓菌Trametes hirsuta lg-9原生質(zhì)體紫外誘變育種的最佳條件為:菌齡為58h,采用1%蝸牛酶+1%β-葡聚糖酶(1∶1)混合液,30℃酶解4h,并用0.8M的MgSO4溶液作滲透壓穩(wěn)定劑,原生質(zhì)體再生率為1.44%;通過(guò)對(duì)原生質(zhì)體進(jìn)行70s紫外照射,在原生質(zhì)體致死率為78%的條件下,篩選出較出發(fā)菌株漆酶高產(chǎn)菌株JM-70S8與JM-70S3。試驗(yàn)結(jié)果表明:原生質(zhì)體誘變育種技術(shù)跨過(guò)某些菌不能形成分生孢子的瓶頸,可作為單核基因育種的重要手段;并且原生質(zhì)體可以作為單個(gè)細(xì)胞單位而便于控制,并避免后代過(guò)多的分離現(xiàn)象。

        接下來(lái)可進(jìn)一步對(duì)高產(chǎn)菌株尤其是JM-70S8進(jìn)行培養(yǎng)研究:一方面,在用傳統(tǒng)的PDA液體培養(yǎng)基探討突變株功能時(shí),通過(guò)發(fā)酵液上清總蛋白的跟蹤檢測(cè)發(fā)現(xiàn)該培養(yǎng)基特別是在第5天以后不適合突變菌株JM-70S8與JM-70S3的菌量的生長(zhǎng),從而可對(duì)發(fā)酵培養(yǎng)基進(jìn)行優(yōu)化從而將JM-70S8與JM-70S3的漆酶產(chǎn)量進(jìn)一步提高;另一方面,出發(fā)菌株Trametes hirsuta lg-9為非典型漆酶生產(chǎn)菌株,而經(jīng)紫外誘變后漆酶高產(chǎn)菌株產(chǎn)生的漆酶是否還具有非典型性,需要進(jìn)行進(jìn)一步的驗(yàn)證;再一方面對(duì)高產(chǎn)菌株進(jìn)行基因分析,找到突變基因,并探討哪些基因的變化引起漆酶活力的提高,從而對(duì)基因穩(wěn)定的非典型漆酶高產(chǎn)菌株進(jìn)行定點(diǎn)突變,從而得到非典型漆酶高產(chǎn)工程菌株。

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