楊建林 李 倩 韓 鈺 何 玲 吳紅艷 曹春雨 王艷林
(三峽大學(xué)分子生物學(xué)研究所,宜昌 443002)
多胺是廣泛存在于生物組織中的一類帶多價(jià)正電荷的脂肪族小分子化合物,高多胺含量是腫瘤快速生長所必需的條件之一[1]。鳥氨酸脫羧酶(Ornithine decarboxylase,ODC)是多胺合成的限速酶,其活性對(duì)調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)多胺水平起重要作用。細(xì)胞內(nèi)同時(shí)存在一種ODC 抑制蛋白,即鳥氨酸脫羧酶抗酶(Ornithine decarboxylase antizyme,OAZ),新近研究發(fā)現(xiàn),OAZ 活性本身又受另一蛋白因子即鳥氨酸脫羧酶抗酶抑制因子(Ornithine decarboxylase antizyme inhibitor,OAZI)的抑制,上述三者共同構(gòu)成ODC 活性調(diào)節(jié)的反饋環(huán)[2]。在OAZI 蛋白家族中,OAZI-1是發(fā)揮調(diào)控作用的主要成員,它在蛋白水平上競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合OAZ,釋放ODC/OAZ 復(fù)合物中的ODC 并使后者活化,從而影響多胺代謝[3]。本研究的前期工作發(fā)現(xiàn),高表達(dá)OAZI-1 對(duì)黑色素瘤B16-F1 細(xì)胞在接種小鼠皮下成瘤有顯著性抑制作用,同時(shí)接種小鼠體內(nèi)產(chǎn)生對(duì)再次接種的同種腫瘤細(xì)胞的免疫殺傷活性,提示高表達(dá)OAZI-1 可能增加了腫瘤細(xì)胞的免疫原性。巨噬細(xì)胞(Macrophage,M)和樹突狀細(xì)胞(Dendritic cells,DC)是機(jī)體內(nèi)功能強(qiáng)大的抗原提呈細(xì)胞,巨噬細(xì)胞和未成熟的DC 具有攝取和加工抗原的功能,而成熟的DC 則能有效激活效應(yīng)T 細(xì)胞,誘導(dǎo)機(jī)體免疫應(yīng)答發(fā)生。本研究中,我們?cè)诩?xì)胞水平上分析了小鼠腹腔巨噬細(xì)胞、小鼠骨髓來源的DC對(duì)高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1 腫瘤細(xì)胞的吞噬作用,同時(shí)檢測(cè)了上述吞噬過程中對(duì)DC 成熟的促進(jìn)作用,以及DC 被刺激成熟后能夠有效活化T 細(xì)胞的效率,由此驗(yàn)證小鼠B16-F1 細(xì)胞在表達(dá)OAZI-1 后,能否更有效地被免疫吞噬細(xì)胞所吞噬,并活化DC從而遞呈抗原,有效激活機(jī)體抗腫瘤免疫應(yīng)答。
1.1 材料、試劑和實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 真核表達(dá)載體pCNDA3.1(+)和pCNDA3.1(+)-OAZI-1 由本研究小組構(gòu)建、保存;小鼠黑色素瘤B16-F1 細(xì)胞從中國培養(yǎng)物典藏中心(武漢)購買;LipofectamineTM2000 轉(zhuǎn)染試劑、TRIzol RNA 純化試劑為Invitrogen 公司產(chǎn)品;預(yù)染標(biāo)準(zhǔn)分子量蛋白Marker-441、dNTP、RT-PCR及PCR 試劑盒為Fermentas 公司產(chǎn)品;抗β-actin 單克隆抗體為Santa Cruz 公司產(chǎn)品;兔抗鼠OAZI-1 多克隆抗體為Proteintech Group 公司產(chǎn)品;辣根過氧化物酶(Horse radish peroxidase,HRP)標(biāo)記的山羊抗兔IgG-HRP 為Jackson 公司產(chǎn)品;RPMI1640 細(xì)胞培養(yǎng)基、胎牛血清、小牛血清、胰酶、DMSO 等均為Gibco 公司產(chǎn)品;各種熒光標(biāo)記抗體(PE 標(biāo)記的抗小鼠CD11C 抗體、PE 標(biāo)記的抗小鼠CD11b 抗體、PE 標(biāo)記的抗小鼠CD40 抗體、PE 標(biāo)記的抗小鼠CD80 抗體、PE 標(biāo)記的抗小鼠CD86 抗體)均為eBioscence 公司產(chǎn)品;重組小鼠GM-CSF 細(xì)胞因子、重組小鼠IL-4 和重組小鼠IL-2 細(xì)胞因子為Peprotech 公司產(chǎn)品;BALB/c 小鼠,雌性,4~6 周齡,質(zhì)量(18 ±2)g 購自三峽大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng)、質(zhì)粒轉(zhuǎn)染及高表達(dá)細(xì)胞株篩選 用含10%小牛血清的RPMI1640 培養(yǎng)基常規(guī)方法培養(yǎng)小鼠黑色素瘤B16-F1 細(xì)胞。用脂質(zhì)體LipofectamineTM2000 法分別將pcNDA3.1(+)-OAZI-1 和對(duì)照質(zhì)粒pcNDA3.1(+)轉(zhuǎn)染至對(duì)數(shù)生長期細(xì)胞內(nèi),隨后用400 mg/ml G418 篩選陽性克隆,將篩選出的陽性克隆細(xì)胞株擴(kuò)大培養(yǎng)后收集細(xì)胞,TRIzol 試劑法提取RNA,M-mlV 反轉(zhuǎn)錄酶將mRNA 反轉(zhuǎn)錄為cDNA,以此cDNA 為模板,通過PCR 反應(yīng)鑒定細(xì)胞中OAZI-1 基因的表達(dá)水平。OAZI-1 引物序列為5'-GAAGTTTGGCACTACACTGAAG-3'(正向)和5'-CCACCGATGTCTAACATGTTC-3'(反向);該實(shí)驗(yàn)以β-actin 作為內(nèi)參照。另收集陽性克隆細(xì)胞并用細(xì)胞裂解液(20 mmol/L Tris-HCl,pH8.0,150 mmol/L NaCl,1%Triton X-100)裂解,由此獲得的細(xì)胞總蛋白經(jīng)10% SDS-PAGE 分離,電轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上。隨后PVDF 膜用TBST(20 mmol/L Tris-HCl,150 mmol/L NaCl,0.05%Tween-20,pH7.4)配制的5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,兔抗鼠OAZI-1 抗體(1∶2 000)4℃條件下孵育過夜,和羊抗兔IgG-HRP(1∶ 5 000)作用2 h,電化學(xué)發(fā)光法示蹤OAZI-1 蛋白的表達(dá)水平。將通過上述方法獲得的高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1 細(xì)胞克隆株命名為B16/OAZI-1 細(xì)胞,轉(zhuǎn)染空載質(zhì)粒pcDNA3.1(+)的B16-F1 細(xì)胞株命名為B16/3.1 細(xì)胞。
1.3 制備BALB/c 小鼠腹腔巨噬細(xì)胞 每只小鼠腹腔注射1%無菌淀粉溶液1 ml,24 h 后頸椎脫臼法處死小鼠,腹腔注射5 ml PBS,輕揉小鼠腹部后,收集沖洗腹腔的PBS,1 000 r/min 離心10 min,棄去上清,即得到小鼠腹腔巨噬細(xì)胞。
1.4 制備BALB/c 小鼠脾臟淋巴細(xì)胞 小鼠無菌剪開腹腔,取出脾臟,在無血清RPMI1640 培養(yǎng)液中經(jīng)過鋼網(wǎng)研磨,200 目尼龍網(wǎng)過濾,獲得小鼠脾細(xì)胞懸液,小心加入3 ml 淋巴細(xì)胞分離液中,2 000 r/min 離心20 min,吸取中間懸浮的白色淋巴細(xì)胞,PBS 洗滌兩次后加入細(xì)胞培養(yǎng)液,即得到小鼠脾臟淋巴細(xì)胞。
1.5 制備BALB/c 小鼠骨髓來源的DC 細(xì)胞 將小鼠頸椎脫臼法處死,無菌狀態(tài)下取出脛骨和股骨,剪開骨頭兩端,用1 ml 注射器吸取無血清RPMI1640 培養(yǎng)液,沖洗骨髓腔,收集沖洗出的骨髓細(xì)胞懸液,1 500 r/min 離心10 min。棄上清,利用紅細(xì)胞裂解液裂解紅細(xì)胞后,PBS 洗滌1 次。將獲得的細(xì)胞用含10%胎牛血清、10 ng/ml 重組小鼠GM-CSF、10 ng/ml重組小鼠IL-4 的RPMI1640 培養(yǎng)基重懸,在細(xì)胞培養(yǎng)皿中置于37℃,含5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。48 h 后棄去尚未貼壁的細(xì)胞,僅保留貼壁的DC 前體細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)。隨后,每48 h 半量換液,共培養(yǎng)168 h。收集培養(yǎng)細(xì)胞,即為富集的小鼠骨髓來源的樹突狀細(xì)胞(Bone marrow-derived dendritic cell,BMDC)。
1.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)巨噬細(xì)胞和DC 對(duì)腫瘤細(xì)胞的吞噬效應(yīng) 本實(shí)驗(yàn)將B16/OAZI-1 細(xì)胞和B16/3.1 細(xì)胞用作靶細(xì)胞,將巨噬細(xì)胞和DC 用作效應(yīng)細(xì)胞。靶細(xì)胞用5 μmol/L 的綠色熒光染料CFDA-SE于37 ℃細(xì)胞培養(yǎng)箱孵育染色30 min,PBS 洗滌2次,取5 ×105個(gè)靶細(xì)胞與2.5 ×106個(gè)巨噬細(xì)胞(靶效比為5∶1)或5 ×105個(gè)DC(靶效比為1∶1)混合培養(yǎng)4 h 后,1 000 r/min 離心5 min,棄上清,1 ml PBS重懸細(xì)胞,然后用5 μl PE-CD11b 抗體標(biāo)記巨噬細(xì)胞,5 μl PE-CD11c 抗體標(biāo)記DC,避光37℃反應(yīng)30 min。PBS 洗滌2 次后,1 ml PBS 重懸細(xì)胞,流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞吞噬效率。
1.7 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)成熟DC 表面特征性分子表達(dá) 分別取B16/OAZI-1 細(xì)胞和B16/3.1 細(xì)胞各5×105個(gè)與5 ×105個(gè)DC 細(xì)胞(效靶比為1∶1)混合培養(yǎng)24 h 后,1 000 r/min 離心5 min,棄上清,1 ml PBS 重懸細(xì)胞,分別用抗小鼠PE-CD40 抗體,PECD80 抗體和PE-CD86 抗體避光37℃孵育細(xì)胞30 min,PBS 洗滌細(xì)胞3 次,1 ml PBS 重懸細(xì)胞,流式細(xì)胞術(shù)分析DC 表面分子的表達(dá)。
1.8 ELISA 檢測(cè)體細(xì)胞培養(yǎng)上清中IFN-γ 含量 分別將B16/OAZI-1 細(xì)胞和B16/3.1 細(xì)胞與BALB/c小鼠骨髓來源的未成熟DC 按照1∶1的細(xì)胞數(shù)量比混合后共孵育培養(yǎng)48 h,隨后將共孵育細(xì)胞加入同樣來自BALB/c 小鼠的脾淋巴細(xì)胞中,并加入終濃度為200 U/ml 的小鼠IL-2 細(xì)胞因子,繼續(xù)混合培養(yǎng)24 h,收集細(xì)胞培養(yǎng)液上清,用ELISA 法檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清中IFN-γ 的含量。
1.9 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用SPSS18.0 統(tǒng)計(jì)軟件處理,所有計(jì)量資料以±s 表示,采用t 檢驗(yàn),以P<0.05 為顯著性差異。
2.1 獲得穩(wěn)定高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1 細(xì)胞克隆株 將質(zhì)粒pcNDA3.1(+)-OAZI-1 轉(zhuǎn)染B16-F1 瘤細(xì)胞后,經(jīng)G418 篩選得到成功轉(zhuǎn)染的陽性細(xì)胞克隆株(B16/OAZI-1)。擴(kuò)大培養(yǎng)后,用RT-PCR 和Western blot 技術(shù)從mRNA 和蛋白表達(dá)水平證實(shí)該細(xì)胞株內(nèi)OAZI-1 高表達(dá)(圖1、2)。本實(shí)驗(yàn)以成功轉(zhuǎn)染空白質(zhì)粒pcNDA3.1(+)的細(xì)胞(B16/3.1)作為對(duì)照。
圖1 逆轉(zhuǎn)錄PCR 法篩選穩(wěn)定高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1細(xì)胞株Fig.1 Selection of B16-F1 cell line with stable OAZI-1 over-expression by RT-PCR
圖2 免疫印跡法篩選穩(wěn)定高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1 細(xì)胞株Fig.2 Selection of B16-F1 cells with stable OAZI-1 overexpression by Western blot
2.2 高表達(dá)OAZI-1 的細(xì)胞能更高效地被吞噬細(xì)胞所吞噬 CD11b 和CD11c 分別為巨噬細(xì)胞和DC 細(xì)胞的表面分子標(biāo)志物,本實(shí)驗(yàn)首先分析了PE 標(biāo)記的CD11b 和CD11c 抗體分別與上述細(xì)胞結(jié)合的能力,經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測(cè)發(fā)現(xiàn),90%以上細(xì)胞被標(biāo)記。同時(shí),我們采用熒光染料CFDA-SE 標(biāo)記B16/OAZI-1細(xì)胞和B16/3.1 細(xì)胞,經(jīng)流式細(xì)胞儀驗(yàn)證,標(biāo)記效率也在90%以上(圖3)。將標(biāo)記的小鼠腹腔巨噬細(xì)胞和DC 作為效應(yīng)細(xì)胞,分別與標(biāo)記的B16/OAZI-1 細(xì)胞和B16/3.1 細(xì)胞混合培養(yǎng)4 h,由于靶細(xì)胞和效應(yīng)細(xì)胞分別用不同熒光探針標(biāo)記,在流式細(xì)胞儀中檢測(cè)到的雙熒光陽性細(xì)胞即為吞噬了腫瘤細(xì)胞的效應(yīng)細(xì)胞。結(jié)果顯示巨噬細(xì)胞和DC 對(duì)B16/OAZI-1 細(xì)胞的吞噬率分別為24.7%和53.9%,與對(duì)照B16/3.1 組8.2%和13.8%的吞噬率相比較有顯著性差異(P<0.05)。上述研究提示,高表達(dá)OAZI-1的腫瘤細(xì)胞能更有效地被吞噬細(xì)胞識(shí)別和吞噬(圖4)。
圖3 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞熒光標(biāo)記效率Fig.3 Flow cytometry was used to determine efficiency of cell-labeling by fluorescent probes
圖4 OAZI 高表達(dá)增強(qiáng)巨噬細(xì)胞和DC 對(duì)靶細(xì)胞的吞噬作用Fig.4 High expression of OAZI enhanced phagocytosis of target-cells by Mφ and DC in vitro
圖5 OAZI 高表達(dá)促進(jìn)DC 活化成熟Fig.5 High expression of OAZI on target-cell promoted DC maturation
圖6 B16/OAZI-1 活化的DC 誘導(dǎo)T 細(xì)胞分泌IFN-γFig.6 B16/OAZI-1 activated DC induced secretion of IFN-γ by T lymphatic cells
2.3 高表達(dá)OAZI-1 的腫瘤細(xì)胞促進(jìn)DC 活化成熟CD40、CD80、CD86 是成熟DC 的標(biāo)志性表面分子,本實(shí)驗(yàn)中,我們首先將B16/OAZI-1 和B16/3.1分別與DC 共孵育,染后用PE 標(biāo)記的抗小鼠CD40、CD80、CD86 抗體分別對(duì)DC 細(xì)胞進(jìn)行標(biāo)記,并用流式細(xì)胞儀檢測(cè)DC 表面這些分子的表達(dá)情況。結(jié)果顯示(圖5),與對(duì)照組B16/3.1 細(xì)胞相比,DC 與B16/OAZI 細(xì)胞混合培養(yǎng)24 h 后,CD40、CD80 和CD86 表達(dá)陽性的細(xì)胞分別從24.2%、20.8% 和16.4%增加到46.8%、32.5%和36.1%,統(tǒng)計(jì)學(xué)分析差異具有顯著性(P<0.05),提示,B16/OAZI-1細(xì)胞能更有效地誘導(dǎo)DC 成熟。
2.4 B16/OAZI-1 活化的DC 誘導(dǎo)T 細(xì)胞分泌IFN-γ 成熟DC 在向效應(yīng)T 細(xì)胞提呈抗原過程中將激活效應(yīng)T 細(xì)胞,活化T 細(xì)胞的主要特征之一是大量合成和分泌IFN-γ。本研究中,我們將與B16/OAZI-1 細(xì)胞共孵育后的DC 與小鼠脾淋巴細(xì)胞混合培養(yǎng)24 h,然后用ELISA 檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清液中IFN-γ 的含量,結(jié)果表明(圖6),與B16/OAZI 細(xì)胞共孵育后的DC 與小鼠脾淋巴細(xì)胞混合培養(yǎng)后,細(xì)胞培養(yǎng)上清液中IFN-γ 含量為32.9 pg/ml,顯著性高于B16/3.1 對(duì)照組(15.1 pg/ml),說明B16/OAZI-1 細(xì)胞活化的DC 能更有效遞呈腫瘤抗原和誘導(dǎo)T 細(xì)胞活化。
腫瘤的發(fā)生和發(fā)展與腫瘤細(xì)胞的免疫逃逸現(xiàn)象密切相關(guān),近年研究發(fā)現(xiàn)通過增加腫瘤細(xì)胞表面鈣網(wǎng)蛋白(Calreticulin,CRT)表達(dá)或改變腫瘤微環(huán)境,可促使腫瘤細(xì)胞發(fā)生免疫原性轉(zhuǎn)化,誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生有效的抗腫瘤免疫應(yīng)答。上述研究為腫瘤預(yù)防和治療提供了新的途徑[4-7]。本課題的前期研究發(fā)現(xiàn),高表達(dá)OAZI-1 對(duì)黑色素瘤B16-F1 細(xì)胞在接種小鼠皮下成瘤有顯著性抑制作用,并能誘導(dǎo)小鼠體內(nèi)產(chǎn)生抗同種腫瘤的免疫效應(yīng),提示高表達(dá)OAZI-1 可能使腫瘤細(xì)胞發(fā)生免疫原性轉(zhuǎn)化(另文發(fā)表)。以往研究已證實(shí),多胺代謝途徑與腫瘤的發(fā)生發(fā)展有密切的關(guān)系,腫瘤細(xì)胞中高多胺含量是決定腫瘤快速生長的因素之一,但尚無文獻(xiàn)報(bào)道多胺代謝與抗腫瘤免疫之間的關(guān)系,本文從細(xì)胞水平上對(duì)高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1 細(xì)胞是否發(fā)生了免疫原性轉(zhuǎn)化進(jìn)行了進(jìn)一步研究。
DC 是重要的專職抗原遞呈細(xì)胞,巨噬細(xì)胞在機(jī)體免疫應(yīng)答過程中也發(fā)揮重要的抗原遞呈作用。因此,B16/OAZI-1 細(xì)胞如果發(fā)生了免疫原性轉(zhuǎn)化,首先會(huì)被巨噬細(xì)胞、DC 等抗原遞呈細(xì)胞有效識(shí)別、吞噬,由此誘導(dǎo)機(jī)體產(chǎn)生特異性抗腫瘤免疫應(yīng)答。本研究中,我們以高表達(dá)OAZI-1 的小鼠黑色素瘤B16-F1 腫瘤細(xì)胞(B16/OAZI-1)為靶細(xì)胞,以小鼠腹腔巨噬細(xì)胞和小鼠骨髓來源的DC 為效應(yīng)細(xì)胞,將上述兩種細(xì)胞共孵育后,觀察效應(yīng)細(xì)胞對(duì)靶細(xì)胞的吞噬作用。結(jié)果顯示,與對(duì)照組B16/3.1 細(xì)胞相比較,腹腔巨噬細(xì)胞和DC 對(duì)B16/OAZI-1 細(xì)胞的吞噬率均有顯著性增高,提示高表達(dá)OAZI-1 的B16-F1 細(xì)胞能更有效地被抗原提呈細(xì)胞吞噬。
DC 對(duì)腫瘤細(xì)胞的識(shí)別和吞噬是腫瘤細(xì)胞免疫原性轉(zhuǎn)化的關(guān)鍵環(huán)節(jié),DC 細(xì)胞的活化、成熟以及腫瘤抗原加工和呈遞將隨之進(jìn)行。因此在體外試驗(yàn)中,我們進(jìn)一步分析了B16/OAZI-1 能否促進(jìn)DC 活化與成熟。實(shí)驗(yàn)中檢測(cè)了3 種成熟的DC 細(xì)胞表面分子標(biāo)志物CD40、CD80、CD86 的表達(dá)量,結(jié)果顯示DC 與B16/OAZI-1 細(xì)胞混合培養(yǎng)后,上述3 種表面分子標(biāo)志物的表達(dá)有一定程度的增加,與B16/3.1細(xì)胞對(duì)比,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。提示OAZI-1 在B16-F1 細(xì)胞中高表達(dá)具有促進(jìn)DC 成熟和活化的作用。
DC 細(xì)胞將吞噬的腫瘤抗原加工并遞呈給CD4+的T 淋巴細(xì)胞,由此導(dǎo)致T 淋巴細(xì)胞活化,活化的T淋巴細(xì)胞的重要特征之一是大量合成和分泌IFN-γ等細(xì)胞因子,IFN-γ 等通過調(diào)節(jié)細(xì)胞毒T 細(xì)胞以及免疫系統(tǒng)的多個(gè)環(huán)節(jié)而激活細(xì)胞免疫系統(tǒng),誘導(dǎo)機(jī)體抗腫瘤免疫應(yīng)答的發(fā)生。本實(shí)驗(yàn)中,我們首先將腫瘤細(xì)胞和DC 混合孵育,隨后將上述混合細(xì)胞與小鼠脾淋巴細(xì)胞共培養(yǎng),并通過檢測(cè)細(xì)胞培養(yǎng)上清中IFN-γ 的含量,判斷小鼠T 淋巴細(xì)胞體外活化的情況。結(jié)果顯示,B16/OAZI-1 細(xì)胞實(shí)驗(yàn)組中IFN-γ含量顯著性高于B16/3.1 對(duì)照細(xì)胞組,兩組結(jié)果差異具有顯著性(P<0.05)。上述研究提示,在體外由B16/OAZI-1 活化成熟的DC 能將腫瘤抗原加工遞呈給T 淋巴細(xì)胞,并促使T 淋巴細(xì)胞活化和合成分泌IFN-γ。
綜上所述,在體外實(shí)驗(yàn)中,OAZI-1 在小鼠黑色素瘤B16-F1 細(xì)胞中高表達(dá)能夠促進(jìn)巨噬細(xì)胞和DC等抗原遞呈細(xì)胞對(duì)B16-F1 細(xì)胞的識(shí)別和吞噬,這一過程可有效促進(jìn)DC 細(xì)胞的成熟。該種成熟的DC細(xì)胞能有效將腫瘤抗原遞呈給T 淋巴細(xì)胞,誘導(dǎo)T淋巴細(xì)胞活化,從而激活機(jī)體抗腫瘤免疫應(yīng)答。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果在細(xì)胞水平上進(jìn)一步提示,OAZI-1 高表達(dá)能促進(jìn)B16-F1 細(xì)胞發(fā)生免疫原性轉(zhuǎn)化。但有關(guān)OAZI-1 高表達(dá)促進(jìn)腫瘤細(xì)胞發(fā)生免疫原性轉(zhuǎn)化的分子機(jī)制尚未完全闡明,有待進(jìn)一步深入研究。
[1]Keren-paz A,Bercovich Z,Kahana C.Antizyme inhibitor:a defective ornithine decarboxylase or a physiological regulator of polyamine biosynthesis and cellular proliferation [J].Biochem Soc Trans,2007,35(2):311-313.
[2]Agostinelli E,Marques MP,Calheiros R,et al.Polyamines:fundamental characters in chemistry and biology [J].Amino Acids,2010,38(2):393-403.
[3]Kahana C.Regulation of cellular polyamine levels and cellular proliferation by antizyme and antizyme inhibitor[J].Essays Biochem,2009,46:47-61.
[4]Prestwich RJ,Errington F,Hatfield P,et al.The immune system,is it relevant to cancer development,progression and treatment?[J]Clin Oncol,2008,20(2):101-112.
[5]Reiman JM,Kmieciak M,Manjili MH,et al.Tumor immunoediting and immunosculpting pathways to cancer progression[J].Semin Cancer Biol,2007,17(4):275-287.
[6]Obeid M,Tesniere A,Ghiringhelli F,et al.Calreticulin exposure dictates the immunogenicity of cancer cell death[J].Nat Med,2007,13(1):54-61.
[7]Ye Qin,Yu Han,Chunyu Cao,et al.Melanoma B16-F1 cells coated with fusion protein of mouse calreticulin and virus G-protein coupled receptor induced the antitumor immune response in BALB/c mice[J].Cancer Biology & Therapy,2011,11(6):574-580.