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        槲皮素對K562細胞增殖和凋亡的影響

        2015-02-27 01:00:56潘莉萍袁偉
        貴州醫(yī)藥 2015年12期
        關鍵詞:槲皮素白血病試劑盒

        潘莉萍 袁偉

        (武漢大學基礎醫(yī)學院,湖北武漢430072)

        慢性骨髓性白血?。–ML)發(fā)病率高,預后差,死亡率高,尋找新的治療方案是各國學者關注的重點[1]。槲皮素是一種常見類黃酮物質,最近研究發(fā)現(xiàn)其具有廣泛的生物活性如抗炎、抗氧化、抗腫瘤等[2-4]。本研究以人慢性髓系白血病細胞K562為靶細胞,探討槲皮素對慢性髓系白血病細胞K562的作用及其作用機制。

        1 材料與方法

        1.1 藥品與試劑 K562(購自武漢病毒研究所)槲皮素(sigma,美國),RPMI 1640培養(yǎng)基(Gibgo,美國);小牛血清(杭州四季青公司);12孔培養(yǎng)板(Falcon,美國);β-actin抗體(Abmart,中國),p-JAK2抗體(CST,美國),JAK2抗體(CST,美國)p-STAT3抗體(CST,美國),STAT3抗體(CST,美國)。TRIzol reagent(Invitrogen,美國),逆轉錄試劑盒(GeneCopoeia,美國),SYBRgreen(Takara,日本),Q-PCR儀(BIO-RAD,美國),蛋白裂解液RIPA(碧云天,中國),蛋白酶抑制劑cocktail及Western blot凝膠制備試劑盒購自武漢谷歌生物公司,BCA蛋白定量試劑盒(上海碧天生物技術有限公司),qPCR引物(北京擎科生物技術有限公司),酶標儀(Thermo Fisher,美國)。

        1.2 實驗方法 (1)細胞培養(yǎng):K562細胞置于含有10%胎牛血清的RPMI 1640培養(yǎng)液中,加入青霉素(100U/mL)和鏈霉素(100U/mL),在37℃、5% CO2飽和濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。(2)K562細胞增殖的MTT法檢測:取對數(shù)生長期K562細胞,接種于12孔板內,調整密度為2×105/mL,每孔90μL,分別加入槲皮素(0,10,20μmoL),另設空白孔組(只加培養(yǎng)基,不加藥物),每組設3個復孔。12孔板置于37℃、5%CO2培養(yǎng)48h,每孔加入5mg/mL的MTT溶液20μL,繼續(xù)培養(yǎng)4h,然后加入三聯(lián)裂解液[10%SDS+5%異丁醇+1%HCL(10mol/L)],100μL,37℃放置過夜后,用酶標儀于波長570nm處讀取吸光度(OD)值,根據(jù)OD值計算細胞增殖抑制率:增殖抑制率=(1-實驗組OD值/空白組OD值)×100%。(3)Annexin-V/PI雙染法檢測細胞凋亡:取對數(shù)生長期的K562細胞以1×105/mL接種于96孔板內。細胞培養(yǎng)48h后,加入槲皮素(0,10,20)μg/mL,取1mL細胞懸液,1 000r/min離心5min,棄培養(yǎng)基,加RNA酶,37℃水浴1h,放入冰浴加入0.5mg/L碘化丙啶(PI)及Annexin V,流式細胞儀檢測CELIQU-,EST軟件分析細胞凋亡率。(4)Western blotting檢測槲皮素對K562細胞JAK2、STAT 3,p-JAK2,p-STAT 3,Bax和Bcl-2表達:按照蛋白裂解液RIPA操作說明提取各組蛋白,BCA法進行蛋白定量。取各組細胞總蛋白樣品40μg,以β-actin為內參,經SDS-PAGE凝膠電泳、轉膜,然后用含5%脫脂奶粉的PBS封閉2h,分別加入適量含2%脫脂奶粉的PBS稀釋JAK2抗體(1∶1 000)、p-JAK2(1∶500)、STAT 3(1∶1 000)、p-STAT 3(1∶500)、Bax(1∶500)、Bcl-2(1∶1 000)、β-actin(1∶3 000)抗體,4℃孵育過夜。PBS洗膜3次,10min/次,根據(jù)一抗的來源,再分別加入含2%脫脂奶粉的PBS稀釋的HRP,標記羊抗兔IgG(1∶500),HRP標記羊抗鼠IgG(1∶5 000),室溫下作用2h,PBS洗膜3次,10min/次,ECL化學發(fā)光顯色、壓片、顯影、定影、膠片掃描保存。用Ge-l Pro Analy zer(Ver.3.0)軟件測定蛋白條帶灰度值,JAK2、p-JAK2、STAT 3、p-STAT 3條帶灰度值與β-actin內參條帶灰度值的比值分別將上述蛋白表達量化。(5)實時定量PCR(RT-PCR)檢測Bax和Bcl-2:按照總RNA提取試劑盒(takara)說明提取各組細胞總RNA,紫外分光光度計測量濃度(thermo fisher),逆轉錄以及擴增反應按試劑盒說明書(takara)進行,,實時定量PCR(Bio-Rad)。引物均由invitrogen公司合成。管家基因β-actin作為內參對照基因,用得到的各樣本的Ct值按公式2-ΔΔCT計算相對表達量。引物序列,見表1。

        表1 實時定量PCR檢測的引物序列

        1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS 12.0統(tǒng)計軟件包進行分析,實驗結果采用mean±S.D表示,資料采用單因素方差分析(ANOVA),多個樣本之間的兩兩比較采用t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

        2 結 果

        2.1 槲皮素抑制K562細胞增殖 MTT檢測實驗結果顯示,抑制K562細胞增殖(P<0.05)作用呈濃度依賴性,最佳抑制濃度為20μmol/L。見圖1。

        圖1 MTT檢測槲皮素對K562細胞增殖的影響

        2.2 槲皮素誘導K562細胞凋亡 實驗結果顯示,槲皮素誘導K562細胞凋亡作用呈濃度依賴性,最佳濃度為20μmol/L,P<0.05見圖2。

        圖2 槲皮素對各組K562細胞凋亡的影響(*P<0.05)

        2.3 槲皮素對K562細胞Bax、Bcl-2mRNA表達的影響 實驗結果顯示槲皮素呈濃度依賴性促進Bax mRNA表達增加(*P<0.05)而降低Bcl-2mRNA表達(*P<0.05)。見圖3。

        圖3 RT-PCR檢測槲皮素對K562細胞Bax、Bcl-2mRNA表達的影響(*P<0.05)

        2.4 槲皮素對K562細胞JAK2、STAT3蛋白表達的影響 實驗結果顯示:經槲皮素作用K562細胞48h后,JAK2、STAT3蛋白濃度無明顯變化(P> 0.05),p-JAK2、p-STAT3濃度明顯降低(△P<0.05),見圖4。

        圖4 Western blotting檢測槲皮素對K562細胞JAK2、STAT3蛋白表達的影響

        2.5 槲皮素對K562細胞Bax、Bcl-2蛋白表達的影響 實驗結果顯示,經槲皮素作用K562細胞48h后,Bax表達明顯增高(△P<0.05),而Bcl-2表達明顯降低(1P<0.05)。見圖5。

        圖5 Western blotting檢測槲皮素對K562細胞BCL-2、Bax蛋白表達的影響(1 P<0.05)

        3 討 論

        目前對CML大多仍采用傳統(tǒng)的化療和干細胞移植,但化療對肝臟和腎臟很大損害,且復發(fā)率高[1]。而干細胞移植受制于干細胞的緊缺和現(xiàn)有條件,難以大規(guī)模開展。祖國醫(yī)學博大精深,因此從祖國醫(yī)學寶庫中挖掘抑制白血病細胞惡性增殖的方法是研發(fā)高效低毒的抗肺癌藥物的有效途徑之一[1]。槲皮素是一種廣泛存在于植物的花、葉、果實中的一種多羥基黃酮類化合物,化學名為3,3’,4’,5,7-五羥基黃酮,具有多種生物學活性,如抗炎、抗凋亡、抗氧化應激以及抗腫瘤的活性,因此具有很高的藥用價值[5]。最近研究發(fā)現(xiàn)槲皮素具有明顯的抗腫瘤活性作用,可抑制肝癌、乳腺癌和胃癌等[2-6]。而槲皮素對血液系統(tǒng)腫瘤之一的CML的作用及其機制尚不清楚。

        實驗中我們通過MTT和流式檢測發(fā)現(xiàn)槲皮素可以呈濃度依賴性誘導白血病細胞K562增殖抑制和促進K562細胞凋亡,以及促進凋亡蛋白Bax明顯增高,抗凋亡蛋白Bcl-2明顯降低,上調Bax/Bcl-2比例。因此我們推測槲皮素具有抑制K562細胞增殖和促進K562凋亡的作用而具有抗白血病腫瘤的活性,但具體機制不明。

        JAK2/STAT3信號途徑是在多種細胞發(fā)揮介導作用的信號通路,具有調節(jié)炎癥、凋亡、增殖等功效的。目前研究發(fā)現(xiàn)JAK2/STAT3信號通路在K562細胞增殖扮演重要作用[7]。實驗結果顯示槲皮素可以呈濃度依賴性降低p-JAK2和p-STAT3的表達,而對JAK2和STAT3表達無明顯影響,因此我們推測槲皮素是通過降低JAK2和STAT3信號蛋白磷酸化結構修飾,而非調節(jié)JAK2和STAT3的表達量而抑制JAK2/STAT3信號通路的激活。

        綜上所述,我們推測槲皮素可通過抑制JAK2/STAT3信號通路激活而抑制K562細胞增殖和促進K562凋亡。但槲皮素是直接作用于JAK2信號分子還是通過調節(jié)其上游激酶和信號分子而間接發(fā)揮作用仍不清楚,尚需進行更深入的研究。

        [1] Zuckerman T,Rowe JM.Pathogenesis and prognostication in acute lymphoblastic leukemia[J].F1000Prime Rep,2014,8(6):59-63.

        [2] Guo Y,Bruno RS.Endogenous and exogenous mediators of quercetin bioavailability[J].J Nutr Biochem,2014,14(12):2860-2863.

        [3] 謝珊,賈憲生.貴州產黃珠子草總黃酮毒性及抗CCl 4,AAP中毒小鼠肝損傷試驗[J].貴州醫(yī)藥,2005,29(1):74-76.

        [4] 劉易蓉,梁光義,張永萍.小花清風藤中槲皮素的提取工藝研究[J].貴州醫(yī)藥,2006,30(6):566-567.

        [5] Avci CB,Yilmaz S,Dogan ZO,et al.Quercetin-induced apoptosis involves increased hTERT enzyme activity of leukemic cells[J].Hematology,2011,16(5):303-307.

        [6] Brisdelli F,Bennato F,Bozzi A,et al.ELF-MF attenuates quercetin-induced apoptosis in K562cells through modulating the expression of Bcl-2family proteins[J].Mol Cell Biochem,2014,397(1):33-43.

        [7] Zhu JF,Li ZJ,Zhang,et al.Icaritin shows potent antileukemia activity on chronic myeloid leukemia in vitro and in vivo by regulating MAPK/ERK/JNK and JAK2/STAT3/AKT signalings[J].PLoS One,2011,6(8):720-722.

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