洪巧瑜 張建軍 王克榮 王林元 李 偉
1.北京衛(wèi)生職業(yè)學(xué)院,北京 100053;2.北京中醫(yī)藥大學(xué),北京 100029
雙龍顆粒[1-2]系在中醫(yī)藥理論的指導(dǎo)下,在多年臨床實(shí)踐經(jīng)驗(yàn)的基礎(chǔ)上,結(jié)合現(xiàn)代醫(yī)藥研究成果,確定了雙龍顆粒處方。具有疏風(fēng)解表、清肺化痰、降氣平咳的功能。臨床用于哮喘風(fēng)哮證,證見時(shí)發(fā)時(shí)止,止時(shí)又如常人,發(fā)作前鼻癢,噴嚏,咳嗽,痰粘。雙龍顆粒由麻黃、地龍、防風(fēng)、杏仁、甘草等中藥經(jīng)提取加工制成的顆粒,方中各藥味所發(fā)揮的功用既相互獨(dú)立又相互協(xié)作,所含成分既有水溶性部位,也有脂溶性部位,如只選定一種指標(biāo)成分進(jìn)行提取工藝優(yōu)選,難以保證制劑整體療效的發(fā)揮。為將各藥味中主要有效部位盡可能提取充分,本研究采用醇水雙提法[3-4]。
由于雙龍顆粒的制備工藝研究處方藥味較多,對(duì)提取工藝的優(yōu)化用單一指標(biāo)考察具有較大的片面性,本研究每條工藝路線都選定了多指標(biāo)[5-6]來考察各提取因素,使提取工藝更具全面性和科學(xué)性。處方中部分藥物麻黃、黃芪、柴胡、苦杏仁、防風(fēng)、地龍、甘草主要有效成分為水溶性成分,如生物堿類[7]、苷[8]、氨基酸[9]、香豆素類[10],故選擇水作為溶劑,本研究選定對(duì)加水量、提取時(shí)間、提取次數(shù)作為考察因素,對(duì)工藝進(jìn)行優(yōu)選。由于處方藥味較多,對(duì)提取工藝的優(yōu)化用單一指標(biāo)考察具有較大的片面性。所以本文選定了以浸出物的量、一種生物堿為主、一種皂苷為輔的代表性指標(biāo)來考察各提取因素,使提取工藝更具全面性和科學(xué)性。本研究采用正交設(shè)計(jì)法,以提取干膏量,鹽酸麻黃堿含量,苦杏仁苷含量為考察指標(biāo),對(duì)雙龍顆粒水提部分的加水量、水煮時(shí)間、提取次數(shù)三因素進(jìn)行優(yōu)選研究。
鹽酸麻黃堿對(duì)照品(中國藥品生物制品檢定所提供,批號(hào)為0090-9801);苦杏仁苷對(duì)照品(中國藥品生物制品檢定所提供,批號(hào)為110820-200403);藥材為北京藥材公司提供,其余試劑均為色譜純。
島津SPD-10A 色譜柱為SinoChrom-BP(4.6mm×250mm,5μm)。
表2 水煮提取工藝L9(34)正交試驗(yàn)表
按處方量稱取藥材麻黃9g、地龍6g、杏仁6g等,總計(jì)51g,加水浸泡24h,測定其吸水量為2 倍,浸沒藥材最小加水量為8 倍,以此作為設(shè)定加水量的依據(jù)。
為了提高藥物的提取效率,選取對(duì)提取影響大的對(duì)工藝中加水量(A),煎煮時(shí)間(B),煎煮次數(shù)(C)三個(gè)因素進(jìn)行考察,同時(shí),每個(gè)因素取三個(gè)水平,見表1。
2.3.1 色譜條件 色譜柱:Agilent Hypersil ODS2(4.6mm×200mm 5μm)色譜柱,流動(dòng)相:甲醇:0.1%磷酸溶液(5︰95),流速:1.0mL/min,檢測波長:207nm,柱溫:室溫,流速:1.0mL·min,理論板數(shù):以鹽酸麻黃堿峰計(jì)算應(yīng)不低于3000,以苦杏仁苷峰計(jì)應(yīng)不低于5000。
表1 水煮提取工藝正交試驗(yàn)因素水平表
2.3.2 對(duì)照品溶液的制備 精密稱取鹽酸麻黃堿10mg 置100mL 的量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,精密吸取2mL 置25mL 的量瓶中,用流動(dòng)相稀釋至刻度,搖勻,作為鹽酸麻黃堿對(duì)照品溶液(1mL 含鹽酸麻黃堿約0.008mg)。再精密稱取苦杏仁苷10mg 置25mL 的量瓶中,用甲醇溶解并稀釋至刻度,搖勻,精密吸取2mL 置25mL 的量瓶中,用流動(dòng)相稀釋至刻度,搖勻,作為苦杏仁苷對(duì)照品溶液(1mL 含苦杏仁苷約0.032mg)。
表3 水煎煮前浸泡時(shí)間比較實(shí)驗(yàn)
2.3.3 供試品溶液的制備 精密量取2.1 項(xiàng)下1 ~9 號(hào)提取物約0.4g 置具塞錐形瓶中。精密加入甲醇5mL 密塞,稱定重量,超聲處理45min(制劑與半成品15min,苦杏仁回流1h),放冷,再稱定重量,用甲醇補(bǔ)足減失的重量,搖勻,濾過。精密量取續(xù)濾液1mL,置中性氧化鋁柱(內(nèi)徑1cm,100 ~200目中性氧化鋁,1.5g,干法裝柱)上,用50%甲醇洗脫至9mL,用50%的甲醇稀釋至刻度,搖勻,用微孔濾膜(0.45um)濾過,取續(xù)濾液作為供試品溶液。
對(duì)樣品進(jìn)行全波長掃描,207nm、254nm 有最大吸收:但207nm 響應(yīng)值較大,且在此波長下陰性樣品無干擾,故用207nm。
鹽酸麻黃堿進(jìn)樣量麻黃堿在12.3 ~393.6μg范圍內(nèi)呈線性關(guān)系,其回歸方程為Y=26.766X-0.0813(r=0.9997),苦杏仁苷在0.106 3-4.252 μg 范圍內(nèi)呈線性關(guān)系,其回歸方程為:Y=1.13×106X+5.12×104(r=0.9995)。
按處方比例分別稱取麻黃9g、地龍6g、杏仁6g等,總計(jì)51g,提取,每次浸泡2h,按正交因素水平表提取,濃縮,干燥,粉碎過80 目篩,得水提藥粉備用。以出膏率、鹽酸麻黃堿含量、鹽酸麻黃堿總量、杏仁苷含量、杏仁苷總量為指標(biāo),對(duì)提取次數(shù)、提取時(shí)間、加水量采用正交試驗(yàn)法進(jìn)行優(yōu)選。見表2。鹽酸麻黃堿的測定方法,參照中國藥典2010 版麻黃項(xiàng)下麻黃堿的高效液相測定法[11]。杏仁苷的測定方法,參照藥材制劑半成品中麻黃堿、偽麻黃堿和苦杏仁苷的同時(shí)定量研究[12]。
按鹽酸麻黃堿總量進(jìn)行方差分析,提取時(shí)間B 和加水量C 無顯著性差異,根據(jù)極差分析,綜合考慮出膏率,鹽酸麻黃堿含量的結(jié)果,最佳條件為A3B1C1;即提取三次,每次1h,加水量為8,6,6;按杏仁苷總量進(jìn)行方差分析,煎煮次數(shù)A、提取時(shí)間B、加水量C 都有顯著性差異,根據(jù)極差分析,綜合考慮出膏率,杏仁苷含量的結(jié)果,最佳條件為A3B3C2,;綜合以上二指標(biāo),最佳條件確定為A3B3C2,即提取三次,每次2h,加水量為10,8,8。
取藥材麻黃9g、地龍6g、杏仁6g 等,總計(jì)51g,加10,8,8 倍量水,分別浸泡0h,2h,提取3 次,每次2h,以出膏率、鹽酸麻黃堿含量、鹽酸麻黃堿總量、杏仁苷含量、杏仁苷總量為指標(biāo),用正交最優(yōu)條件,對(duì)浸泡時(shí)間進(jìn)行比較,見表3。
結(jié)果表明,水提取前浸泡2h 與浸泡0h 未見明顯差異,故確定不浸泡。按上述最佳工藝條件制成的雙龍顆粒水提部分最佳條件為不浸泡,提取3 次,每次2小時(shí),加10,8,8 倍量水。按此最佳工藝條件得麻黃堿轉(zhuǎn)移率為68.86%;杏仁苷轉(zhuǎn)移率為92.78%,工藝合理。
由于影響藥物提取的因素很多,而且這些因素相互作用,單一指標(biāo)成分的控制難以體現(xiàn)中藥效應(yīng)整體性特征;單一指標(biāo)成分的變化情況,難以體現(xiàn)制備過程中整體成分的變化情況,以往的復(fù)方提取工藝優(yōu)選,局限于用浸膏得率、某一指標(biāo)成分的含量進(jìn)行工藝優(yōu)選,具有一定的局限性[13]。本實(shí)驗(yàn)用多個(gè)指標(biāo)進(jìn)行評(píng)價(jià)比較合理。本處方中有九味藥材水提,其制劑工藝的評(píng)價(jià)如采用單一指標(biāo)則代表性較差,用不同種類的成分作為評(píng)判指標(biāo)其結(jié)果才有較廣泛的代表性。但由于不同藥材中的成分方中地位不一,含量不在同一數(shù)量級(jí),故應(yīng)以一種生物堿為主、一種皂苷為輔的代表性指標(biāo)來考察各提取因素。麻黃堿為方中君藥麻黃的藥效成分,其所需提取條件為不浸泡,提取3 次,每次1h,加水量為8,6,6;而佐藥杏仁的藥效成分杏仁苷在該條件下轉(zhuǎn)移率亦不低于80%,從省時(shí)省工的角度出發(fā)提取條件為不浸泡,提取3 次,每次1h,加水量為8,6,6。
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