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        遼寧傳統(tǒng)發(fā)酵豆醬中乳酸菌及酵母菌分離鑒定

        2015-01-30 07:36:10武俊瑞王曉蕊唐筱揚(yáng)王茜茜烏日娜岳喜慶
        食品科學(xué) 2015年9期
        關(guān)鍵詞:酵母菌分析

        武俊瑞,王曉蕊,唐筱揚(yáng),王茜茜,烏日娜,2,*,岳喜慶

        (1.沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,遼寧 沈陽 110866;2.江南大學(xué)食品學(xué)院,食品科學(xué)與技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122)

        傳統(tǒng)發(fā)酵豆醬是以大豆為原料,經(jīng)過煮制、擠壓成塊、制曲、發(fā)酵而成,在制曲和發(fā)酵過程中,利用原料和環(huán)境中的微生物自然發(fā)酵,微生物利用蛋白質(zhì)、脂肪、碳水化合物等大分子物質(zhì)分解成為小分子的風(fēng)味物質(zhì),使豆醬的pH值和各種養(yǎng)分發(fā)生變化[1-5]。由于其良好的風(fēng)味和營養(yǎng)價(jià)值廣受人們歡迎。傳統(tǒng)發(fā)酵豆醬中含有異黃酮類、多酚類、大豆皂苷、類黑精、肽類、維生素等大量對(duì)人體有益的生理活性物質(zhì),具有很好的保健功能[3,5-7]。

        豆醬中微生物的種類繁多,包括乳酸菌、酵母菌、霉菌等。乳酸菌是豆醬呈味的主要微生物,可將精氨酸、酪氨酸、組氨酸及天冬氨酸分解,同時(shí)對(duì)絲氨酸、蘇氨酸和苯丙氨酸等進(jìn)行特異性脫羧基作用,左右著醬的香氣[8-10]。酵母菌在豆醬發(fā)酵過程中主要起著發(fā)酵糖類產(chǎn)酸和產(chǎn)生醇類的作用[11-12]。另外乳酸菌與酵母菌協(xié)同作用,乳酸和乙醇生成乳酸乙酯,和魯氏酵母生成糠醇,從而產(chǎn)生獨(dú)特的醬香氣。同時(shí)乳酸菌發(fā)酵產(chǎn)生的乳酸使得體系pH值降低,有利于酵母菌的增殖,而酵母菌發(fā)酵產(chǎn)生的大量乙醇卻會(huì)制約著乳酸菌的繁殖[13]。乳酸菌和酵母菌在豆醬發(fā)酵中相互協(xié)同也相互影響。

        本研究以采自遼寧地區(qū)的38份傳統(tǒng)發(fā)酵豆醬樣品為實(shí)驗(yàn)材料,從豆醬中分離出乳酸菌和酵母菌疑似菌株,再利用16S rDNA序列分析方法和26S rDNA D1/D2序列同源性分析,對(duì)其進(jìn)行鑒定并保藏,為進(jìn)一步開發(fā)利用豆醬中乳酸菌和酵母菌資源提供了基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        從遼寧省地區(qū)傳統(tǒng)手工制醬農(nóng)家采集豆醬樣品38份,見表1。

        表1 樣品采集結(jié)果Table1 Geographic sources of samples collected for this study

        1.2 培養(yǎng)基與試劑

        MRS培養(yǎng)基、馬鈴薯葡萄糖(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基、孟加拉紅瓊脂培養(yǎng)基 本實(shí)驗(yàn)室自行配制。

        細(xì)菌基因組DNA小量制備試劑盒、DNA凝膠回收試劑盒、Taq DNA聚合酶、DNA Marker 上海桑尼生物科技有限公司。

        1.3 儀器與設(shè)備

        JNOEC XS-212-201生物顯微鏡 日本Olympus公司;5804R型離心機(jī) 德國Eppendorf公司;SHP-1500型低溫生化培養(yǎng)箱 上海精宏實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;HZQ-F160全溫振蕩培養(yǎng)箱 哈爾濱東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司;2720型Thermal Cycler PCR儀 美國ABI公司;Tanon 2500凝膠成像系統(tǒng) 中國天能公司;ND-1000型微量紫外分光光度計(jì) 美國Nano Drop公司。

        1.4 乳酸菌分離鑒定及其多樣性分析

        1.4.1 乳酸菌的分離純化與保存

        采用傾注培養(yǎng)法,將豆醬樣品進(jìn)行10倍梯度稀釋后,取10-4~10-7的樣品稀釋液100 μL于平板中,倒入含有CaCO3的滅菌MRS瓊脂培養(yǎng)基20 mL,混合均勻并凝固后,于30℃培養(yǎng)24~48 h。挑取有鈣圈的單菌落,在滅菌后的MRS固體培養(yǎng)基上反復(fù)劃線分離,置于30℃培養(yǎng)24~48 h,確定為單菌落后置于10倍放大鏡下進(jìn)行菌落形態(tài)學(xué)觀察,并且進(jìn)行革蘭氏染色,于100倍光學(xué)顯微鏡下進(jìn)行菌體形態(tài)學(xué)觀察,并記錄[14-16]。最后用MRS固體培養(yǎng)基進(jìn)行穿刺保藏。

        1.4.2 利用16S rDNA序列分析進(jìn)行鑒定

        1.4.2.1 總DNA的提取及純度的檢測(cè)

        采用十六烷基三甲基溴化銨(hexadecyl trimethyl ammonium bromide,CTAB)法提取供試菌株基因組DNA[17-18]。使用ND-1000型微量紫外分光光度計(jì)檢測(cè)基因組DNA的濃度以及OD260nm/OD280nm比值,再用1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè)。

        1.4.2.2 聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增16S rDNA序列

        16S rDNA 擴(kuò)增引物:正向引物為27f:5’-AGAGTTT G A T C C T G G C T C A G-3’;反向引物為1 4 9 5 r:5’-CTACGGCTACCTTGTTACGA-3’。PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系(25 μL):上下游引物各1 μL(10 pmol/μL),模板DNA(100 ng/μL)1 μL,10×PCR Buffer 2.5 μL,dNTP Mix 2 μL,超純水17.2 μL,rTaq酶0.3 μL。PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序?yàn)椋?4℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,58℃退火1 min,72℃延伸2 min,循環(huán)30次;72℃延伸10 min,4℃保溫[19-20]。

        1.4.2.3 檢測(cè)16S rDNA擴(kuò)增片段及測(cè)序

        取3 μL的PCR產(chǎn)物與1 μL的6×Loading Buffer混合,加入1%的瓊脂糖凝膠點(diǎn)樣孔中,在電壓為5 V/cm,電泳液為0.5×TBE(Tris硼酸)中電泳。電泳結(jié)束后,用溴化乙錠(ethidium bromide,EB)進(jìn)行染色,染色30 min,將膠板置于凝膠成像系統(tǒng)中觀察。PCR產(chǎn)物檢測(cè)后,片段長(zhǎng)度約為1 500 bp的陽性產(chǎn)物直接送上海桑尼生物科技有限公司進(jìn)行序列測(cè)定[21-22]。

        1.4.2.4 乳酸菌同源性分析和系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建

        將所得序列在GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行基本局部相似性比對(duì)搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)同源性比對(duì)分析,運(yùn)用Mega4.0軟件的相鄰計(jì)算法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,判定目的菌的分類地位或它的系統(tǒng)發(fā)育地位[18,21]。

        1.5 酵母菌分離鑒定及其多樣性分析

        1.5.1 酵母菌的分離純化與保存

        將豆醬樣品進(jìn)行梯度稀釋,取10-4~10-7的樣品稀釋液100 μL,均勻涂布在孟加拉紅瓊脂培養(yǎng)基中,25℃培養(yǎng)48 h。挑取與酵母菌菌落形態(tài)相符的單個(gè)菌落,接于PDA液體培養(yǎng)基中,25℃培養(yǎng)24 h。傳至二代,用平板劃線的方法,接種于PDA瓊脂培養(yǎng)基上,25℃培養(yǎng)48 h[23-24]。挑取培養(yǎng)好的平板上分離出的單菌落,接于PDA液體培養(yǎng)基中依上述純化過程再次純化兩代。用接種環(huán)挑取純化過的二代菌種,以劃線的方式保藏于PDA固體斜面上,25℃培養(yǎng)48 h。

        1.5.2 酵母菌26S rDNA D1/D2序列同源性分析

        1.5.2.1 酵母菌總DNA的提取和純度檢測(cè)

        采用酵母基因組DNA提取試劑盒(離心柱型)對(duì)酵母菌總DNA進(jìn)行提取。使用ND-1000型微量紫外分光光度計(jì)檢測(cè)基因組DNA的濃度和OD260nm/OD280nm比值,用1%的瓊脂糖凝膠對(duì)基因組DNA進(jìn)行電泳檢測(cè)。

        1.5.2.2 PCR擴(kuò)增26S rDNA D1/D2序列

        26S rDNA D1/D2擴(kuò)增引物:正向引物為NL1-FA:5’-GCAGAGTTCTCGGAGTCACGAGCATATCAATA AGCGGAGGAAAAG-3’;反向引物為NL4-RA:5’-AG CGGATCACTTCACACAGGAGGTCCGTGTTTCAAG ACGG-3’。PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系(50 μL):上下游引物各1 μL(10 pmol/μL),模板 DNA(100 ng/μL)1 μL,10×PCR Buffer 5 μL,4×dNTP Mix 1 μL,超純水40 μL,rTaq酶1 μL。PCR擴(kuò)增反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性5 min;94℃變性1 min,52℃退火1 min,72℃延伸1 min 20 s,循環(huán)36次;72℃延伸8 min,4℃保溫[23-26]。

        1.5.2.3 檢測(cè)26S rDNA D1/D2擴(kuò)增片段及測(cè)序

        取2 μL的PCR產(chǎn)物與1 μL的6×Loading Buffer混合,加入1%的瓊脂糖凝膠點(diǎn)樣孔中,在電壓為5 V/cm,電泳液為0.5×TBE中電泳。電泳結(jié)束后,用EB進(jìn)行染色,染色30 min,將膠板置于凝膠成像系統(tǒng)中觀察。PCR產(chǎn)物檢測(cè)后,將片段長(zhǎng)度約為600 bp的陽性產(chǎn)物直接送上海桑尼生物科技有限公司進(jìn)行序列測(cè)定。

        1.5.2.4 酵母菌同源性分析

        將所得序列在GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行BLAST同源性比對(duì)分析[25-26]。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 豆醬中乳酸菌的分離與鑒定

        2.1.1 乳酸菌的表型特征

        本實(shí)驗(yàn)共從豆醬樣品中分離出62株乳酸菌,其中有28株球菌(45.2%),34株桿菌(54.8%)。在MRS固體培養(yǎng)基中,菌落形態(tài)為乳白色或透明且表面光滑的圓形菌落。菌落直徑集中在0.5~1.5 mm。革蘭氏染色發(fā)現(xiàn)62株菌均為革蘭氏陽性菌,菌落形態(tài)分為球狀和桿狀,排列方式為單個(gè)、成對(duì)或短鏈。

        2.1.2 乳酸菌總DNA的提取及16S rDNA擴(kuò)增結(jié)果檢測(cè)

        圖1 部分菌株16S rDNA PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖Fig.1 Electrophoresis of 16S rDNA PCR products from lactic acid bacteria

        圖1所示為部分菌株16S rDNA PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果,可以觀察到所有泳道的1 500 bp左右位置均出現(xiàn)了一條亮帶,并且無明顯非特異擴(kuò)增現(xiàn)象,符合測(cè)序要求。將PCR片段長(zhǎng)度在1 500 bp左右的陽性產(chǎn)物進(jìn)行序列測(cè)定。

        2.1.3 乳酸菌16S rDNA同源性分析

        將62株乳酸菌16S rDNA擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果同國家生物技術(shù)信息中心(National Center for Biotechnology Information,NCBI)數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST同源性對(duì)比分析(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)。結(jié)果如表2所示。

        表2 乳酸菌16S rDNA序列分析結(jié)果Table2 Results of 16S rDNA sequence analysis for 62 LAB strains

        由表2可知,DD1-2等19株菌與Lactobacillus plantarum KJ026699.1的同源性達(dá)到99%或100%,所以將其鑒定為L(zhǎng).plantarum;DD2-1等14株與Enterococcus faecium FJ972173.1的同源性達(dá)到99%或100%,所以將其鑒定為E.faecium;DD1-1等12株菌與Tetragenococcus halophilus FJ715470.1的同源性達(dá)到99%或100%,所以將其鑒定為T.halophilus;DD2-2等11株菌與Lactobacillus sakei EU626014的同源性達(dá)到99%或100%,所以將其鑒定為L(zhǎng).sakei;SY1-1等4株菌與Lactobacillus fermentum EF371900.1的同源性達(dá)到99%或100%,所以將其鑒定為L(zhǎng).fermentum;DL1-1與DL3-2與Pediococcus pentosaceus AJ305321的同源性達(dá)到99%或100%,所以將其鑒定為P.pentosaceu。

        本研究從遼寧省14個(gè)地區(qū)采集到的38份樣品中共分離出了62株乳酸菌,通過16S rDNA序列分析后共鑒定出6個(gè)種,L.plantarum19株,是樣品中分離數(shù)量最多的菌種,除錦州和鞍山外均分離到該菌株,占總數(shù)的30.65%;E.faecium有14株,除盤錦、錦州和遼陽外均分離到該菌株,占總數(shù)的22.58%;T.halophilus有12株,占總數(shù)的19.35%;分離到L.sakei 11株,占總數(shù)的17.74%。另外,還分離到4株L.fermentum和2株P(guān).pentosaceus,這2株P(guān).pentosaceus均分離自大連樣品。14個(gè)地區(qū)中,有85.71%的地區(qū)都分離到了L.plantarum,78.57%的地區(qū)分離到了E.faecium,有71.43%的地區(qū)分離到了T.halophilus,可初步推測(cè)這3種菌為遼寧省地區(qū)自然發(fā)酵豆醬中存在的優(yōu)勢(shì)菌。

        2.1.4 豆醬樣品中乳酸菌系統(tǒng)發(fā)育樹的構(gòu)建

        根據(jù)同源序列的搜索結(jié)果,下載相關(guān)模式株的序列,利用本地軟件Mega4.0將測(cè)得序列與GenBank中的模式菌株16S rDNA序列進(jìn)行分析,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2),獲得目的菌的分類地位和它的系統(tǒng)發(fā)育地位。

        圖2 部分乳酸菌16S rDNA序列系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.2 Phylogenetic tree of 16S rDNA sequences of lactic acid bacteria

        從系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2)可以看出,Lactobacillus sakei SY3-1形成了第一群,Lactobacillus plantarum BX2-2和Lactobacillus fermentum CY1-1的16S rDNA序列在進(jìn)化關(guān)系上親緣關(guān)系較近,形成了第二類群;Tetragenococcus halophilus FS2-2和Enterococcus faecium DD2-1形成了第三類群,所有分離株與相對(duì)應(yīng)的參考菌株同源性都達(dá)到了99%以上,并與其聚在一起,證明乳酸菌16S rDNA區(qū)域序列分析結(jié)果的準(zhǔn)確性。

        2.1.5 豆醬樣品乳酸菌生物多樣性分析

        本研究從遼寧省14個(gè)地區(qū)38份樣品中共分離到6個(gè)種62株乳酸菌,其中乳球菌為3個(gè)種28株(45.16%),乳桿菌3個(gè)種34株(54.84%),表3匯總了每個(gè)種的乳酸菌的地區(qū)分布情況。

        表3 各地區(qū)豆醬樣品中乳酸菌分離鑒定情況Table3 Distribution of lactic acid bacteria in fermented soybean paste from different regions

        由表3可知,從丹東市采集的3個(gè)樣品中共分離到4個(gè)種(占種數(shù)的66.67%)5株乳酸菌(占總菌數(shù)的8.06%);盤錦市采集的2個(gè)樣品中分離出乳酸菌3個(gè)種(占種數(shù)的50%)3株(占總菌數(shù)的4.83%);葫蘆島市的3個(gè)樣品中分離出乳酸菌4個(gè)種(占種數(shù)的66.67%)5株(占總菌數(shù)的8.06%);來自阜新市的3個(gè)樣品中分離出4個(gè)種(占種數(shù)的66.67%)乳酸菌6株(占總菌數(shù)的9.68%);沈陽市的5份樣品中分離出乳酸菌5個(gè)種(占種數(shù)的83.33%)8株(占總菌數(shù)的12.9%);朝陽市的3份樣品中分離出乳酸菌4個(gè)種(占種數(shù)的66.67%)乳酸菌4株(占總菌數(shù)的6.45%);撫順市的4份樣品中分離出乳酸菌4個(gè)種(占種數(shù)的66.67%)乳酸菌7株(占總菌數(shù)的11.29%);本溪市的2份樣品中分離出乳酸菌3個(gè)種(占種數(shù)的50%)乳酸菌4株(占總菌數(shù)的6.45%);來自錦州市的2個(gè)樣品中分離到乳酸菌2個(gè)種(占種數(shù)的33.33%)2株乳酸菌(占總菌數(shù)的3.23%);大連市采集的3個(gè)樣品中分離出4個(gè)種(占種數(shù)的66.67%)乳酸菌5株(占總菌數(shù)的8.06%);遼陽市采集的2個(gè)樣品中分離出3個(gè)種(占種數(shù)的50%)乳酸菌5株(占總菌數(shù)的8.06%);鞍山市采集的2個(gè)樣品中分離出乳酸菌2個(gè)種(占種數(shù)的33.33%)2株(占總菌數(shù)的3.23%);營口市采集的3個(gè)樣品中分離出乳酸菌2個(gè)種(占種數(shù)的33.33%)4株(占總菌數(shù)的6.45%);鐵嶺市采集的1個(gè)樣品中分離出乳酸菌2個(gè)種(占種數(shù)的33.33%)2株(占總菌數(shù)的3.23%)。

        2.2 酵母菌分離鑒定及多樣性分析

        2.2.1 酵母菌的表型特征

        實(shí)驗(yàn)共從豆醬樣品中分離出56株酵母菌。在PDA固體培養(yǎng)基中,菌落顏色為乳白色或奶油色,表面光滑,呈圓形或卵圓形。菌落大而厚,直徑大于3 mm。

        2.2.2 酵母菌總DNA的提取及26S rDNA D1/D2擴(kuò)增結(jié)果檢測(cè)

        圖3為部分菌株26S rDNA D1/D2擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果,所有泳道的600 bp左右位置均出現(xiàn)了一條亮帶,并且無明顯非特異擴(kuò)增現(xiàn)象,符合測(cè)序要求。將PCR片段長(zhǎng)度在600 bp左右的陽性產(chǎn)物進(jìn)行序列測(cè)定。

        圖3 部分菌株26S rDNA D1/D2 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物電泳圖Fig.3 Electrophoresis of 26S rDNA D1/D2 PCR products from yeast

        2.2.3 酵母菌26S rDNA D1/D2同源性分析

        將56株酵母菌26S rDNA D1/D2擴(kuò)增產(chǎn)物測(cè)序結(jié)果同NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST同源性對(duì)比分析(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/)。結(jié)果如表4所示。

        表4 酵母菌26S rDNA D1/D2序列分析結(jié)果Table4 Results of 26S rDNA D1/D2 sequence analysis for yeast

        通過在NCBI數(shù)據(jù)庫進(jìn)行BLAST同源性對(duì)比分析(表4),SY2等18株菌被鑒定為Zygosaccharomyces;SY1-B等13株被鑒定為Candida;SY1-A等14株菌被鑒定為C.parapsilosis;SY3-A等7株菌被鑒定為D.hansenii;BX1-B等4株菌被鑒定為Debaryomyces。

        本研究從遼寧省14個(gè)地區(qū)采集到的38份樣品中共分離出了56株酵母菌,通過26S rDNA D1/D2序列分析后共鑒定出5個(gè)種,Zygosaccharomyces18株,是樣品中分離數(shù)量最多的菌種,占總數(shù)的32.14%;Candida 13株,占總數(shù)的23.21%;C.parapsilosis 14株,占總數(shù)的25%;分離到D.hansenii 7株,占總數(shù)的12.5%。還分離到4株Debaryomyces,分別來自本溪、撫順、遼陽、營口。14個(gè)地區(qū)中,有34.21%的地區(qū)都分離到了Zygosaccharomyces和C.parapsilosis,26.32%的地區(qū)分離到了Candida,可初步推測(cè)這3種菌為遼寧省自然發(fā)酵豆醬中存在的優(yōu)勢(shì)菌。

        2.2.4 豆醬樣品酵母菌生物多樣性分析

        本研究從遼寧省14個(gè)地區(qū)38份樣品中共分離到5個(gè)種56株酵母菌,表5匯總了每個(gè)種的酵母菌的地區(qū)分布情況。

        表5 各地區(qū)豆醬樣品中酵母菌分離鑒定情況Table5 Distribution of yeast in fermented soybean paste from different regions

        由表5可知,從阜新市采集的3個(gè)樣品中共分離到4個(gè)種(占種數(shù)的80%)6株酵母菌(占總菌數(shù)的10.71%);沈陽市采集的5個(gè)樣品中分離出酵母菌4個(gè)種(占種數(shù)的80%)7株(占總菌數(shù)的12.5%);大連市的3個(gè)樣品中分離出酵母菌4個(gè)種(占種數(shù)的80%)4株(占總菌數(shù)的7.14%);來自鞍山市的2個(gè)樣品中分離出4個(gè)種(占種數(shù)的80%)乳酸菌4株(占總菌數(shù)的7.14%);營口市的3份樣品中分離出酵母菌4個(gè)種(占種數(shù)的80%)4株(占總菌數(shù)的7.14%)。由此可見,遼寧省阜新市和沈陽市自然發(fā)酵豆醬中酵母菌多樣性較好。

        3 結(jié) 論

        本研究從遼寧省14個(gè)地區(qū)38份樣品中共分離到乳酸菌62株,并用乳酸菌16S rDNA序列分析法對(duì)分離到的乳酸菌進(jìn)行鑒定,鑒定結(jié)果為L(zhǎng).plantarum 19株、E.faecium 14株、T.halophilus 12株、L.sakei 11株、L.fermentum 4株、P.pentosaceus 2株。分離到酵母菌56株,經(jīng)過26S rDNA D1/D2序列分析方法鑒定結(jié)果為Zygosaccharomyces 18株、Candida 13株、C.parapsilosis 14株、D.hansenii 7株、Debaryomyces 4株。

        14個(gè)地區(qū)中,有85.71%的地區(qū)都分離到了L.plantarum;78.57%的地區(qū)分離到了E.faecium;有71.43%的地區(qū)分離到了T.halophilus,可初步推測(cè)這3種菌為遼寧省自然發(fā)酵豆醬中存在的優(yōu)勢(shì)菌。14個(gè)地區(qū)中,有34.21%的地區(qū)都分離到了Zygosaccharomyces和C.parapsilosis,26.32%的地區(qū)分離到了Candida,可初步推測(cè)這3種菌為遼寧省自然發(fā)酵豆醬中存在的優(yōu)勢(shì)菌。

        丹東市、沈陽市、阜新市等地區(qū)的樣品中乳酸菌的多樣性較好,而營口市和鐵嶺市均發(fā)現(xiàn)2種乳酸菌,多樣性較差。遼寧省阜新市和沈陽市自然發(fā)酵豆醬中酵母菌多樣性較好。

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